酸奶微生物检验Word文档格式.doc

1、月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤胰蛋白胨或胰酪胨 2.0g氯化钠 0.5 g乳糖 0.5 g磷酸氢二钾（K2HPO4） 0.275 g磷酸二氢钾（KH2PO4） 0.275g月桂基硫酸钠 0.01 g蒸馏水 100 mL将各成分加入蒸馏水中，搅混均匀，静置约10 min，煮沸溶解，调节pH，高压灭菌121 ，15min。煌绿乳糖胆盐（BGLB）肉汤蛋白胨 1 g乳糖 1.0 g牛胆粉（oxgall或oxbile）溶液 20 mL0.1%煌绿水溶液 1.33 mL蒸馏水 80mLpH 7.20.1A.2.2 制法将蛋白胨、乳糖溶于约50mL蒸馏水中，加入牛胆粉溶液20 mL（将2.0 g脱水牛

2、胆粉溶于20 mL蒸馏水中，调节pH至7.07.5），用蒸馏水稀释到975 mL，调节pH，再加入0.1%煌绿水溶液1.33 mL，用蒸馏水补足到1 00mL，用棉花过滤后，分装到有玻璃小倒管的试管中，每管10 mL。121 高压灭菌15 min。7.5%氯化钠肉汤蛋白胨 2.25g牛肉膏 1.125g氯化钠 16.875 g蒸馏水 225mLpH 7.4将上述成分加热溶解，调节pH，分装，每瓶225 mL，121 高压灭菌15 min。 BairdParker琼脂平板胰蛋白胨 0.5g牛肉膏 0.25 g酵母膏 0.05g丙酮酸钠 0.5g甘氨酸 0.6g氯化锂（LiCl6H2O） 0.25

3、g琼脂 1.0 g蒸馏水 47.5mLpH 7.00.2增菌剂的配法30%卵黄盐水50 mL 与经过除菌过滤的1%亚碲酸钾溶液10 mL 混合，保存于冰箱内。A.4.3 制法将各成分加到蒸馏水中，加热煮沸至完全溶解，调节pH。临用时加热溶化琼脂，冷至50 ，每95 mL 加入预热至50 的卵黄亚碲酸钾增菌剂5 mL 摇匀后倾注平板。培养基应是致密不透明的。使用前在冰箱储存不得超过48 h。二、 指标表3 微生物限量项目采样方案a及限量（若非制定，均以CFU/g或CFU/ml表示）检测方法ncmM菌落总数210000100000GB4789.2大肠菌群10GB4789.3MPN计数法沙门氏菌0/

4、25g（ml）-GB4789.4金黄色葡萄球菌GB4789.10定性检验霉菌90GB4789.15A：样品的分析及处理按GB4789.1和GB4789.18执行。B：不适用于以发酵稀奶油为原料的产品。表4 乳酸菌数项 目 限量CFU/g（mL） 检验方法乳酸菌数a 1106 GB 4789.35a 发酵后经热处理的产品对乳酸菌数不作要求。三、 样品来源：四、 时间安排表大肠杆菌霉菌和酵母菌乳酸菌第1天无菌器材准备配置PCA配置LST配置孟加拉红配置样液无菌器材准备BPW无菌器材配置MRS平板第2天制平板接种LST配置BGLB配置样品液划线接种到BairdParker氏培养基和血平板配置样液制B

5、S和XLD平板第3天培养（36）观察LST产气情况，有产气的接种BGLB培养（28）革兰氏染色镜检划线接种到BS和XLD平板第4天菌落计数观察BGLB观察XLD平板第5天报告查MPN表观察BS平板五、 样品配置及器材准备无菌器材样品液培养皿移液管1ml*3/10ml*1;锥形瓶500ml*1/250ml*1;烧杯*1稀释度配置91 2 3 25g（ml）样品+225ml7.5%的生理盐水大肠菌数金黄色葡萄菌属六、 实验内容（1） 菌落总数操作步骤1、样品的稀释1.1 液体样品：称取25 g样品置盛有225 mL生理盐水的无菌锥形瓶，摇匀，制成1:10 的样品匀液。1.3 用1 mL 无菌吸管吸

6、取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于盛有9 mL 稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。1.4 另取1 mL 无菌吸管，按上述操作程序，制备1:1000稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1 次1 mL 无菌吸管或吸头。1.5 根据对样品污染状况的估计，选择2 个3 个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10 倍递增稀释时，吸取1 mL 样品匀液于无菌平皿内，及时将凉至46营养琼脂培养基注入平皿20mL左右，并混合均匀，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1 mL 空白稀释液加

