山楂果中黄酮化合物的光谱分析及抗氧化性能测定解读.docx

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山楂果中黄酮化合物的光谱分析及抗氧化性能测定解读

山楂果中黄酮化合物的光谱分析及

抗氧化性能测定

回瑞华，侯冬岩，刘晓媛，唐　蕊，李学成（　鞍山师范学院化学系，辽宁　鞍山　　　　　　１１４００５）

摘　　　要：

采用超声波法从山楂果中提取黄酮类化合物，并建立了山楂果中黄酮化合物的光谱分析方法。

本法的回收率为　９６％～１０５％，变异系数小于０．１４％。

用流动注射化学发光法测定了山楂果的抗氧化性能，实验结果表明：

山楂果具有较强的抗氧化性能，并且抗氧化性能随着浓度的增加而增加。

关键词：

山楂果；黄酮；光谱分析；流动注射化学发光；抗氧化性

Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　　Ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　Ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｏｎ　Ｅｆｆｅｃｔ　ｉｎ　Ｃ．ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ　Ｂｕｎｇｅ

ＨＵＩ　Ｒｕｉ－ｈｕａ，ＨＯＵ　Ｄｏｎｇ－ｙａｎ，ＬＩＵ　Ｘｉａｏ－ｙｕａｎ，ＴＡＮＧ　Ｒｕｉ，ＬＩ　Ｘｕｅ－ｃｈｅｎｇ

（　Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ａｎｓｈａｎ　Ｎｏｒｍａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ａｎｓｈａｎ　　　　　　１１４００５，Ｃｈｉｎａ）

Ａｂｓｔｒａｃｔ：

　Ｔｈｅ　ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ　ｍｅｔｈｏｄ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ｆｏｒ　ｅｘｔｒａｃｔｉｎｇ　ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ　ｏｆ　Ｃ．ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ　Ｂｕｎｇｅ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ　ｗｅｒｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ收稿日期：

２００５－０２－１０基金项目：

辽宁省教育厅科学技术基金资助课题（２０３３１０７９）

作者简介：

回瑞华（１９４５－），女，教授，主要从事有机分析及天然产物化学教学与研究。

和精胺的回收率大于１，但小于１１０％，仍在允许的误差范围内。

黄酒中生物胺的种类及含量

黄酒中生物胺的　ＨＰＬＣ色谱图及５种生物胺含量见图２和表４。

图２可见，应用本实验建立的方法可检测出黄酒中的５种生物胺，除酪胺稍有拖尾现象外，其他４种生物胺都得到很好的分离。

表４可见，生物胺的种类及含量因酒的品种而异，５种生物胺平均总量为１１４．４５μｇ／ｍｌ，变异范围为３９．２７～２４１．０７μｇ／ｍｌ。

３

讨　　论

有关酒中生物胺测定方法国内未见报道，我们参考国外相关文献，建立并优化了高效液相色谱测定酒中生物胺的方法。

此法快速、稳定、灵敏度高，可用于乳制品、饮料等食品中生物胺的检测。

Ｈａｌａｓｅ　Ａ等报道啤酒中生物胺含量与原料质量、酿造工艺以及酿造和贮藏过程中受微生物污染的程度密

［６］

２．４

组胺能够改善啤酒的风味，使其口味更清爽，但高含量的色胺、尸胺、组胺说明酿造过程中受到微生物的污染。

黄酒中生物胺含量是否与原料的加工处理、发酵工艺以及陈酿时间和提取方式等因素有关还有待进一步研究。

参考文献：

［１］［２］

Ｖｉｎｃｉ　Ｇ，　Ａｎｔｏｎｅｌｌｉ　Ｍ　Ｌ．　Ｂｉｏｇｅｎｉｃ　ａｍｉｎｅｓ：

　ｑｕａｌｉｔｙ　ｉｎｄｅｘ　ｏｆ　ｆｒｅｓｈｎｅｓｓ　ｉｎｒｅｄ　ａｎｄ　ｗｈｉｔｅ　ｍｅａｔ［Ｊ］．　Ｆｏｏｄ　Ｃｏｎｔｒｏｌ，　２００２，　１３：

　５１９－５２４．

Ａｙｈａｎ　Ｋ，　Ｋｏｌｓａｒｉｃｉ　Ｎ，　ｅｔ　ａｌ．　Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ａ　ｓｔａｒｔｅｒ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｎ　ｔｈｅｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｂｉｏｇｅｎｉｃ　ａｍｉｎｅｓ　ｉｎ　Ｔｕｒｋｉｓｈ　　ｓｏｕｄｊｏｕｃｋｓ［Ｊ］．　Ｍｅａｔ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９９，　５３：

