伪狂犬病检验方法.docx

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伪狂犬病检验方法

十一、伪狂犬病检测办法

伪狂犬病病毒分离鉴定

1材料准备

DMEM培养基、BHK-21细胞、新生犊牛血清、青霉素、链霉素溶液、0.22ul微孔滤膜、细胞培养瓶、CO2培养箱、倒置显微镜。

溶液配制见附录A（原则附录）

2操作环节

2.1病料采集对于刚死亡或活体送检并处死动物，无菌采用肝、脾、肺、肾及其脑组织，特别是三叉神经节、嗅球，4℃送实验室检测。

2.2样品解决待检组织在灭菌乳钵内剪碎，加入灭菌玻璃砂研磨，用灭菌生理盐水或DME培养基制成1：

5乳剂，—70℃重复冻融后，经3000rpm离心30分钟后，取上清液经0.22μm微孔滤膜过滤后，加入青链霉素溶液至最后浓度为100U/mL，—70℃保存作为接种材料。

2.3病料接种将病料滤液接种已长成单层BHK-21细胞，接种量为培养基量10%，37℃恒温箱中吸附1小时后，加入含10%新生犊牛血清（通过56℃水浴灭活30分钟，过滤除菌，无支原体）DMEM培养基，置37℃温箱中培养。

2.4观测成果接种后24—48小时，BHK-21细胞应浮现典型细胞病变效应（Cytopathogeniceffect，CPE），体现为细胞变圆，脱落。

如第一次接种不浮现CPE，应将细胞培养物冻融后盲传三代，如仍无CPE，则判为伪狂犬病病毒阴性。

2.5病毒鉴定将浮现CPE细胞培养物重复冻融后，用聚合酶链式反映、荧光抗体实验等两种办法中任一办法作进一步鉴定。

伪狂犬病聚合酶链式反映

1材料准备:

待检组织、组织匀浆器、蛋白酶K，十二烷基磺酸钠（SDS），苯酚、氯仿，异戊醇（分析纯）、TEN缓冲液。

溶液配制见附录C（原则附录）

引物：

扩增伪狂犬病病毒基因中434—651bp之间217bp基因片段，由上海生物工程公司合成。

序列为，上游引物P1：

5’-CAGGAGGACGAGCTGGGGCT-3’，

下游引物P2：

5’-GTCCACGCCC-CGCTTGAAGCT-3

仪器设备有：

凝胶电泳紫外线检测仪，PCR扩增仪，电泳仪

2操作环节：

2．1样品采集：

对于病死或扑杀动物，取脑组织；对于待检活猪，用已灭菌棉签，伸入猪鼻腔中，采用鼻粘液，即为鼻拭子，冷藏条件送实验室检测。

2.2样品解决所采病料经组织研磨器充分研磨，按1:

5用TEN缓冲液悬浮收集于离心管内，-70℃重复冻融3次，7000r/min离心5min，如样品为鼻试子，则加入2mlTEN缓冲液，充分挤压，取出棉签，7000rpm，离心5分钟，取上清液。

取上清液472.5μl,加入25μl10％SDS和2.5μl20mg/ml蛋白酶K，50℃水浴摇床上放置2h后加入等量饱和酚500μl，涡旋20s。

离心取上清液，加等量酚：

氯仿：

异戍醇（25:

24:

1）抽提一次，再用氯仿：

异戍醇（24：

1）抽提一次，最后用乙醇沉淀，真空抽干后加入20μl双蒸水溶解，-20℃贮存备用。

2.3.PCR操作程序先将制备模板DNA置100℃水浴10分钟作变性解决，，然后及时放于冰浴中。

PCR反映体系为：

总体积25μl，具有50mmol/LKCl,10mmol/LTris-HCl（pH9.0），0.1％TritonX-100，100μmol/LdNTPs，0.35μmol/L引物，2mmol/LMgCl2，及0.5UTaq酶，1μl模板DNA。

惯用反映体系构成如下

10×缓冲液2.5μl

15mMMgCl22.5μl

dNTPs2.0μl

引物各2.0μl

Taq聚合酶1.0μl

DNA模板2.0μl

灭菌去离子水11.0μl

矿物油约20μl

扩増条件为:

94℃变性3分钟，进入循环，94℃60秒，65℃60秒，72℃60秒，40个循环后72℃延伸5分钟。

2.4PCR产物检测PCR扩增产物在1％琼脂糖凝胶上电泳，溴化乙锭染色，在紫外光下观测成果。

为进一步进行PCR扩增产物特异性鉴定，可取PCR产物用SalI酶切，酶切产物在2％琼脂糖凝胶上电泳，EB染色，在紫外光下观测并与原则分子量比较，可见产生140bp和77bp两个片段。