7、入两个无菌平皿内作空白对照。1.6 及时将15 mL20 mL 冷却至46 的平板计数琼脂培养基（可放置于46 1 恒温水浴箱中保温）倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。2、培养2.1待琼脂凝固后，将平板翻转，置于36 1 恒温箱中培养48 h2 h。3、菌落计数可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-forming units，CFU）表示。3.1 选取菌落数在30 CFU300 CFU 之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30 CFU 的平板记录具体菌落数，大于300 CFU 的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数

8、应采用两个平板的平均数。3.2 其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。3.3 当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。7 结果与报告4、菌落总数的计算方法4.1 若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每g（mL）样品中菌落总数结果。4.2 若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按公式（1）计算：式中：N样品中菌落数；C平板（含

9、适宜范围菌落数的平板）菌落数之和；n1第一稀释度（低稀释倍数）平板个数；n2第二稀释度（高稀释倍数）平板个数；d稀释因子（第一稀释度）。4.3 若所有稀释度的平板上菌落数均大于300 CFU，则对稀释度最高的平板进行计数，其他平板可记录为多不可计，结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。4.4 若所有稀释度的平板菌落数均小于30 CFU，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。4.5 若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于1 乘以最低稀释倍数计算。4.6 若所有稀释度的平板菌落数均不在30 CFU300 CFU 之间，其中一部分小于30 CFU 或大于300CFU 时，

10、则以最接近30 CFU 或300 CFU 的平均菌落数乘以稀释倍数计算。5、菌落总数的报告5.1 菌落数小于100 CFU 时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。5.2 菌落数大于或等于100 CFU 时，第3 位数字采用“四舍五入”原则修约后，取前2 位数字，后面用0 代替位数；也可用10 的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。5.3 若所有平板上为蔓延菌落而无法计数，则报告菌落蔓延。5.4 若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效。5.5 称重取样以CFU/g 为单位报告，体积取样以CFU/mL 为单位报告。（2） 大肠菌数2.1 样品的稀释2.1.1 固体和半

11、固体样品：称取25 g 样品,放入盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内,8000 r/min10000 r/min 均质1 min2 min,或放入盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min2 min，制成1:2.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL 样品置盛有225 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:2.1.3 样品匀液的pH 值应在6.57.5 之间，必要时分别用1 mol/L NaOH 或1 mol/L HCl 调节。2.1.4 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸

12、取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓缓注入9 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支1 mL 无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:2.1.5 根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释1 次，换用1 支1 mL 无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过15 min。2.2 初发酵试验每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤，每管接种1mL（如接种量超过1 mL，则用双料LST肉汤），36

13、1 培养24 h2 h，观察倒管内是否有气泡产生，24 h2 h产气者进行复发酵试验，如未产气则继续培养至48 h2 h，产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。2.3 复发酵试验用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36 培养48 h2 h，观察产气情况。产气者，计为大肠菌群阳性管。2.4 大肠菌群最可能数（MPN）的报告按6.3确证的大肠菌群LST阳性管数，检索MPN表（见附录B），报告每g（mL）样品中大肠菌群的MPN值。（3） 霉菌和酵母菌3.1 样品的稀释3.1.1 固体和半固体样品：称取25 g 样品至盛有225 mL 灭菌蒸

14、馏水的锥形瓶中，充分振摇，即为1:稀释液。或放入盛有225 mL 无菌蒸馏水的均质袋中，用拍击式均质器拍打2min，制成1:10 的样品匀液。3.1.2 液体样品：以无菌吸管吸取25 mL 样品至盛有225 mL 无菌蒸馏水的锥形瓶（可在瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:3.1.3 取1 mL 1:10 稀释液注入含有9 mL 无菌水的试管中, 另换一支1 mL 无菌吸管反复吹吸,此液为1:100 稀释液。3.1.4 按5.1.3 操作程序，制备10 倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1 次1 mL 无菌吸管。3.1.5 根据对样品污染状况的估计，选择2 个3 个适宜稀

15、释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10 倍递增稀释的同时，每个稀释度分别吸取1 mL 样品匀液于2 个无菌平皿内。同时分别取1 mL样品稀释液加入2 个无菌平皿作空白对照。5.1.6 及时将15 mL20 mL 冷却至46 的马铃薯-葡萄糖-琼脂或孟加拉红培养基（可放置于461恒温水浴箱中保温）倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。3.2 培养待琼脂凝固后，将平板倒置，281培养5d，观察并记录。3.3 菌落计数肉眼观察，必要时可用放大镜，记录各稀释倍数和相应的霉菌和酵母数。以菌落形成单位（colonyforming units，CFU）表示。选取菌落数在10 CFU150 CFU 的平