　１８３－１８８．

Ａｎｌｉ　Ｅｒｔａｎ　Ｒ，　Ｖｕｒａｌ　Ｎ，　Ｙｉｌｍａｚ　Ｓ，　ｅｔ　ａｌ．　Ｔｈｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｂｉｏｇｅｎｉｃａｍｉｎｅｓ　ｉｎ　Ｔｕｒｋｉｓｈ　ｒｅｄ　ｗｉｎｅｓ［Ｊ］．　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｆｏｏｄ　Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ａｎｄＡｎａｌｙｓｉｓ，　２００４，　１７：

　５３－６２．

Ｍｏｒｅｔ　Ｓ，　Ｓｍｅｌａ　Ｄ，　Ｐｏｐｕｌｉｎ　Ｔ，　ｅｔ　ａｌ．　Ａ　ｓｕｒｖｅｙ　ｏｎ　ｆｒｅｅ　ｂｉｏｇｅｎｉｃ　ａｍｉｎｅｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｆｒｅｓｈ　ａｎｄ　ｐｒｅｓｅｒｖｅｄ　ｖｅｇｅｔａｂｌｅｓ［Ｊ］．　Ｆｏｏｄ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，　２００５，　８９：

３５５－３６１．

李超．　产生物胺乳酸菌检测方法的建立及其应用　［Ｄ］．　南京：

　南京农业大学，　２００５．

Ｈａｌａｓｅ　Ａ，　Ｂａｒａｔｈ　Ａ，　Ｈｏｌｚａｐｆｅｌ　Ｗ　Ｈ．　Ｔｈｅ　ｂｉｏｇｅｎｉｃ　ａｍｉｎｅｓ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆｂｅｅｒ；　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｂａｒｌｅｙ　，　ｍａｌｔｉｎｇ　ａｎｄ　ｂｒｅｗｉｎｇ　ｏｎ　ａｍｉｎｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｚ　Ｌｅｂｅｎｓｍ　Ｕｎｔｅｒｓ　Ｆｏｒｓｃｈ　Ａ，　１９９９，　２０８　（２）：

　４１８－４２３．

［３］

［４］

［５］［６］

切相关。

在啤酒酿造过程中，产生适量的色胺、尸胺、

ｂｙ　ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｒｙ，　ｔｈｅ　ｒｅｃｏｖｅｒｙ　ｉｓ　９６％～１０５％　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ　ｏｆ　ｖａｒｉａｔｉｏｎ　ｉｓ　０．１４％．　Ｔｈｅ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｏｎ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　Ｃ．ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ　Ｂｕｎｇｅ　ｗａｓ　ｓｔｕｄｉｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗ－ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ．　Ｔｈｅ　　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗ　ｔｈａｔ　Ｃ．ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ　Ｂｕｎｇｅ　ｈａｓ　ｔｈｅ　ｓｔｒｅｎｇｔｈａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｅｆｆｅｃｔ，　ａｎｄ　ｔｈｅ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ｗｉｔｈ　ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　．

Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ　：

Ｃ．ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ　Ｂｕｎｇｅ；ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ；ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｒｙ；ｆｌｏｗ－ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ　ｍｅｔｈｏｄ；ａｎｔｉｏｘｉｄａｔｉｖｅｅｆｆｅｃｔ

中图分类号：

Ｏ６５７．３２　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　　文献标识码：

Ａ　　　　　　　　　　　　　　　文章编号：

１００２－６６３０（２００６）０１－０１９９－０４

山楂（Ｃｒａｔａｅｇｕｓ　Ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ　Ｂｕｎｇｅ　ｖａｒ．）为蔷薇科落叶小乔木，又名红果。

