血清清蛋白γ球蛋白的分离提纯与鉴定Word文档格式.docx

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血清球蛋白在半饱和状态下发生沉淀，而血清清蛋白在完全饱和状态下沉淀，利用此特性可把蛋白质分段沉淀下来，即在半饱和的中，血清蛋白不沉淀，而血球蛋白沉淀，离心后清蛋白主要在上清液中，沉淀蛋白加少量蒸馏水即可溶解，由此达到分离清蛋白和白蛋白的目的。

2．脱盐

盐析得到的蛋白质含有高浓度中性盐，需要有脱盐过程去除蛋白质遗留的中性盐，常用方法有：

透析法脱盐和凝胶层析法脱盐。

本实验采用凝胶层析法脱盐，在葡聚糖凝胶柱中，蛋白质与盐的分子量不同，当样品通过层析柱时，分子量较大的蛋白质因为不能通过网孔而进入凝胶颗粒，沿着凝胶颗粒间的间隙流动，所以流程较短，向前移动速度较快，最先流出层析柱；

反之，盐的分子量较小，可通过网孔而进入凝胶颗粒，所以流程长，向前移动速度较慢，流出层析柱的时间较后。

分段收集蛋白质洗脱液，即可得到脱盐的蛋白质。

3.纯化（离子交换层析）

离子交换是溶液中的离子和交换剂上的离子进行可逆的的交换过程。

带正电荷的交换剂称为阴离子交换剂；

带负电荷的交换剂称为阳离子交换剂。

本实验采用的DEAE纤维素是一种阴离子交换剂，溶液中带负电荷的离子可与其进行交换结合，带正电荷的点正电荷的离子则不能，这样便可达到分离纯化的目的。

脱盐后的蛋白质溶液尚含有各种球蛋白，利用它们的等电点的不同可进行分离。

血清中各种蛋白质的pI各不相同，因此，在同一醋酸铵缓冲液中，各蛋白质所带的电荷不同，可以通过DEAE离子交换层析将血清清蛋白和伽马球蛋白分离出来。

4.纯度鉴定（电泳）

血清中各种蛋白质的等电点不同，一般都低于pH7.4。

它们在pH8.6的缓冲液中均解离带负电荷，在电场中向正极移动。

由于血浆中各种蛋白质分子大小、形状及所带的电荷量不同，因而在醋酸纤维素薄膜上电泳的速度也不同。

因此可以将它们分离为清蛋白（Albumin）、α1-球蛋白、α2-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白5条区带。

三、材料与方法：

以流程图示意

1.实验材料

人血清、葡聚糖凝胶G-25（SephadexG-25）层析柱、二乙基氨基乙基（DEAE）纤维素离子交换层析柱、饱和硫酸铵溶液、0.3mol/l的PH6.5醋酸铵缓冲液、0.06mol/l的PH6.5醋酸铵缓冲液、0.02mol/l的PH6.5醋酸铵缓冲液、1.5mol/l的NaCl-0.3mol/NH4AC溶液、20%磺基水杨酸、1%BaCl2溶液、电泳仪、电泳槽。

2.实验方法

1）实验流程

纯化

鉴定

脱盐

粗提

DEAE纤维素离子交换层析

醋酸纤维素薄膜电泳

葡聚糖凝胶层析

盐析法进行粗分离

2）实验步骤

1　盐析：

中性盐沉淀步骤

步骤

操作

（1）盐析

取离心管一个，加入0.8mol人或动物血清，边摇边缓慢滴入饱和硫酸铵溶液0.8ml，混匀后室温下放置10min，离心10min（4000r/min）。

用滴管小心吸出上清液置于试管中，作为纯化清蛋白之用

（2）溶解沉淀

向离心管的沉淀加入0.6mol蒸馏水，振摇使之溶解，作为纯化γ球蛋白用

注意：

上层清夜尽量全部吸出，但不可吸出沉淀物。

2　脱盐：

过凝胶层析柱步骤

（1）调节层析柱液面

葡萄糖凝胶G-25层析柱经0.02mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液流洗平衡后，取下恒压储液瓶管塞，小心控制柱下端螺旋夹，使层析柱上的缓冲液面刚好下降到凝胶床液面

（2）加样品

用细长滴管吸取上述经盐析所得的粗制蛋白质溶液，小心而缓慢的加入凝胶床上面，柱下端用10ml刻度离心管接液，拧松柱下螺旋夹，调节适当流速，使样品进入凝胶床，至液面降到凝胶床表面为止

（3）洗层析柱

小心用0.02mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液洗涤层析柱内壁，以洗涤粘在柱壁上的蛋白质样品液

（4）洗脱

待样品液进入凝胶床内，继续用0.02mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液流洗，同时注意流出液量

