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在感染能力方面可有效地感染神经元细胞、肝细胞、心肌细胞、肿瘤细胞、内皮细胞、干细胞等多种类型的细胞,从而达到良好的的基因治疗效果,在美国已经开展了临床研究,效果非常理想,因此具有广阔的应用前景。

目前慢病毒也被广泛地应用于表达RNAi的研究中。

由于有些类型细胞脂质体转染效果差,转移到细胞内的siRNA半衰期短,体外合成siRNA对基因表达的抑制作用通常是短暂的,因而使其应用受到较大的限制。

采用事先在体外构建能够表达siRNA的载体,然后转移到细胞内转录siRNA的策略,不但使脂质体有效转染的细胞种类增加,而且对基因表达抑制效果也不逊色于体外合成siRNA,在长期稳定表达载体的细胞中,甚至可以发挥长期阻断基因表达的作用。

在所构建的siRNA表达载体中,是由RNA聚合酶Ⅲ启动子来指导RNA合成的,这是因为RNA聚合酶Ⅲ有明确的起始和终止序列,而且合成的RNA不会带polyA尾。

当RNA聚合酶Ⅲ遇到连续4个或5个T时,它指导的转录就会停止,在转录产物3'

端形成1~4个U。

U6和H1RNA启动子是两种RNA聚合酶Ⅲ依赖的启动子,其特点是启动子自身元素均位于转录区的上游,适合于表达~21ntRNA和~50ntRNA茎环结构(stemloop)。

在siRNA表达载体中,构成siRNA的正义与反义链,可由各自的启动子分别转录,然后两条链互补结合形成siRNA;

也可由载体直接表达小发卡状RNA(smallhairpinRNA,shRNA),载体包含位于RNA聚合酶Ⅲ启动子和4~5T转录终止位点之间的茎环结构序列,转录后即可折叠成具有1~4个U3'

突出端的茎环结构,在细胞内进一步加工成siRNA。

构建载体前通常要通过合成siRNA的方法,寻找高效的siRNA,然后从中挑选符合载体要求的序列,将其引入siRNA表达载体。

慢病毒载体(Lentiviralvector)较逆转录病毒载体有更广的宿主范围,慢病毒能够有效感染非周期性和有丝分裂后的细胞。

慢病毒载体能够产生表达shRNA的高滴度的慢病毒,在周期性和非周期性细胞、干细胞、受精卵以及分化的后代细胞中表达shRNA,实现在多种类型的细胞和转基因小鼠中特异而稳定的基因表达的功能性沉默,为在原代的人和动物细胞组织中快速而高效地研究基因功能,以及产生特定基因表达降低的动物提供了可能性。

慢病毒表达载体包含了包装、转染、稳定整合所需要的遗传信息。

慢病毒包装质粒可提供所有的转录并包装RNA到重组的假病毒载体所需要的所有辅助蛋白。

为产生高滴度的病毒颗粒,需要利用表达载体和包装质粒同时共转染细胞,在细胞中进行病毒的包装,包装好的假病毒颗粒分泌到细胞外的培养基中,离心取得上清液后,可以直接用于宿主细胞的感染,目的基因进入到宿主细胞之后,经过反转录,整合到基因组,从而高水平的表达效应分子。

二、这一系统的目的,主要是为了解决以下问题:

1.对于一些较难转染的细胞,如原代细胞、干细胞、不分化的细胞等,能大大提高目的基因转导效率,而且目的基因整合到宿主细胞基因组的几率大大增加,这就为RNAi,cDNA克隆以及报告基因的研究提供了一个有利的途径。

2.进行稳转细胞株的筛选;

3.为活体动物模型实验提供高质量的包含目的基因的病毒液;

在细胞相关的实验操作中,对于一些按常规方法难以转染甚至无法转染的细胞,通过病毒介导的实验能够大大提高基因的转导效率,以达到目的基因的高效瞬时表达。

三、慢病毒载体介绍

慢病毒载体(Lentiviralvector,LVs)是在HIV-1病毒基础上改造而成的病毒载体系统,它能高效的将目的基因(或RNAi)导入动物和人的原代细胞或细胞系。

慢病毒载体基因组是正链RNA,其基因组进入细胞后,在细胞浆中被其自身携带的反转录酶反转为DNA,形成DNA整合前复合体,进入细胞核后,DNA整合到细胞基因组中。

整合后的DNA转录mRNA,回到细胞浆中,表达目的蛋白;