16、板，根据菌落形态分别计数霉菌和酵母数。霉菌蔓延生长覆盖整个平板的可记录为多不可计。菌落数应采用两个平板的平均数。（4） 金黄色葡萄球菌4.1 样品的处理称取25 g 样品至盛有225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或10 %氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质杯内，8000 r/min10000 r/min 均质1 min2 min，或放入盛有225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或10 %氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min2 min。若样品为液态，吸取25 mL 样品至盛有225 mL 7.5 %氯化钠肉汤或10 %氯化钠胰酪胨大豆肉汤的无菌锥形瓶（瓶内可预置适当数量的无菌玻

17、璃珠）中，振荡混匀。4.2 增菌和分离培养4.2.1 将上述样品匀液于36 1 培养18 h24 h。金黄色葡萄球菌在7.5%氯化钠肉汤中呈混浊生长，污染严重时在10%氯化钠胰酪胨大豆肉汤内呈混浊生长。4.2.2 将上述培养物，分别划线接种到Baird-Parker 平板和血平板，血平板36 Baird-Parker 平板36 1 培养18 h24 h 或45 h48 h。4.2.3 金黄色葡萄球菌在Baird-Parker 平板上，菌落直径为2 mm3 mm，颜色呈灰色到黑色，边缘为淡色，周围为一混浊带，在其外层有一透明圈。用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度，偶然会遇到非脂肪溶解的类似菌

18、落；但无混浊带及透明圈。长期保存的冷冻或干燥食品中所分离的菌落比典型菌落所产生的黑色较淡些，外观可能粗糙并干燥。在血平板上，形成菌落较大，圆形、光滑凸起、湿润、金黄色（有时为白色），菌落周围可见完全透明溶血圈。挑取上述菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验。4.3 鉴定4.3.1 染色镜检：金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌，排列呈葡萄球状，无芽胞，无荚膜，直径约为0.5 m1 m。（5） 沙门氏菌 BSXLD（或HE、显色培养基）挑取可疑菌落TSI,赖氨酸，NA，靛基质，尿素（pH7.2），KCNH2S+靛基质+尿素-KCN-赖氨酸+H2S-靛基质-赖氨酸+/-反应结果与左侧描述不符生化鉴定试剂

19、盒或全自动微生物生化鉴定系统+H2S+靛基质-甘露醇+、山梨醇+ONPG-沙门氏菌，血清学试验非沙门氏菌421，18h24h361，40h48h检样25g（ml）样品+225mlBPW1ml+TTB10ml1ml+SC10ml1，8h18h（6） 乳酸菌6 操作步骤6.1 样品制备6.1.1 样品的全部制备过程均应遵循无菌操作程序。6.1.2 冷冻样品可先使其在2 5 条件下解冻，时间不超过18 h，也可在温度不超过45 的条件解冻，时间不超过15 min。6.1.3 固体和半固体食品：以无菌操作称取25 g 样品，置于装有225 mL 生理盐水的无菌均质杯内，于8000 r/min10000

20、 r/min 均质1 min2 min，制成1:10 样品匀液；或置于225 mL 生理盐水的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1 min2 min 制成1:6.1.4 液体样品：液体样品应先将其充分摇匀后以无菌吸管吸取样品25 mL 放入装有225mL 生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分振摇，制成1:6.2 步骤6.2.1 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓慢注于装有9 mL 生理盐水的无菌试管中（注意吸管尖端不要触及稀释液），振摇试管或换用1 支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:6.2.2 另取1 mL 无菌吸管或微量移液器

21、吸头，按上述操作顺序，做10 倍递增样品匀液，每递增稀释一次，即换用1 次1 mL 灭菌吸管或吸头。6.2.3 乳酸菌计数6.2.3.1 乳酸菌总数根据待检样品活菌总数的估计，选择2 个3 个连续的适宜稀释度，每个稀释度吸取0.1 mL 样品匀液分别置于2 个MRS琼脂平板，使用L 形棒进行表面涂布。1，厌氧培养48 h2 h后计数平板上的所有菌落数。从样品稀释到平板涂布要求在15min 内完成。七、实验记录 1、细菌总数记录表10-110-210-3空白菌落总数计算公式N=C/（n1+0.1n2）d 2、大肠菌群计数记录表稀释度培养基3支LST管肉汤管3支BGLB肉汤管3、霉菌总数计数记录表霉菌总数计算公式霉菌总数八、附录：1、大肠菌群最可能数（MPN）检索表 2、实验中国标参照食品微生物检验实验讲义