（5）检测及收集蛋白质

在黑色反应板凹孔内加2滴0.92mol/L磺基水杨酸，随时检查流出液是否含有蛋白质，①滴流出液1滴黑色反应板凹孔内接触到磺基水杨酸溶液，若出先白色混浊或沉淀，表示已有蛋白质流出（当凝胶床体积为5.5ml时，流出的液体量约为2ml就可能有蛋白质流出），立即收集流出的蛋白质溶液。

②收集约12滴后，滴流出液1滴于预先加有1滴0.05mol/L（1%）BaCl2的黑色反应板凹孔内，一旦见出现白色沉淀（表示有SO42-），立即停止收集

收集的蛋白质溶液即可分别过DEAE纤维素柱，进行离子交换层析

（6）层析柱再生平衡

收集蛋白质溶液后的凝胶层析柱继续用0.02mol/LpH6.5NH4AC缓冲液流洗，用BaCl2液检测层析柱流出液，当流出液用BaCl2检查SO42-为阴性后，继续洗涤2~3ml。

凝胶层析柱即可再生平衡，可再次使用

a.当层析柱的缓冲液面或样品液面刚好下降到纤维素床表面时，不要使液面低于纤维素膜表面，以免空气进入凝胶床。

b.往层析住加样品或缓冲液洗脱事，要小心缓慢加入，不要将纤维素冲起或破坏纤维素床表面平整。

C.切勿将检测蛋白质的磺基水杨酸与检查硫酸根的氯化钡混淆，因为二者相应生成物的沉淀均为白色。

d.洗脱是应注意及时收集样品，切勿使蛋白质峰溶液流失。

e.葡萄糖凝胶价钱昂贵，要回收再生避免损耗，严禁倒掉。

3　球蛋白的纯化：

过DEAE纤维素阴离子交换层析柱

操作

（1）调节层析柱换冲液面

经处理再生好的DEAE纤维素层析柱，取下其恒压储液瓶管塞。

小心控制柱下端螺旋夹，使柱上缓冲液面刚好下降到纤维素床表面。

柱下端用10ml刻度离心管收集液体，以便了解加样后液体的流出量。

将除除盐后收集的球蛋白溶液缓慢加到纤维素柱上，调节层析柱下端的螺旋夹使样品进入纤维素柱床，至液面降到纤维素柱床表面为止。

（3）析层析

小心用1ml0.02mol/LPH6.5的醋酸铵缓冲液洗涤沾在柱壁上的蛋白质样品液。

待样品进入纤维素柱床内，继续用0.02mol/LPH6.5的醋酸铵缓冲液流洗，。

同时注意流出液量

流洗时，随时用0.92mol/L磺基水杨酸检查流出液中是否含蛋白质（方法同前）当有蛋白质出现时，立即连续收集三管，每管10滴，。

此不被DEAE纤维素吸附的蛋白质即为纯化的γ-球蛋白，取其中蛋白质浓度最高的一管留作鉴定用。

d.洗脱是应注意及时收集样品，切勿使蛋白质峰溶液流失，特别是收集伽马球蛋白时。

4　清蛋白的纯化：

（1）调节层析柱缓冲液面

此时DEAE纤维素层析柱不必再生，可直接用于纯化清蛋白

小心控制住下端螺旋夹，使柱上缓冲液面刚好下降到纤维素床表面，柱下端用10ml刻度离心管收集液体，以便了解加样后液体流出量

将除盐后收集的清蛋白溶液缓慢加到纤维素柱上，调节层析柱下端的螺旋夹，使样品进入纤维素柱床，至液面降到纤维素柱床表面为止

（3）洗层析柱

将除盐的粗制清蛋白溶液上柱后，改到0.06mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液洗脱

小心用1ml0.06mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液洗涤沾在柱壁上的蛋白质样品液

待样品进入纤维素柱床内，继续用0.06mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液流洗。

同时注意流出液量。

流出约6ml（其中含α-球蛋白及β-球蛋白）后，将柱上的缓冲液面降至与纤维素表面平齐。

改用0.3mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液洗脱

用0.92mol/L（20%）磺基水杨酸检查流出液是否含有蛋白质（方法同前）。

由于纯化的清蛋白仍然结合有少量胆色素等物质，故肉眼可见一层浅黄色的成分被0.3mol/L、pH6.5NH4AC缓冲液洗脱下来，大约改用0.3mol/LNH4AC缓冲液洗脱约2.5ml时，即可在流出液中试出有蛋白质出现，立即连续收集2管，每管10滴，此即为纯化的清蛋白液，留作纯度鉴定用