伪狂犬病荧光抗体实验

1材料准备：

碳酸盐缓冲甘油、磷酸盐缓冲液、丙酮（分析纯），伪狂犬病荧光抗体、冰冻切片机，荧光显微镜。

溶液配制见附录D（原则附录）

2操作环节

2．1样品采集扑杀可疑动物，取大脑、淋巴结、扁桃体迅速送检实验室，如不能及时送出，必要冻结保存，避免腐败、自溶。

本法也可用于对疑似伪狂犬病病毒培养物进行鉴定。

2．2切片制备将样品组织块切成1cm×1cm面，不经任何固定解决，直接贴于冰冻切片托上，进行切片，切片厚度规定5—7um，将切片展贴于0.8mm×1mm厚干净载

玻片上。

2．3固定：

将切片置纯丙酮中固定15分钟，取出及时放入0.01mol/L，pH7.2磷酸

盐缓冲液中，轻轻漂洗3—4次，取出，自然干燥后尽快进行荧光抗体染色。

2．4染色将伪狂犬病荧光抗体滴加于切片表面，置温盒内于37℃作用30分钟，取出后放入磷酸盐缓冲液中充分漂洗，再用0.5moL/L，pH9.0—9.5碳酸盐缓冲甘油封固盖片（0.1mm厚），染色后应尽快镜检，必要时可放置低温待检。

2．5观测将染色后切片标本置激发光为蓝紫光或紫外光荧光显微镜下观测。

2．6鉴定：

于荧光显微镜视野中，见细胞中浮现明亮黄绿色荧光，判为伪狂犬病病毒感染阳性。

伪狂犬病微量中和实验（固定病毒，稀释血清法）

1材料准备

1.25%胰酶（配制见附录B）、BHK-21细胞,多道可调微量移液器，,96孔细胞培养板,CO2培养箱，倒置显微镜。

2操作环节

2.1病毒半数组织细胞感染量（TCID50）测定：

2.1.1病毒培养和收获将伪狂犬病毒接种于长成单层BHK-21细胞，接种量为液体培养基量10%,37℃培养，待浮现病变后，冻融，收获病毒。

2.1.2病毒滴定用DMEM培养基将伪狂犬病病毒作持续10倍稀释，即10—1、10—2……每个稀释度取100μL加入96孔细胞培养板中，随后加入经0.25%胰酶消化BHK-21细胞100μL（细胞含量以105/mL左右为宜），每个稀释度作8个重复，并设空白细胞培养对照。

置37℃5%CO2培养箱中。

2.1.3TCID50计算逐日观测细胞病变，并记录细胞病变孔数，直到对照细胞老化脱落为止。

按照Reed-Muench法计算病毒TCID50（详细计算示例见附录B）。

2.2中和实验将无菌采集待检猪血清置56℃水浴灭活30分钟。

用DMEM培养基作倍比稀释，在细胞培养板各孔中加入50μL培养基，随后在第一孔中加入经待检猪血清50μL混合后，用微量移液器取出50μL，加到第二孔中，混匀后取出50μL再加入第三孔中，依此类推。

血清稀释度即为1：

2、1：

4、1：

8……，每份待检血清稀释度作2—4个重复。

将50μL含200个TCID50病毒液加入到不同稀释度血清孔中，37℃作用1小时，每孔中再加入100μL经胰酶消化分散BHK-21细胞，同步设病毒对照、阳性血清、阴性血清，待检血清、正常细胞对照。

2.3计算抗体中和效价逐日观测，直至细胞对照浮现老化脱落为止，按Reed-Muench两氏法，计算抗体中和效价。

如抗体效价为1：

2及1：

2以上，则判为伪狂犬病抗体阳性。

伪狂犬病酶联免疫吸附实验（间接法）

1材料准备：

抗原、酶标抗体，底物（OPD—H2O2），酶联免疫检测仪；溶液配制见附录F（原则附录）

2操作环节：

2.1包被将PRV抗原加入酶标板孔内，每孔100uL，37℃作用1h后置4℃冰箱过夜。

2.2洗涤弃去孔内液体，用洗涤液洗3次，每次3min，用吸水纸拍干

2.3封闭各孔加入封闭液100uL37℃作用1h。

按2.2环节洗涤

2．4加入待检血清待检血清经56oC30分钟灭活将待检血清用洗涤液稀释，每孔100uL，37℃作用1h。

重复2.2环节。

2．5加入酶标抗体用洗涤液将酶标抗体按工作浓度稀释，每孔100uL，37℃作用1h。

重复2.2环节。

2．6加入底物（OPD-H22）：

每孔100uL，室温避光显色25分钟。

2．7终结反映每孔加入50uL终结液终结反映。

2．8测定OD值在酶联免疫检测仪上490nm波长处读数。

2．9血清阴阳性鉴定原则拟定取60份经中和实验检测为PRV抗体阴性猪血清，按1:

