慢病毒转染手册研究Word文档格式.docx

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病毒表达系统

腺病毒表达系统

慢病毒表达系统

逆转录病毒

病毒基因组

双链DNA病毒

RNA病毒

是否整合

病毒基因组游离于宿主基因组外，瞬时表达外源基因

病毒基因组整合于宿主基因组，长时间、稳定表达外源基因

感染细胞类型

感染分裂和不分裂细胞

感染分裂细胞，但在干细胞中表达效率低

表达丰度

高水平表达

表达时间

快（1-2天）

慢（2-4天）

滴度

滴度高达1012pfu/ml

最高可达109－10TU/ml

克隆容量

可插入高达8kb的外源片段，滴度随插入片段长度增加而降低

可插入不超过8kb的外源片段，滴度随插入片段长度增加而降低

可插入不超过6kb的外源片段

免疫原性

高免疫原性

低免疫原性

动物模型

不能得到转基因动物

可产生转基因动物，效率达50以上

可以，但很难

启动子

可以更换特异性启动子

不需要启动子

能否用于MIRCORNA

可以

不可以

能否用于四环素诱导

TET-ON,TET-OFF

系统的目的与意义

　　●对于一些较难转染的细胞，如原代细胞、干细胞、不分化的细胞等,能大大提高目的基因转导效率，而且目的基因整合到宿主细胞基因组的几率大大增加，这就为RNAi,cDNA克隆以及报告基因的研究提供了一个有利的途径。

　　●进行稳转细胞株的筛选；

　　●为活体动物模型实验提供高质量的包含目的基因的病毒液；

解决的问题

　　在细胞相关的实验操作中，对于一些按常规方法难以转染甚至无法转染的细胞，通过病毒介导的实验能够大大提高基因的转导效率，以达到目的基因的高效瞬时表达。

细胞相关的实验

实验目的

　　对于一些按常规方法难以转染甚至无法转染的细胞，通过病毒介导的实验能够大大提高基因的转导效率，以达到目的基因的高效瞬时表达。

实验流程

　　1.根据目的基因相关信息（序列，序列号等），构建含有外源基因或siRNA的重组载体；

　　2.对于测序正确的重组质粒，提取和纯化高质量的不含内毒素的重组质粒；

　　3.使用高效重组载体和病毒包装质粒共转染293T细胞，进行病毒包装和生产，收集病毒

　　液；

　　4.浓缩、纯化病毒液；

　　5.用高质量的病毒液感染细胞；

　　6.通过定量PCR精确测定病毒滴度（高精确滴定方法）和Western分析实验结果；

　　7.用高质量的病毒液感染宿主细胞；

检测基因功能或者siRNA的沉默效率以及使用药物进

　　行稳定转染细胞株的筛选，通常状况下，筛选的细胞克隆株具有长期的表达稳定

　　性。

病毒液足够用于一般的动物活体实验。

慢病毒使用操作手册

1慢病毒使用操作

　　2慢病毒安全使用规范

　　3悬浮细胞感染方法概要

　　4相关专业术语

　　5细胞培养器皿的相关参数

1、慢病毒使用操作手册

　　1.1慢病毒的储存与稀释:

　　1.1.1病毒的储存：

用户收到病毒液后在很短时间内即使用慢病毒进行实验，可以将病毒暂时放置于4℃保存；

如需长期保存请放置于-80℃（病毒置于冻存管，并使用封口膜封口）

　　A．病毒可以存放于-80℃6个月以上；

但如果病毒储存时间超过6个月，我们建议在使用前需要重新滴定病毒滴度

　　B．反复冻融会降低病毒滴度：

每次冻融会降低病毒滴度10%；

因此在病毒使用过程中应仅尽量避免反复冻融，为避免反复冻融我们强烈建议客户收到病毒后按照每次的使用量进行分装。

　　1.1.2病毒的稀释：

用户需要稀释病毒时，请将病毒取出置于冰浴融解后，使用培养目的细

　　胞用PBS或无血清培养基（含血清或含双抗不影响病毒感染）混匀分装后4℃保存（请尽量在三天内用完）分装后使用。

　　1.2慢病毒用于体外（InVitro）实验：

感染培养原代细胞和建系细胞

　　1.2.1慢病毒对各种细胞和组织的亲嗜性不同，用户使用Invabio提供的慢病毒之前可以通过查阅相关文献，了解慢病毒对您的目的细胞的亲嗜性，感染复数（MOI值）以及在体（InVivo）注射所需要的病毒量。