或产生RNAi干扰。

慢病毒载体介导的基因表达或RNAi干扰作用持续且稳定,原因是目的基因整合到宿主细胞基因组中,并随细胞基因组的分裂而分裂。

另外,慢病毒载体能有效感染并整合到非分裂细胞中。

以上特性使慢病毒载体与其它病毒载体相比,比如不整合的腺病毒载体、整合率低的腺相关病毒载体、只整合分裂细胞的传统逆转录病毒载体,有鲜明的特色。

大量文献研究表明,慢病毒载体介导的目的基因长期表达的组织或细胞包括脑、肝脏、肌肉、视网膜、造血干细胞、骨髓间充质干细胞、巨噬细胞等。

慢病毒载体不表达任何HIV-1蛋白,免疫原性低,在注射部位无细胞免疫反应,体液免疫反应也较低,不影响病毒载体的第2次注射。

四、慢病毒载体的构建

1.构建原理

慢病毒属于逆转录病毒科,但其基因组结构复杂,除gag、pol和env这3个和单纯逆转录病毒相似的结构基因外,还包括4个辅助基因,vif、vpr、nef、vpu和2个调节基因tat和rev。

HIV21是慢病毒中最具特征性的病毒,第一个慢病毒载体系统即以此病毒为基础进行构建的。

慢病毒载体的构建原理就是将HIV21基因组中的顺式作用元件(如包装信号、长末端重复序列)和编码反式作用蛋白的序列进行分离。

载体系统包括包装成分和载体成分:

包装成分由HIV21基因组去除了包装、逆转录和整合所需的顺式作用序列而构建,能反式提供产生病毒颗粒所需的蛋白;

载体成分与包装成分互补,含有包装、逆转录和整合所需的HIV21顺式作用序列。

同时具有异源启动子控制下的多克隆位点及在此位点插入的目的基因。

为降低两种成分同源重组产生有复制能力的病毒(RCV)的可能性,将包装成分的5′LTR换成巨细胞病毒(CMV)立即早期启动子,3′LTR换成SV40polyA位点等。

将包装成分分别构建在两个质粒上,即一个表达gag和pol、另一个表达env。

根据这个原理,Naldini和Kafri等构建了三质粒表达系统。

2.三质粒表达系统

三质粒表达系统包括包装质粒、包膜蛋白质粒和转移质粒。

其中包装质粒在CMV启动子的控制下,表达HIV21复制所需的全部反式激活蛋白,但不产生病毒包膜蛋白及辅助蛋白vpu;

包膜蛋白质粒编码水泡性口炎病毒G蛋白(VSV2G),应用VSV2G包膜的假构型慢病毒载体扩大了载体的靶细胞嗜性范围,而且增加了载体的稳定性,允许通过高速离心对载体进行浓缩,提高了滴度;

转移质粒中除含有包装、逆转录及整合所需的顺式序列,还保留350bp的gag和RRE,并在其中插入目的基因或标志基因(绿色荧光蛋白GFP)。

将载体系统分成三个质粒最大的益处是使序列重叠的机会大大减少,减少载体重组过程中产生RCV的可能性。

通过三质粒共转染293T细胞,超速离心后病毒滴度可达109IU/ml。

3.四质粒表达系统

为了减少HIV21包装结构的序列同源性,进一步减少重组成RCV的可能性,Dull等人将辅助基因去除。

但由于gag2pol的转运需要rev,因此,在上述的三质粒系统的基础上,构建成四质粒表达系统,该系统加上含rev的质粒减少了产生RCV的可能性,而且对非分裂期细胞转导效率无影响。

五、慢病毒载体应用

1.将目的基因/RNAi基因转入难以转染的细胞,比如神经元细胞、干细胞或其它原代细胞;

2.将目的基因/RNAi基因转入动物组织,以期获得长期表达;

3.构建稳定表达目的蛋白/RNAi的细胞系,再用exvivo的方法导入动物体内;

4.基因治疗;

5.转基因动物;

6.基因敲除;

7.药物研究:

构建表达受体蛋白的细胞系,研究药物的作用;

8.快速建立生产目的蛋白的细胞系,非常有前途的真核细胞表达方法。

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