尼克酸维生素PP又称烟酸的测定方法.docx

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尼克酸维生素PP又称烟酸的测定方法

尼克酸（维生素PP，又称烟酸）的测定方法

此处介绍微生物法、比色法以及复合维生素制剂中的烟酰胺测定方法（分光光度法） 

一、微生物法 

1.原理 

一种微生物生长必需某一些维生素，Lactobacillus arabinosus的生长需要尼克酸。

尼克酸是指具有尼克酸生物学活性的吡啶3-羧酸及其衍生物的总称。

它是白色晶体，是维生素中最稳定的一种，对酸、碱、热、光及弱氧化剂都很稳定，微溶于冷水，易溶于热水及乙醇。

其检出限为10ng。

2.适用范围 

本方法来源自AOAC和国标GB12395-90。

适用于食物及饲料中的尼克酸的检测。

3.仪器 

（1） 电热恒温培养箱（37±0.5℃） 

（2） 无菌室（紫外灯消毒） 

（3） 电热手提式压力蒸汽消毒器（121℃，高压30min） 

（4） 液体快速混合器 

（5） 离心机（3000转，10min） 

（6） 碱式滴定管 

（7） 硬质玻璃试管 

4.试剂 

所用试剂皆为分析纯；所用水皆为蒸馏水 

4.1 标准溶液的配制 

（1） 尼克酸标准储备液（0.1mg/ml）：

准确称取50.0mg已干燥恒重并储于五氧化二磷干燥器中的尼克酸标准，以25%乙醇溶液溶解并定容至500ml，于冰箱中保存。

（2） 尼克酸标准中间液（1ug/m）：

吸取1.00ml尼克酸标准储备液，置于100ml容量瓶中，用25%乙醇溶液定容，混匀，于冰箱中保存。

（3） 尼克酸标准工作液（0.1ug/m）：

临用时吸取5.00ml尼克酸标准中间液，置于50ml容量瓶中，用水定容，混匀。

4.2 其它试剂的配制 

（1） 0.5mol/L硫酸：

于2000ml烧杯中加入700ml水，加入28ml H2SO4，用水稀释至1000ml。

（2） 10mol/L氢氧化钠：

溶200g NaOH于水中，稀释至500ml。

（3） 0.1mol/L氢氧化钠：

，取10ml 10mol/L NaOH，用水稀释至1000ml。

（4） 0.04%溴甲酚绿溶液，称取0.1g溴甲酚绿于研钵中，加1.4ml 0.1mol/L NaOH研磨，加少许水继续研磨，直至完全溶解，用水稀释到250ml。