主要分布在北温带，产于辽宁的山楂叫北山楂，果实大，直径约２．５ｃｍ，皮色红，果肉厚，味酸甜。

山楂的营养十分丰富，所含钙列居各水果的第一位；所含维生素Ｂ２与香焦相当，并列为水果的首位；所含维生素Ｃ仅次于大枣、猕猴桃和沙棘，居各种水果的第四位；含胡萝卜素仅次与杏子，居水果第二位，山楂含糖量为２０％左右，是苹果和梨的两倍［１］，山楂果含有人体必须的氨基酸、多种脂肪酸、黄酮和糖类等营养成分，山楂果中的黄酮类成分可促使心血管扩张，冠状动脉血流量增加，产生降血压作用。

研究表明。

黄酮类化合物是一种天然的抗氧化剂，具有清除人体中超氧离子自由基抗衰老，增加机体免疫力的生理活性作用［２］。

本文采用超声波法从山楂果中提取黄酮类化合物，并建立了山楂果中黄酮的光谱分析方法［３，４］。

利用流动注射化学发光法研究了山楂果　

［５］

的抗氧化性能。

实验结果表明，山楂果能有效的抑制超氧阴离子自由基诱导的鲁米诺化学发光，并且随着发光体系中山楂果浓度的升高，发光强度呈现下降趋势。

该实验结果显示山楂果具有较强的抗氧化性能，并且抗氧化性能随着浓度的增加而增加，这将为进一步开发利用山楂果提供了科学依据。

１

材料与仪器

区，洗净凉干后榨成鲜汁备用。

邻苯三酚（ＡＲ级，贵州遵义市第二化工厂）用０．０１ｍｏｌ／Ｌ　ＨＣｌ，配成０．０１ｍｏｌ／Ｌ储备液，使用前用水稀释浓度为５×１０－５ｍｏｌ／Ｌ；０．０１ｍｏｌ／Ｌ　Ｎａ２ＣＯ３－ＮａＨＣＯ３缓冲溶液（ＡＲ级），用前新鲜配制，ｐＨ值用酸度计准确调至９．９５；Ｌｕｍｉｎｏｌ（ＡＲ级，陕西师范大学）用０．０５ｍｏｌ／Ｌ　ＮａＯＨ配成０．０５ｍｏｌ／Ｌ，在避光处保存（所用试剂均为分析纯，水为二次蒸馏水）。

２２．１

山楂果中黄酮含量的测定

超声波法提取山楂果中黄酮［５，６］

称取山楂果鲜汁１．００ｇ置于锥形瓶中，加入９５％乙醇１０ｍｌ，在冰水浴中用超声波振荡器振荡２０ｍｉｎ，将提取液过滤至５０ｍｌ容量瓶中，残渣再重复振荡提取两次，三次滤液合并，用９５％乙醇定容至５０ｍｌ。

２．２２．２．１

吸收曲线的绘制及测定波长的确定

从２．１山楂果超声波法提取黄酮贮备液中，准确

吸取试液５ｍｌ，置于１０ｍｌ容量瓶中，用１％三氯化铝溶液定容至刻度，以１％三氯化铝溶液为参比液在２００～４００ｎｍ范围内扫描，得到其吸收光谱，最大吸收波长为２６８ｎｍ。

２．２．２

从１．１槲皮素黄酮标准储备液中准确吸取０．２０ｍｌ

于１０ｍｌ容量瓶中，用１％三氯化铝溶液定容至刻度，以１％三氯化铝溶液为参比液在２００～４００ｎｍ范围内扫描，得到其吸收光谱，最大吸收波长为２６８ｎｍ。

由２．２．１和２．２．２可知，超声波法提取山楂果中黄酮可用槲皮素做黄酮标准品，测定波长为２６８ｎｍ。

２．３

标准曲线的绘制

分别取０．１０、０．１５、０．２０、０．２５、０．３０ｍｌ的槲皮素标准储备液，注入１０ｍｌ容量瓶中，按２．２．２步骤在其波长为λ＝２６８ｎｍ分别测定其吸光度值并且给出Ａ值，结果见表１。

求得Ａ与浓度关系的回归方程为：

Ｃ＝１２．１９３×Ａ－０．０４３５

根据Ａ与浓度的关系可绘制出线性很好的标准曲线．求得相关系数ｒ＝０．９９９４，经查表得临界相关系数ｒ（９９％，ｎ－２）　＝０．９１７０，ｒ＞ｒ（９９％，　ｎ－２），说明黄酮的浓度在３．００～９．００