如果没有相关文献支持，可以通过感染预实验得到合适的感染复数（MOI值）（使用24孔板检测病毒对目的细胞的亲嗜性）

　　1.2.2慢病毒感染目的细胞预实验

　　1.2.2.1慢病毒感染目的细胞预实验注意事项

　　A．测定慢病毒对目的细胞的亲嗜性时，需要同时设置对慢病毒亲嗜性较高的细胞（HEK293T，Hela）作为平行实验的对照细胞。

　　B．在进行慢病毒感染实验时,可以用完全培养基（培养目的细胞用）稀释；

理论上，含有血清，双抗或者其他营养因子的完全培养基不影响慢病毒的感染效率。

　　C．Invabio提供的病毒单位为TU/ml,即每毫升中含有具有生物活性的病毒颗粒数。

如：

　　病毒滴度为>

1X108TU/ml即每毫升病毒液中至少含有1X108个具有生物活性的慢病毒颗粒。

1.2.2.2以24孔培养板为例，进行目的细胞和HEK293T细胞的感染预实验

实验前按照不同的MOI设置不同的感染孔，并根据MOI和细胞数量计算所需要的病毒量，如有必要可以使用PBS溶液或者无血清培养基稀释病毒原液

　　第一天，准备细胞：

在24孔培养板接种若干孔，每个孔内接种3~5X104个目的细胞，铺板时细胞的融合率为50%左右，每孔培养基体积为100μl；

进行病毒感染时细胞的融合度约为70%左右。

　　第二天，准备病毒：

取出4℃保存的病毒，使用台式离心机离心20秒（使病毒完全悬于离心管底部即可）；

如果是冻存在-80℃的病毒需要先在冰上融化后使用。

亦可以根据实验室的实际情况将按照MOI准确计算好的慢病毒稀释到培养基中，并尽可能保证所获得的含有慢病毒的培养基的总体积为最小体积，以期获得最佳的感染效率。

　　第二天，感染目的细胞：

病毒准备好之后，从培养箱中拿出细胞，首先观察细胞生长状态，如细胞状态较好则开始实验

　　a使用移液器吸取准确体积的病毒液加入准备好的培养基

　　b吸去培养基的培养器皿中的培养基（如果细胞生长良好，密度适宜，则不用换液）

　　c在目的细胞和对照细胞中分别加入计算好的病毒液

　　d混匀后放于二氧化碳培养箱（37℃、5%CO2）孵育过夜

　　注：

感染前细胞的状态好坏对最终的感染效果高低影响很大，所以务必保证加病毒之前细胞处于良好的生长状态亦可以将预先准备好的培养基和慢病毒的混合液直接加入培养器皿中

　　慢病毒对目的细胞的感染效率较低，通过提高MOI值可以提高病毒的感染效率，但是当MOI高于20时，我们建议客户在培养基中加入ploybrene（8μg/ml左右）来提高病毒的感染效率。