（5） 酪蛋白（sigma公司）：

称取50g不含维生素的酪蛋白，加200ml （3mol/L）盐酸，121℃磅压力下水解6小时，将水解物转移至蒸发皿内，在水浴上蒸发至膏状。

加200ml水使之溶解后再蒸发至膏状，反复3次，以除去盐酸。

注意：

*酸解酪蛋白是为了去除酪蛋白中的维生素，确保培养基中不含代测的尼克酸，但酸解并不一定彻底，因此选用不含维生素的酪蛋白。

*水浴蒸发时不可蒸干或使之焦糊，若溶液被蒸干，水解液所含营养物已被破坏 

用10mol/L氢氧化钠调节PH值至3.5，以溴酚蓝作外指示剂。

加20g活性炭，振摇，过滤，反复操作至滤液无色。

滤液加水稀释至500ml，加少许甲苯置冰箱中保存。

*注意：

活性炭不能在溶液中太久，否则容易破坏酪蛋白的营养成分 

（6） 溴酚蓝：

称取0.1g溴酚蓝，用1+4乙醇溶解后，再加乙醇稀释至100ml。

（7） 甲苯 

（8） 4mol/L盐酸溶液，V+V=1+4 

（9） 5mol/L生理盐水：

取9gNaCl溶于1000ml水中。

（10） 胱氨酸、色氨酸溶液：

称取4gL-胱氨酸和1gL-色氨酸溶于800ml水中，加热至70～80℃，逐滴加入20%盐酸，不断搅拌，直至完全溶解为止。

冷至室温，加水稀释至1000ml。

加少许甲苯于冰箱中保存。

（11） 腺嘌呤、鸟嘌呤、尿嘧啶溶液：

称取硫酸腺嘌呤，盐酸鸟嘌呤及尿嘧啶各0.1g，加75ml水和2ml浓盐酸，然后加热使其完全溶解，冷却，若有沉淀产生，加浓盐酸数滴，再加热。

如此反复，直至冷却后无沉淀产生为止。

用水稀释至100ml。

加少许甲苯于冰箱中保存。

（12） D-泛酸钙、对氨基苯甲酸、盐酸吡哆醇溶液：

称取D-泛酸钙、对氨基苯甲酸、盐酸吡哆醇各10mg于烧杯中，以水溶解并稀释至1000ml，将此液置于棕色瓶中，加少许甲苯于冰箱中保存。

*注意：

此溶液见光分解，因此储存于棕色瓶中 

（13） 0.02mol/L醋酸溶液：

取1.18ml纯的冰醋酸，稀释至1000ml 

（14） 核黄素、盐酸硫胺素、生物素溶液：

溶解1mg生物素结晶于100ml 0.01747mol/L的醋酸中，取此液4ml（相当于40ug生物素），加入20mg核黄素和10mg盐酸硫胺素，以0.01747mol/L醋酸溶解并稀释至1000ml，将此液置于棕色瓶中，加少许甲苯于冰箱中保存。

*注意：

此溶液见光分解，因此储存于棕色瓶中 

（15） 甲盐溶液：

取25g磷酸氢二钾和25g磷酸二氢钾，加水溶解后稀释至500ml，加少许甲苯于冰箱中保存。

（16） 乙盐溶液：

取10g硫酸镁、0.5g氯化钠、0.5g硫酸亚铁和0.5g硫酸锰，加水溶解后稀释至500ml，加5滴浓盐酸，加少许甲苯于冰箱中保存。

（17） 乙醇溶液 V/V=1/3 

（18） 溴酚蓝：

称取0.1g溴酚蓝，用1+3乙醇溶液溶解后，再稀释至100ml。

（19） 0.04%溴麝香草酚蓝溶液：

称取0.1g溴麝香草酚蓝于研钵中，加1.6ml，0.1mol/L NaOH，研磨，加少许水继续研磨，直至完全溶解，用水稀释至250ml。

（20） 0.004%溴麝香草酚蓝溶液：

量取100ml0.04%溴麝香草酚蓝溶液，加水稀释至1000ml，供滴定用。

（21） 基本培养基储备液：

酸解酪蛋白 50ml 

胱氨酸、色氨酸溶液 50ml 

腺嘌呤、鸟嘌呤、尿嘧啶溶液 10ml 

D-泛酸钙、对氨基苯甲酸、吡哆醇溶液 10ml 

核黄素、盐酸硫胺素、生物素溶液 10ml 

甲盐溶液 10ml 

乙盐溶液 10ml 

无水葡萄糖 10g 

无水醋酸钠 10g 

（或结晶醋酸钠NaAC.3H2O 16.6g） 

将上列试剂混合，用水稀释至500ml用氢氧化钠调PH至6.8，以溴麝香草酚蓝作外指示剂。

（22） 琼脂培养基：

无水葡萄糖 1g 

醋酸钠 1g 

蛋白胨 0.8g 

酵母提取物干粉 0.2g 

甲盐溶液 0.2ml 

乙盐溶液 0.2ml 

琼脂 1.2g 

混合，加水至100ml，加热至琼脂完全溶化，以溴麝香草酚蓝为外指示剂，用盐酸趁热调PH至6.8，尽快倒入试管中，每管3～5ml，加塞棉塞，于压力蒸汽消毒器中121℃灭菌10min，取出后竖直试管，冷至室温后保存于冰箱中。

4.3菌种的制备与保存 

（1） 菌种的制备与保存：

以阿拉伯乳酸杆菌�Lactobacillus arabinosus 17-5 ATCC No.8014 简称 Lact.A?