ＴＵ－１２０１紫外可见分光光度计　　　　北京普析通用仪器有限责任公司；旋转蒸发仪（ＲＥ５２ＣＳ型）　　　　上海亚荣生化仪器厂；电热恒温水浴锅（ＨＨＳ２１－４型）　　　　上海医疗器械五厂；旋片式真空泵中华牌加热器（ＺＨＱ型）　　　　巩义市英峪仪器一厂；电子节能控温仪（ＤＫＷ－ＩＩＩ型）　　　　巩义英峪仪器一厂；ＩＦＦＭ－Ｄ型流动注射化学发光仪　　　　西安瑞迈电子科技有限公司；ｐＨＳ－３Ｃ型精密ｐＨ计　　　　上海精密科学仪器有限公司。

槲皮素黄酮标准品：

中国药品生物制品鉴定所。

槲皮素黄酮标准储备液：

称取０．０１５ｇ槲皮素标准品，置于５０ｍｌ的容量瓶中，加乙醇（９５％）使其溶解稀释至刻度，摇匀备用。

山楂果样品的处理：

２００３年１０月采自辽宁本溪山

ｐ

ａ

表１　　Ａ值与槲皮素黄酮浓度的关系

Table1RelationshipbetweenAandflavonoidsconcentrationsＳａｆｌａｖｏｎｏｉｄｓｃｏｎｃ．（μｇ／ｍｌ）　　　　　　　　　　Ａ

３．００００．２５７０

４．５０００．３７７９

６．００００．４９１９

７．５０００．６０５０

９．００００．７４９９

ｂｃｄ

ＶＨＶＭＴ

ＲＡＭＰ

（μｇ／ｍｌ）范围内，Ａ与浓度Ｃ之间呈良好的线性关系，可按标准曲线法进行定量分析。

２．４

稳定性实验

用与绘制吸收曲线配制相同的方法配制的样品进行稳定性实验，结果表明：

样品放置４ｈ以上，测得其吸光度值不变。

２．５

回收率及方法精密度

根据前面确定的测试条件，按上述实验方法制备５个不同浓度的样品，按标准加入标准物，在测定波长下测定Ａ，求得其平均回收率，标准偏差及变异系数，结果分别列于表２和表３。

由表２和表３可以看出本法的回收率为９６％～１０５％，变异系数小于０．１４％，方法的准确度与精密度均较高。

样品分析

称取山楂果样品，按２．２、实验方法制备样品溶液，按操作条件，在测定波长λ＝２６８ｎｍ处测其吸光度，分析结果山楂果黄酮含量为０．９９３ｍｇ／ｇ。

表２　　方法精密度

Table2Precisionofthemethod

序号１２３４５

标样浓度（μｇ／ｍｌ）３．００４．５０６．００７．５０９．００

测定值（ｎ＝９）测定平均值（μｇ／ｍｌ）（μｇ／ｍｌ）３．０８６８～３．０９５１３．０９０３４．５５９０～４．５７４８４．５６４５５．９４６１～５．９７０５５．９５６０７．３１６２～７．３３５７７．３２５８９．０９１３～９．１０７１９．０９６６