　　A．第三天，更换培养液：

一般在24小时候后将含有慢病毒的培养液更换成正常培养液；

在感染后观察细胞状态，如果慢病毒对细胞有明显毒性作用而影响细胞生长状态，可以最短在加病毒4小时候更换新鲜培养液后继续培养（建议在8-12小时更换为宜）。

第一次换液后，如果慢病毒对细胞没有明显毒性作用，按照正常培养条件培养换液。

　　B．第六天，感染效率检测：

在倒置荧光显微镜观察荧光，估计慢病毒感染目的细胞的效率；

　　如何由于目的基因较大而造成选择的载体不能携带MarkerGene的，可以通过Real-timeRT-PCR检测目的基因的表达来拍评估感染效率。

　　注意：

　　Invabio提供的病毒载体上带有GFP绿色荧光蛋白，用户可以在病毒感染96小时后用倒置荧光显微镜观察GFP绿色荧光，以观察病毒对目的细胞的感染情况。

如果慢病毒载体携带其他MarkerGene如RFP\BFP可以用荧光显微镜在对应的激发光波长下观察荧光表达的情况

　　慢病毒表达时间较慢，荧光表达所需时间较长，建议感染后96小时后观测荧光表达。

感染后的细胞可以连续培养一周，通过观察荧光的表达时间和表达强度来确定慢病毒对目的细胞的感染情况。

感染期间请根据细胞生长的情况对细胞进行及时换液，以保证细胞良好的生长状态。

　　2、慢病毒使用安全使用规范

　　Invabio提供的慢病毒为“自杀”性病毒，即病毒感染目的细胞后不会再感染其他细胞，也不

　　会利用宿主细胞产生新的病毒颗粒。

慢病毒中的毒性基因已经被剔除并被外源性目的基因所

　　取代，属于假型病毒因此没有毒性作用。

但该病毒仍然具有可能的潜在的生物学危险，

　　Invabio建议不要使用编码已知或可能会致癌的基因的假型病毒。

除非已经完全公认某个基

　　因肯定没有致癌性，否则均不建议采用假型病毒进行生物学实验。

如有疑问，请与我们联系。

　　使用时请参照如下所示进行实验：

　　2.1．病毒操作时最好使用生物安全柜。

如果使用普通超净工作台操作病毒，

　　请不要打开排风机。

　　2.2．病毒操作时请穿实验服，带口罩和手套。

　　2.3．操作病毒时特别小心不要产生气雾或飞溅。

如果操作时超净工作台有病毒

　　污染，请立即用70%乙醇加1%的SDS溶液擦拭干净。

接触过病毒的枪头，

　　离心管，培养板，培养液请于84消毒液或1%SDS中浸泡过夜后弃去。

　　2.4．用显微镜观察细胞感染情况时应遵从以下步骤：

拧紧培养瓶或盖紧培养

　　板。

用70%乙醇清理培养瓶外壁后到显微镜处观察拍照。

离开显微镜实验

　　台之前，用70%乙醇清理显微镜实验台。

　　2.5．如需要离心，应使用密封性好的离心管，或者用封口膜封口后离心，

　　而且尽量使用组织培养室内的离心机。

　　2.6．脱掉手套后，用肥皂和水清洗双手。

　　3、悬浮细胞感染方法概要

　　1.1根据细胞的量将细胞在1.5ml管中离心收集然后用100-200ul的无血清培养液稀释细胞

　　沉淀，以细胞完全浸没在培养基中为准

　　1.2按照MOI换算病毒颗粒数量，吸取病毒液加入细胞中，将1.5ml管放在37℃度培养箱

　　中孵育30分钟

　　1.3将管中混合溶液吸出加到培养皿中或孔里

　　1.4加入足够量的新鲜培养液

　　1.512小时后换液

　　1.696小时后观察细胞阳性率

　　4、相关专业术语

　　（详情可参考公司网站FAQ）

　　常用术语：

　　MOI:

病毒感染复数传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究。

其含义是感染时噬菌体

　　与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。

噬菌体的数量单位为pfu。

　　一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfunumber/cell。

后来MOI被

　　普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值，本手册中提到的

　　MOI都是沿用这个概念。

　　然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。

能产生细

　　胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义

　　与传统的概念相同。

　　MOIstandsfor"

MultiplicityofInfection."

Itistheratioofinfectiousvirusparticlestothenumberofcellsbeinginfected.TherecommendedMOIisintherangeof0.1（meaningthatyouinoculate1virusparticleforevery10cells）to0.01.ThegeneraltheorybehindMOIistointroduceoneinfectiousvirusparticletoeveryhostcellthatispresentintheculture.However,morethanonevirusmayinfectthesamecellwhichleavesapercentageofcellsuninfected.ThisoccurrencecanbereducedbyusingahigherMOItoensurethateverycellisinfected.

　　5、细胞培养器皿的相关参数

Flask/Dish

Surface（mm）

Cellnumber

MediaVolume

96wellplate

50

1.5-5.0×

10

100μl

48wellplate

100

3.0×

104-1.0×

200μl

24wellplate

200

8.0×

104-2.0×

500μl

12wellplate

401

1.6-4.0×

1.0ml

6wellplate

962

3.0-8.0×

2.0ml

35mm

60mm

2827

1.0-2.5×

6.0ml

100mm

7854

2.5-6.4×

10.0ml

　　慢病毒载体的包装与纯化

　　1实验流程

　　制备慢病毒穿梭质粒及其辅助包装原件载体质粒，四种质粒载体分别进行高纯度无内毒素抽提，共转染293T细胞，转染后8h更换为完全培养基，培养48h后，收集富含慢病毒颗粒的细胞上清液，对其浓缩后得到高滴度的慢病毒浓缩液,感染Hela细胞后定量PCR检测病毒滴度。

体内和体外实验对慢病毒滴度的要求不同，生产过程中可以通过浓缩得到不同滴度的慢病毒颗粒。

　　2实验材料

　　2.1慢病毒载体、包装细胞和菌株

　　慢病毒载体系统（Tronolab）该病毒包装系统为四质粒系统，组成为pRsv-REV，pMDlg-pRRE，pMD2G,目的干扰质粒。

其中目的干扰质粒能表达绿色荧光蛋白（GFP）.pRsv-REV，pMDlg-pRRE，pMD2G含有病毒包装所必须的元件.