（6）纤维素层析住的再生与平衡

用过的DEAE纤维素层析柱，应重新再生平衡

先用约6ml1.5mol/LNaCl-0.3mol/LNH4AC溶液流洗，再用0.02mol/LpH6.5NH4AC液约10ml流洗平衡即可

a.当层析柱的缓冲页面或样品页面刚好下降到纤维素膜表层时，不要是液面低于纤维素膜表面，以免空气进入凝胶床。

C.使用时切勿将各时段所用的溶液浓度搞混。

5　纯度鉴定（醋酸纤维素薄膜电泳）

准备

电泳槽准备：

将电泳槽置于水平平台上，两侧注入等量的巴比妥缓冲溶液，使其在同一水平a，页面与支架距离2~2.5cm，用三层滤纸或双层纱布搭桥

薄膜准备：

将醋酸纤维薄膜裁成2cm乘以8cm大小共四段，在薄膜一段1.5cm处用铅笔轻轻画上一条横线为点样线，末端用铅笔做记号。

进入巴比妥溶液中直至浸润完全。

用镊子青青取出，粗面朝上，平放在两层干滤纸中间，轻轻拭去多余的缓冲液。

点样

薄膜片置于干净的玻璃或滤纸片上，粗面朝上，用玻片或载玻片一段的截面在盛有样品的直接沾取2~3微升待测品，让后将样品与薄膜点样先轻轻接触，均匀分布在点样线上，带样品渗入薄膜后移开，四种样品分别点样。

电泳

将已点好的样品薄膜放在铺有滤纸盐桥的电泳槽上，点样面朝下，点样端至阴极，轻轻拉平薄膜。

平衡约5min，使缓冲液渗透大道平衡。

接好电路，调节电压开始电泳。

待各个样品没有变化停止电泳，并轻轻取出。

染色漂洗和鉴定

将染色液倒入大培养皿中，电泳完毕后用镊子取出薄膜，直接浸入染色约5min。

后将薄膜取出，漂洗至背景无色，观察电泳情况得出结论。

四、结果与讨论：

结果：

实验数据、现象、图谱；

讨论：

以结果为基础的逻辑推论，并得出结论。

1.实验结果

从电泳图谱中可以看出，清蛋白第一管和清蛋白第二管的蛋白质与血清的清蛋白电泳图谱几乎一致，可以确定管内的蛋白质为清蛋白，同理球蛋白管内的蛋白质为γ-球蛋白。

2.实验讨论

1）血清电泳中个别电泳带的两条带之间界限不明显

1　染色时，醋酸纤维薄膜不是一张一张放入染色液的，在染色固定前，薄膜与薄膜之间重叠，造成薄膜上还未固定的血清蛋白彼此粘连。

2　染色时间控制不合适。

因为时间长，薄膜底色深不易脱去；

时间短，着色浅不宜区分，或造成条带染色不均；

3　透明时间控制不合适，如在透明液中浸泡时间太长则薄膜溶解，太短则透明度不佳。

2）第一管血清蛋白电泳带参差不齐

1　薄膜表面吸干时吸的太干或吸的不完全。

因为点样时应将膜片表面多余的缓冲液用滤纸吸去，以免缓冲液太多引起样品扩散。

但也不能吸得太干，太干则样品不易进入薄膜的网孔内，而造成电泳起始点参差不齐，影响分离效果；

2　点样不均匀。

3）第一管血清蛋白中含有少量杂质致使电泳图出现偏差。

思考题

1.硫酸铵盐析一步,为什么是0.8ml血清加0.8ml饱和硫酸铵?

血清球蛋白在半饱和硫酸铵溶液中发生沉淀，而血清清蛋白在完全饱和硫酸铵溶液中沉淀，将血清和饱和硫酸铵等体积混合后，其状态相当于在半饱和硫酸铵溶液中，在此状态下，球蛋白沉淀，而清蛋白不沉淀，因而可以将其分开。

2.为什么实验中DEAE纤维素柱分离γ-球蛋白后不用再生,可直接用于纯化清蛋白?

因为γ-球蛋白带正电荷，不与DEAE结合，会从层析柱中首先洗脱出来，所以分离γ-球蛋白后可直接用于纯化清蛋白。

3.应用醋酸纤维素薄膜电泳鉴定分离纯化后的血清清蛋白和γ-球蛋白的纯度,根据什么来确定它是清蛋白还是γ-球蛋白?

判定它们纯度的依据是什么?

由于血浆中各种蛋白质分子大小、形状及所带的电荷量不同，因而在醋酸纤维素薄膜上电泳的速度也不同，实验的得到的电泳带的位置也不相同。

在5种蛋白中，血清蛋白的等电点和相对分子质量最小，γ-球蛋白的最大，血清蛋白的含量远远高于γ-球蛋白，所以在血清的电泳结果中，最前面的颜色较深的电泳带属于血清蛋白，最后面的颜色较浅的电泳带属于γ-球蛋白。

所以将4张醋酸纤维素薄膜上的电泳带进行对比，即可的得知纯化后的液体中含有那种蛋白。

根据电泳鉴定的原理以及血清电泳的结果可得知：

可以凭借薄膜上出现的电泳带的数目来判断纯度。

如若只出现一条，则纯度较高，条数越多，纯度越低。