标准偏差

（μｇ／ｍｌ）０．００３２０．００４６０．００８１０．００７６０．００５１

变异系数（％）０．１００．１００．１４０．１００．１０

ＷＷ

Ｐ－蠕动泵；Ｖ－进样阀；

Ｃ－流通池；ＰＭＴ－光电倍增管；ＡＭＰ－放大器；ＨＶ－负高压：

８００Ｖ；

Ｒ－记录仪；Ｗ－废液。

ａ－样品；ｂ－邻苯三酚；ｃ－Ｈ２Ｏ；ｄ－Ｎａ２ＣＯ３－ＮａＨＣＯ３缓冲溶液　（加入

ｌｕｍｉｎｏｌ）。

图１　　　流动注射化学发光分析流路图

Fig.1Schematicofflow-injectionchemiluminescence

酸盐缓冲溶液－ｌｕｍｉｎｏｌ发光体系的发光，测三次，取峰值平均值进行定量。

发光强度以计数表示。

３．２

氧化性测定及抑制率计算

按３．１所采用的发光体系，测定一系列浓度山楂果

２．６

的抑制后的发光，分别测定三次，同样取峰值平均值进行定量。

发光强度以计数表示。

以邻苯三酚—碳酸盐缓冲溶液—ｌｕｍｉｎｏｌ　发光体系的发光强度为空白发光峰值，可计算出加入山楂果后抑制发光的程度。

抑制率％＝（空白发光峰值－加山楂果后的发光峰值）／空白发光峰值×１００％３．３

ｌｕｍｉｎｏｌ浓度对抑制率的影响

取浓度为２．５×１０－４ｍｏｌ／Ｌ的邻苯三酚溶液，ｐＨ值为９．９５的Ｎａ２ＣＯ３－ＮａＨＣＯ３缓冲溶液，抑制实验中的山楂果浓度为５ｍｇ／ｍｌ，改变ｌｕｍｉｎｏｌ的用量，分别取５０、１００、１５０、２００、２５０、５００μｌ、１ｍｌ的ｌｕｍｉｎｏｌ用缓冲溶液将其稀释至２５ｍｌ进行实验。

实验结果表明ｌｕｍｉｎｏｌ的加入量对抑制率有一定的影响。

当ｌｕｍｉｎｏｌ的浓度为０．２ｍｍｏｌ／Ｌ时山楂果的抑制率达到最大值。

因此本实验选ｌｕｍｉｎｏｌ的浓度为０．２ｍｍｏｌ／Ｌ　时为适宜的测定条件。

缓冲溶液的ｐＨ值对抑制率的影响

取浓度为２．５×１０－４ｍｏｌ／Ｌ的邻苯三酚溶液，浓度为０．２ｍｍｏｌ／Ｌ的ｌｕｍｉｎｏｌ溶液，抑制实验中山楂果的浓度为５ｍｇ／ｍｌ，仅改变Ｎａ２ＣＯ３－ＮａＨＣＯ３缓冲溶液的ｐＨ值进行实验。

实验结果表明，ｐＨ值对抑制率有一定的影响，当ｐＨ值为９．６２时抑制率达到最大值，但是其发光强度很低，灵敏度不好；当ｐＨ值为１０．５８时，抑制率低；当ｐＨ值为９．９５时，抑制率和ｐＨ值为９．６２时的抑制率仅差２％，而且发光强度适宜，灵敏度也比较好，便于准确读数。

故本实验选ｐＨ值９．９５为适宜的测定条件。

３．５

邻苯三酚浓度对抑制率的影响

取ｐＨ值为９．９５的Ｎａ２ＣＯ３－ＮａＨＣＯ３缓冲溶液，浓度３．４

表　３　　方法回收率

Table3Recoveryratioofthemethod

序号１２３

标样浓度（μｇ／ｍｌ）３．０９０１４．５６５１５．９５５９

加入量（μｇ／ｍｌ）３．００００３．００００３．００００

理论值（μｇ／ｍｌ）６．０９０１７．５６５１８．９５５９

实测值（μｇ／ｍｌ）５．９７０５７．３３３３９．０９６２

回收率（％）９６９２１０５

３３．１测定

山楂果抗氧化性能的测定

邻苯三酚－碳酸盐缓冲溶液－ｌｕｍｉｎｏｌ发光体系及其在比色管中分别加入５×１０－５ｍｏｌ／Ｌ的邻苯三酚溶

液、ｐＨ为９．９５的碳酸盐缓冲溶液（含浓度为０．２ｍｍｏｌ／Ｌ的ｌｕｍｉｎｏｌ），启动ＩＦＦＭ－Ｄ型流动注射化学发光仪，按下图１连接流路，流速均为２．５ｍｌ／ｍｉｎ，测出邻苯三酚－碳

为０．２ｍｍｏｌ／Ｌ的ｌｕｍｉｎｏｌ溶液，抑制实验中山楂果的浓度

为５ｍｇ／ｍｌ，仅改变邻苯三酚的浓度，分别取浓度为０．０１ｍｏｌ／Ｌ邻苯三酚０．２５、０．１２５、０．１、０．０２５ｍｌ稀释至２５ｍｌ，即得浓度为１×１０－４、５×１０－５、４×１０－５、１×１０－５ｍｏｌ／Ｌ的邻苯三酚溶液进行实验。