纯菌种接入2个或多个琼脂培养基管中，在37±0.5℃恒温箱中保温16-24小时，取出于冰箱中保存，至多不超过两周。

保存数周以上的菌种，不能立即用作制备接种液之用，一定要在使用前每天转种一次，连续2-3天，方可使用，否则生长不好。

（2） 种子培养液的制备：

加5ml 0.1ug/ml 的尼克酸标准应用液于尖头试管中，加入5ml基本培养基，塞好棉塞，于压力蒸汽消毒器内（高压锅）121℃下消毒10min，取出，置于冰箱中，此管可保存数周之久。

5.操作步骤 

5.1样品制备：

取含尼克酸约5-50ug的均匀样品于100ml三角瓶中，加0.5mol/LH2SO450ml。

放入高压蒸汽锅121℃下水解30min，取出，于水中冷却，用10mol/LNaOH和0.5mol/LH2SO4调PH值至4.5，用溴甲酚绿做指示剂。

将三角瓶内的溶液转移到100ml容量瓶中，用蒸馏水定容至100ml，滤纸过滤，保存滤液于冰箱内备测（保存期不超过36小时）。

*用0.5mol/L硫酸水解，可以断开尼克酸和其它物质结合的键，使尼克酸游离出来。

*观察溴甲酚绿至草绿色为终点，说明溶液PH值到了4.5. 调PH值至4.5可以除去样品中刺激和抑制细菌生长的物质，如：

淀粉、脂肪酸及磷脂。

许多蛋白质的等电点也在PH4.5，所以此PH值也可用来沉淀蛋白质。

5.2接种液的制备：

使用前一天，将阿拉伯乳酸杆菌菌种由储备菌种管移种于已消毒的种子培养液中，可同时制备两管，在37±0.5℃的恒温箱中培养16-24小时。

取出离心10分钟（3000rpm）倾去上部液体，用已消毒的生理盐水淋洗2次，再加10ml消毒过的生理盐水，将离心管置于液体快速混合器上混合，使菌种成为混悬体，将此液倒入已消毒的注射器内，立即使用。

5.3样品标准曲线的测定：

3组试管各加0，0.5，1.0，1.5，2.0，2.5和3.0ml工作液，每管加水稀释至5ml，再加5ml基本培养基，混匀，加棉塞。

5.4试样的测定：

在试管中分别加入1，2，3，4ml样液，加水稀释至5ml，再加入5ml基本培养基，用棉塞塞住试管，将制备好的标准曲线和试样测定管放入高压锅（121℃）高压10min，冷至室温备用。

5.5接种和培养：

每管种一滴接种液，于37±0.5℃恒温箱中培养72小时 

*注意：

接种后用振荡器振荡混匀试管中的液体。

5.6滴定：

从恒温箱中取出后，将试管中培养液倒入50ml三角瓶中，用5ml0.004%溴麝香草酚蓝分二次淋洗试管，洗液倒入该三角瓶中，以0.1mol/L氢氧化钠溶液滴定，呈绿色即为终点，此时PH约6.8，绘制尼克酸标准工作曲线，用测定管得到的值，在标准曲线上查到测定管内所含尼克酸的量。

* 水解液的PH值调至6.8是为了不同的试剂加入基本培养基时，不致改变基本培养基的PH值。

（此乳酸菌生长的适宜PH值为6.8） 

6.计算 

以尼克酸标准系列的不同微克数为横坐标，滴定所需0.1mol/L氢氧化钠 毫升数为纵坐标，作为标准曲线。

X=（C×V/m）×F×（100/1000） 

X--样品中尼克酸的含量，mg/100g； 

C--每毫升样品中尼克酸含量的平均值，ug/ml； 

V--样品水解液定容总体积，ml； 

F--样品试液的稀释倍数； 

m--试样质量，g； 

100/1000--折算成每100g样品中尼克酸含量，mg。

7.举例 

取一螺旋藻样品1.004g（m），处理后定容为100ml（V），从中取1ml稀释至25ml（F），取1，2，3，4ml入试管中，加入水和培养基，高压消毒，培养，滴定，测量根据曲线分别得出四管C值为0.037，0.073，0.110，0.136，所以四管平均值为C=（0.037+0.073/2+0.110/3+0.136/4）/4=0.036。