20稀释后进行间接ELISA实验，测定490nm波长处OD值，规定以60份血清平均OD值加上3倍原则差作为鉴定阴阳性临界值。

伪狂犬病乳胶凝集实验

1材料准备：

伪狂犬病乳胶凝集抗原、伪狂犬病阳性血清、阴性血清、稀释液，玻片，溶液配制见附录E（原则附录）

2操作环节：

2．1待检血清不须经热灭活或其他方式灭活解决

2．2将待检血清用稀释液作倍比稀释后，各取15μL与等量乳胶凝集抗原在干净干燥玻片上用竹签搅拌充分混合，在3—5分钟内观测成果；也许浮现如下几种凝集成果，即：

100%凝集：

混合液透亮，浮现大凝集块

75%凝集：

混合液几乎透明，浮现大凝集块

50%凝集：

约50%乳胶凝集，凝集颗粒较细

25%凝集；混合液浑浊，有少量凝集颗粒

0%凝集：

混合液浑浊，无凝集颗粒浮现

如浮现50%凝集限度以上（含50%凝集限度），判为伪狂犬病抗体阳性，否则判为抗体阴性。

如为阴性，可用微量中和实验进一步检测。

伪狂犬病琼脂扩散实验

1材料准备琼脂扩散抗原、阴性血清和阳性血清；优质琼脂粉、平皿

2操作环节

2．10.8%琼脂板制作将1克琼脂粉溶于100毫升Tris─盐酸缓冲液（Tris6.5克，NaCl2.9克，NaN30.2克，蒸馏水1000毫升，用HCl调pH值至7.2）中，趁热倾倒于玻璃平皿上，厚度为2—3mm，待冷却凝集后，打孔，中央一孔，周边6孔，孔径为2mm，周边孔之间距离2mm，周边孔与中央孔间距为4mm—6mm，用酒精灯微热封底。

2．2加样将琼脂扩散抗原加到中央孔中，周边孔加经热灭活待检血清，设阴性血清和阳性血清对照。

置温盒37℃作用，24—48小时后观测成果。

2．3成果鉴定在抗原孔与待检血清孔之间浮现白色沉淀线，抗体可判为阳性；如待检血清抗体水平较低，可以观测到与待检血清相邻阳性血清沉淀线末端略向抗原抗弯曲。

阴性血清与抗原孔之间则没有沉淀线。

伪狂犬病区别强弱毒感染鉴别乳胶凝集实验

1．猪伪狂犬病gG鉴别诊断乳胶凝集实验

伪狂犬病gG鉴别诊断乳胶凝集实验是用伪狂犬病毒gG基因基因工程表达产物致敏乳胶抗本来检测动物血清、全血或乳汁中抗gG蛋白抗体。

用于伪狂犬病毒感染猪与gG基因缺失疫苗注苗猪免疫学鉴别诊断。

1．1材料准备：

伪狂犬病毒gG蛋白致敏乳胶抗原、伪狂犬病毒致敏乳胶抗原、伪狂犬病毒阳性血清和注射gG基因缺失疫苗血清、玻片、吸头等。

1．2操作环节

1．2．1对照实验检测之前应做对照实验，浮现如下成果实验方可成立，否则应重试，如重试仍不浮现如下成果则停止使用：

伪狂犬病毒阳性血清加gG蛋白致敏乳胶抗原呈阳性凝集；注射gG基因缺失疫苗血清加gG蛋白致敏乳胶抗原呈阴性凝集；伪狂犬病毒阳性血清与注射gG基因缺失疫苗血清加伪狂犬病毒致敏乳胶抗原均呈阳性凝集。