实验结果可知，邻苯三酚的浓度对抑制率也有一定的影响。

可以看出当邻苯三酚的浓度为５×１０－５ｍｏｌ／Ｌ时山楂果的抑制率达到最大值。

因此本实验选邻苯三酚浓度为　５×１０－５ｍｏｌ／Ｌ为适宜条件进行实验。

由以上实验可得出测定山楂果的抗氧化性能的最佳条件为：

ｌｕｍｉｎｏｌ的浓度０．２ｍｍｏｌ／Ｌ，缓冲溶

表４　　　山楂果抗氧化性能的测定

Table4DeterminationofantioxidationforC.pinnatifidaBungeＣ（ｍｇ／ｍｌ）０．１２０．４００．８０１．００１．６０２．００２．８０４．００１０．０

Ｉ０７５５７５５７５５７５５７５５７５５７５５７５５７５５

Ｉ６６６５８８４９３４２４３１２２４８１７７１１６２５

（Ｉ０－Ｉ）／Ｉ０１１．７９２２．１２３４．７０４３．８４５８．６８６７．１５７６．５６８４．６４９６．６９

Ｉ＇８８．２１７７．８８６５．３０５６．１６４１．３２３２．８５２３．４４１５．３６３．３１

液的ｐＨ值９．９５，邻苯三酚的浓度５×１０－５ｍｏｌ／Ｌ。

３．６

山楂果抗氧化性能的测定

在选定的最佳条件下，将山楂果溶液配制成１．６０、２．００、４．００、５．６０、１２．０、２０．０、２８．０、４０．０ｍｇ／ｍｌ一系列浓度的溶液进行实验。

实验结果如表４和图２：

由图２可以看出，随着山楂果浓度的逐渐增加，化学发光强度呈现逐渐降低的趋势，而抑制率则呈现逐渐增强的趋势，说明山楂果具有较强的抗氧化性能，其ＩＣ５０（抑制率为５０％时的溶液的浓度）为１．２３ｍｇ／ｍｌ。

４

结果与讨论

实验结果表明山楂果中含有丰富的黄酮类化合物，黄酮类化合物是一种天然的抗氧化剂，由山楂果抗氧化性能的测定可以看出山楂果具有较强的抗氧化性能，山楂果的ＩＣ５０（抑制率为５０％时的溶液的浓度）为１．２３ｍｇ／ｍｌ，当山楂果提取液的浓度为１０．０ｍｇ／ｍｌ时，抗氧化性为９６．６９％。

黄酮类化合物含量和抗氧化性都随着山楂果浓度的逐渐增加而增加即的黄酮含量与抗氧化性能呈现明显的构效关系。

参考文献：

１００

８０（％）

６０４０２０

［１］［２］［３］

［４］［５］

０１０２０３０４０

Ｃ（ｍｇ／ｍｌ）

图２　　山楂果抗氧化性测定

Fig.2DeterminationofantioxidationforC.pinnatifidaBunge

叶璐君，　杨师尧．　山楂的保健功能与食疗方［Ｍ］．　北京：

　金盾出版社，２０００．　１－４．

郑建仙．　功能性食品（第二卷）［Ｍ］．　北京：

　中国轻工业出版社，　１９９９．７６５－７６６．

陈海光，　余以刚，　曾庆考．　荷叶黄酮及生物碱的提取研究［Ｊ］．　食品科学，　２００２，　２３（１）：

　６９－７１．

杜薇，　刘国文．　刺梨总黄酮的含量测定及资源利用［Ｊ］．　食品科学，２００３，　２４（１）：

　１１２－１１４．

Ｓｏｎｇ　ｚｈｅｎｇ－ｈｕａ，　ｚｈａｎｇ　ｎｉ．　Ｆｌｏｗ－ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｃｈｅｍｉｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ　ｄｅｔｅｒｍｉ－ｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｒｅｓｅｒｐｉｎｅ　ｉｎ　ｍｉｄｉｃｉｎｅ　ａｎｄ　ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｆｌｕｉｄｓ　ｗｉｔｈ　ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ－ｒｅａｇｅｎｔ－ｒｅｌｅａｓｅ　ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ［Ｊ］．　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，　２００３，　２１：

１７５－１８０．

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信　　息