代入方程式为：

X=（C×V/m）×F×（100/1000）=（0.036×100/1.004）×25×（100/1000）=8.96（mg/100g） 

因此得出每100克螺旋藻中含8.96毫克尼克酸。

8.注意事项 

（1） 当管中尼克酸的量少于0.05或多于0.3ug，即超过标准曲线范围时所得到的数值不能用于计算。

（2） 3mol/L盐酸的配制方法：

取250ml浓盐酸，加入750ml蒸馏水，共配成1L 3mol/L的盐酸 

（3） 试管应先用洗衣粉清洗后，用水冲净，再放入酸缸中浸泡1天左右，捞出后再用自来水和蒸馏水清洗干净，凉干，方可再用。

二、比色法 

1.原理 

烟酸和烟酰胺于Ph=4.5下用稀NH4OH提取，再与CNBr溶液与10％对氨基苯磺酸反应，测其比色值。

2.适用范围 

选自AOAC；适用范围：

适用于药物、食物和饲料 

3.仪器设备 

（1） 容量瓶，100ml 

（2） 锥形瓶，250ml 

（3） 电热板 

（4） 高压釜（121℃，30min） 

（5） 离心管，5ml 

（6） 漏斗 

（7） 通风橱 

（8） 酸式滴定管 

比色计（药物430-450nm，谷物470nm） 

4.试剂 

所用试剂皆为分析纯；所用水皆为蒸馏水 

4.1尼克酸标准溶液 

（1） 尼克酸标准储备液（100μg/ml）：

将50mgUSP烟道参比标准（贮于P2O5干燥器中，放于暗处保存。

） 

（2） 标准中间液Ι（10μg/ml）：

取少量贮备液放置至室温。

用蒸馏水将10.0ml贮备液稀释至100ml。

（3） 标准工作液Π（4μg/ml）：

将恢复至室温的贮备液2.0ml用蒸馏水稀释至50ml。

4.2其它试剂 

（1） 稀氢氧化铵溶液：

5mlNH4OH用H2O稀释至250ml 

（2） 稀盐酸：

V+V=1+5 

（3） 磷酸缓冲液（pH＝8）：

将60gNa2HPO4·7H2O和10gKH2PO4溶于蒸馏水中并稀释至200ml。

（4） 溴化氢溶液（10%，通风橱中制备）：

将370ml H2O温热至40℃，并加入40gCNBr。

振荡至溶解冷却并稀释至400ml。

溶液在冰箱保存。

*CNBr剧毒，切勿与皮肤接触，必须在通风橱中操作。

（5） 10%对氨基苯磺酸溶液：

按每次1ml将NH4OH加到20g对氨基苯磺酸和170ml蒸馏水的混合液中，直至酸溶解为止。

用盐酸与蒸馏水溶液（1：

1）调节pH至4.5，采用溴甲酚绿指示剂指示。

稀释至200ml。

*注：

因为溶液有颜色会影响最后结果，所以稀释结束后溶液应几乎无色 

（6） 55%对氯基苯磺酸溶液：

在55g对氨基苯磺酸中加入27ml蒸馏水和27mlNH4OH，振摇至溶解。

（必要时加温）。

用NH4OH或5NHCl调pH为7，再用蒸馏水稀释至100ml。

（保存在暗处） 

5.操作步骤 

5.1样品制备 

（1） 药物：

将药品研碎，溶于蒸馏水中，稀释定容。

取10mL样品于锥形瓶中，加入10mLHCl，在电热板上加热蒸发至约2mL，冷却，加入25-50mL蒸馏水，用40%NaOH或KOH溶液调节pH值至2.5-4.5。