　　细胞株293T，慢病毒的包装细胞，为贴壁依赖型成上皮样细胞，生长培养基为DMEM（含10%FBS）。

贴壁细胞经培养生长增殖形成单层细胞。

　　菌株大肠杆菌菌株DH5α。

用于扩增慢病毒载体和辅助包装载体质粒。

　　2.2主要试剂

　　试剂名称

　　生产厂家

　　货号

　　包装细胞293T细胞株

　　中科院上海细胞所

　　大肠杆菌菌株DH5α

　　Invitrogen公司

　　胎牛血清

　　胰蛋白酶

　　限制性内切酶

　　Fermentas

　　T4DNA连接酶

　　NEB公司

　　M0202V

　　质粒DNA提取试剂盒

　　Axygen公司

　　制备感受态试剂盒

　　BIOSCIENCES

　　凝胶回收试剂盒

　　Qiagen公司

　　1kb/100bpladder

　　2.3主要仪器

　　仪器名称

　　PCR仪

　　AppliedBiosystems公司

　　电泳仪

　　Bio-rad公司

　　荧光倒置显微镜

　　奥林帕斯

　　冷冻超速离心机

　　Hitachi

　　细胞培养箱

　　healforce

　　凝胶成像仪稳压DNA电泳仪

　　Tianneng

　　恒温摇床

　　上海博讯仪器

　　电热恒温培养箱

　　移液器

　　eppendorf

　　电热恒温水浴锅

　　上海一恒实验设备有限公司

　　数码凝胶处理系统

　　天能科学仪器

　　一次性平皿

　　Cell-star

　　烧瓶

　　3慢病毒载体系统质粒基本信息和图谱

　　该病毒包装系统为四质粒系统，组成为pRsv-REV，pMDlg-pRRE，pMD2G,目的穿梭质粒。

其中穿梭质粒（目的穿梭质粒）含有能表达绿色荧光蛋白（GFP）；

pRsv-REV，pMDlg-pRRE，pMD2G含有病毒包装所必须的元件。

　　3.1穿梭质粒：

目的穿梭质粒

　　3.2pRsv-REV

　　3.3pMDlg-pRRE

　　3.4pMD2G

　　4慢病毒生产实验步骤

　　4.1慢病毒包装细胞转染用胰蛋白酶消化对数生长期的293T细胞，细胞密度为0.5×

10时；

重新接种于25mL的15cm细胞培养皿，37℃，50mL/LCO2培养箱内培养；

　　4.2制备慢病毒包装系统中四种质粒DNA溶液；

　　pRsv-REV10μg，

　　pMDlg-pRRE15μg，

　　pMD2G7.5μg,

　　干扰质粒20ug

　　加入无菌水定容至1800μL,再加入CaCl2（2.5mol/L）溶液200μL，混匀，加入2×

BBS缓冲盐溶液2000μL，室温放置20～30min；

　　4.3当细胞密度达60%～70%时转染.将DNA和磷酸钙混合液转移至含单层细胞的培养液中，混匀，培养12h后弃去含有转染混和物的培养液，加入PBS15mL，轻摇后弃去，重复该步骤3次.；

　　4.4每瓶细胞中加入含100mL/L小牛血清的细胞培养液15mL，继续培养48h.；

　　4.5收集转染72h的293T细胞上清液；

　　4.6将收集的上清液于4℃，4000g离心10min，收集上清液；

　　4.7将各种不同RNA干扰质粒上清液以0.45μm滤器过滤；

　　4.8于40mL超速离心管中，4℃，25000r/min离心20min；

4.9而后以冰PBS液，分别溶于500ulDmem,和500ulPBS重旋病毒沉淀于4℃溶解过夜

参考资料

慢病毒与腺病毒、逆病毒特征比较