过滤，弃去10mL处液，转移至容量瓶中定容，使溶液含尼克酸约4μg/mL。

*注：

溶液的尼克酸含量应在50-200μg/mL 

（2） 非谷类食品及饲料：

称取约28g样品，加入0.5mol/L H2SO4200mL，混匀，在高压釜中121℃加热半个小时。

冷却，用10mol/LNaOH调节pH值至4.5，以溴甲酚绿作外指示剂，用蒸馏水稀释至250mL，过滤。

取17g（NH4）2SO4于50mL容量瓶中，吸取40mL样品液，用H2O稀释定容，强力振摇。

过滤，混匀，取1mL作比色测定用。

如果样品中尼克酸含量为16mg/1b。

最终液浓度3.2μg/mL。

移取40mL标准工作液Π至盛有17g （NH4）2SO4的50mL容量瓶中，用蒸馏水稀释定容，此液含尼克酸3.2μg/mL。

*注：

加入H2SO4主要是为了去除样品中的蛋白及其它杂质，以防其对测量结果造成影响 

（3）谷类产品：

随同样品做1试剂空白和5个浓度的工作标准液。

分别将1.5gCa（OH）2放入7个锥形瓶中，移入0、5、10、15、20、25mL标准中间液Ι和2.5g样品（含100μg烟酸），加入蒸馏水至90mL，振摇混匀。

高压121℃下2小时。

趁热混匀，冷却至40℃，转移至100mL容量瓶中，稀释定容。

从容量瓶移50mL上清液至离心管中，冰浴15min或置于冰箱中≥2小时。

离心15min，吸取20mL上清液至盛有8g（NH4）2SO4和2mL磷酸盐缓冲液的离心管中。

振荡溶解并温热至55-60℃。

离心5min，过滤。

5.2操作程序 

（1）药物制剂和非谷类食物和饲料：

假如10%的对氨基苯磺酸溶液，CNBr溶液，在通风橱中用酸式滴定管滴入，用标准工作液Π，如下表制备各管：

试剂 标准空白 样品空白 

标准溶液（mL） 1.0 1.0 

H2O（mL） 5.0 5.0 

稀NH4OH（mL） 0.5 0.5 

10%对氨基苯磺酸 2.0 2.0 

稀HCl（mL） 0.5 0.5 

样品溶液 

标准溶液（mL） 1.0 1.0 

稀NH4OH（mL） 0.5 0.5 

CNBr（mL） 5.0 5.0 

10%对氨基苯磺酸（mL） 2.0 2.0 

H2O（mL） 0.5 0.5 

*注：

CNBr有毒，注意通风 

每只样品都要分别制备样品空白。

将标准和样品移入试管中，分别加入5mL蒸馏水作为标准空白和样品空白。

转动试管内的液体，立即加入稀NH4OH，转动，加对氨基苯磺酸，再次旋转混合。

立即加入0.5mL稀HCl，混匀，置于光电比色计上，加入对氨基苯磺酸后约30s内在430和450nm波长之间任意波长调节仪器至0的A值。

从加入稀NH4OH开始按标准空白同样的方法处理标准溶液。

立即转动管子，加CNBr溶液并再次转动混匀，在加入CNBr溶液后30s后转动管子，加入对氨基苯磺酸溶液，再转动。

立即加入0.5mL蒸馏水，混匀，加塞。

，测量。

（加入对氨基苯磺酸溶液后1.5min时颜色最深，保留2min，然后慢慢褪色。

） 

将样品空白设在0A，测样品溶液的A值。

若标准和样品液含量大致相等，则尼克酸含量与A值成正比。

（2）谷类制品：

取5只试管，其中两只加入5mL标准液，两只加入5mL样品液，另一只加入5mL蒸馏水做试剂空白。

于一只空白管，一只标准管和一只样品管各加10mL蒸馏水，将所有管置于冰中冰浴30min。

对剩下的管按顺序加入10mL冷的CNBr，30s后加入1.0mL55%对氨基苯磺酸溶液。

用标准空白在470nm处，调比色计为0A，加入对氨基苯磺酸后12-15min读出其它各管的A值。

*放入比色计前，试管必需冷却一致，每管必需拭干。

如管呈雾状，浸于热水中片刻，测定前拭干。

6.计算 

将扣除试剂空白的标准A对尼克酸含量μg/ml作图，画出适宜的直线，从此图上求出已扣除样品空白和试剂空白后样品校正的A所对应的浓度C。

Mg尼克酸/g样品=C/10ng样品 

7. 注意事项 

（1） CNBr溶液有毒，要注意安全。

（2） 样品不同，处理方法不同，不要混淆。

（3） 注意通风橱的通风。

（4） 因为采用比色法测量，因此样品含有色素易干扰测定，影响测定结果的正确性。

（5） 试管应先用洗衣粉清洗后，用水冲净，再放入酸缸中浸泡1天左右，捞出后再用自来水和蒸馏水清洗干净，凉干，方可再用。

三、复合维生素制剂中的烟酰胺测定----分光光度法 

1.原理 

在PH约4.5处将烟酰胺抽提到KH2PO4溶液中，再与CNBr和巴比士酸反应。

用分光光度法测定反应产物。

烟酸含量超过烟酰胺三倍量时干扰烟酰胺测定。

2.适用范围 

选自AOAC；适用于复合维生素制剂检测 

3.仪器 

（1） 搅拌器 

（2） 量筒 

（3） 锥形瓶 

（4） 高压釜（121℃，15min） 

分光光度计（550nm） 

4.试剂 

所用试剂皆为分析纯；所用水皆为蒸馏水 

4.1.烟酰胺标准溶液：

（1） 标准储备液（250μg/mL）：

50mgUSP烟酰胺标准加60%乙醇溶解并稀释到200mL。

在10℃贮存。

（2） 标准工作液（5μg/mL）：

将少量贮备液温热至室温。

取出2mL用0.3%KH2PO4溶液稀释至100mL。

4.2 其它试剂 

（1） 溴化氰溶液：

10%，将370ml H2O温热至40℃，并加入40gCNBr。

振荡至溶解冷却并稀释至400ml。

溶液在冰箱保存。

使用前需恢复到室温。

*注：

CNBr剧毒，切勿与皮肤接触，注意在通风橱 中操作。

（2） 磷酸二氢钾溶液：

A. 13%的磷酸二氢钾溶液：

将30gKH2PO4用蒸馏水溶解并稀释到1L。

B. 3%的磷酸二氢钾溶液：

将3%的磷酸二氢钾溶液用蒸馏水稀释（1+9）。

（3） 巴比土酸缓冲液：

按每批测定需用量计算，按每100mL3%KH2PO4溶液加2g试剂级巴比土酸制备。

搅拌1小时，用前过滤。

5.操作步骤 

5.1样品制备：

 取适量样品于锥形瓶中，加入0.3%的KH2PO4（KH2PO4的量至少是估计的烟酰胺量的两倍）。

若样品不易溶解，则振摇使其分散并用高压釜在121℃下加热15min。

用0.3% KH2PO4溶液稀释至5μg/mL。

过滤。

用蒸馏水代替CNBr分别制备各样品的空白。

将1mL工作标准液或测定液置于分光光度计比色管中。

加0.5mL CNBr溶液，混匀，塞住，放置25-30min，加10mL巴比土酸溶液并旋摇 

*注：

若30min后不能加巴比土酸溶液。

将管置于碎冰浴中稳定CNBr反应。

5.2用蒸馏水代替CNBr做为适当的空白，（550nm，分光光度计设定在0A）颜色最深时测定反应产物的吸光度 

*注：

加入巴比土酸后2-4min时颜色最深，稳定约1min，慢慢褪去 

*注：

测定样品时，其放置时间不应超过30min。

加入CNBr时应有规律的间隔1-2min。

6.计算 

样品中烟酰胺含量（mg）=（A×5×稀释倍数）/（A'×1000） 

式中 

A- 样品吸光度 

A'--标准吸光度 

5-μg烟酰胺/mL标准工作液 

（结果用烟酰胺mg/片报告） 

7.注意事项 

（1） CNBr有毒，应在通风橱中操作。

（2） 样品中烟酸含量超过烟酰胺含量的三倍量时会干扰烟酰胺的测定，因此样品应有明确的烟酸和烟酰胺的含量。

（3） 试管应先用洗衣粉清洗后，用水冲净，再放入酸缸中浸泡1天左右，捞出后再用自来水和蒸馏水清洗干净，凉干，方可再用。