1．2．2检测实验

1．2．2．1待检血清不须经热灭活或其他方式灭活解决

1．2．2．2待检血清一滴，置于玻片上。

加gG蛋白致敏乳胶抗原一滴，用牙签混匀，搅拌并摇动1-2分钟，于3-5分钟内观测成果（注：

gG蛋白致敏乳胶抗原与血清反映凝集颗粒较细）；也许浮现如下几种凝集成果，即：

“++++”所有乳胶凝集，颗粒聚于液滴边沿，液体完全透明；

“+++”大某些乳胶凝集，颗粒明显，液体稍混浊；

“++”约一半乳胶凝集，但颗粒较细，液体较混浊；

“+”有少量凝集，液体呈混浊；

“—”液滴呈原有均匀乳状。

以浮现“++”以上凝集者判为阳性凝集。

2．猪伪狂犬病gE鉴别诊断乳胶凝集实验

伪狂犬病gE鉴别诊断乳胶凝集实验是用伪狂犬病毒gE基因基因工程表达产物致敏乳胶抗本来检测动物血清、全血或乳汁中抗gE蛋白抗体。

用于伪狂犬病毒感染猪与gE基因缺失疫苗注苗猪免疫学鉴别诊断。

1．1材料准备：

伪狂犬病毒gE蛋白致敏乳胶抗原、伪狂犬病毒致敏乳胶抗原、伪狂犬病毒阳性血清和注射gG基因缺失疫苗血清、玻片、吸头等。

1．2操作环节

1．2．1对照实验检测之前应做对照实验，浮现如下成果实验方可成立，否则应重试，如重试仍不浮现如下成果则停止使用：

伪狂犬病毒阳性血清加gE蛋白致敏乳胶抗原呈阳性凝集；注射gE基因缺失疫苗血清加gE蛋白致敏乳胶抗原呈阴性凝集；伪狂犬病毒阳性血清与注射gE基因缺失疫苗血清加伪狂犬病毒致敏乳胶抗原均呈阳性凝集。

1．2．2检测实验

1．2．2．1待检血清不须经热灭活或其他方式灭活解决

1．2．2．2待检血清一滴，置于玻片上。

加gE蛋白致敏乳胶抗原一滴，用牙签混匀，搅拌并摇动1-2分钟，于3-5分钟内观测成果（注：

gE蛋白致敏乳胶抗原与血清反映凝集颗粒较细）；也许浮现如下几种凝集成果，即：

“++++”所有乳胶凝集，颗粒聚于液滴边沿，液体完全透明；

“+++”大某些乳胶凝集，颗粒明显，液体稍混浊；

“++”约一半乳胶凝集，但颗粒较细，液体较混浊；

“+”有少量凝集，液体呈混浊；

“—”液滴呈原有均匀乳状。

以浮现“++”以上凝集者判为阳性凝集。

伪狂犬病区别强弱毒感染鉴别ELISA

1．伪狂犬病gG-ELISA鉴别诊断（间接法）

伪狂犬病gG-ELISA鉴别诊断是用伪狂犬病毒gG基因基因工程表达产物包被ELISA板用来检测动物血清中抗gG蛋白抗体。

用于伪狂犬病毒感染猪与gG基因缺失疫苗注苗猪免疫学鉴别诊断。

1．1材料准备：

gG蛋白包被ELISA板、酶标抗体，底物（OPD—H2O2），酶联免疫检测仪；溶液配制见附录F（原则附录）

1．2操作环节：

1．2.1加入待检血清待检血清经56oC30分钟灭活后用保温液作40倍稀释，每孔加入，37℃作用30min。

1．2.2洗涤弃去孔内液体，每孔用200uL洗涤液洗3次，每次3min，用吸水纸拍干。

1．2.3加入酶标抗体用洗涤液将酶标抗体按工作浓度稀释，每孔100uL，37℃作用30min,重复2.2环节。

1．2．4加入底物（OPD-H2O2）：

每孔100uL，室温避光显色25分钟。

1．2．5终结反映每孔加入50uL终结液终结反映。

1．2．6测定OD值在酶联免疫检测仪上490nm波长处读数。

测定490nm波长处OD值，记为P值，阴性对照OD值记为N值，N值如不大于0.1时，按0.1计算，不不大于0.1时为实际值。

当阳性对照孔OD值―阴性对照OD值不不大于0.25时，实验成立。

1．2．7成果鉴定：

P/N≥2.1判为gG抗体阳性

P/N≤1.9判为gG抗体阴性,

1.9

2．伪狂犬病gE-ELISA鉴别诊断（间接法）

伪狂犬病gE-ELISA鉴别诊断是用伪狂犬病毒gE基因基因工程表达产物包被ELISA板用来检测动物血清中抗gE蛋白抗体。

用于伪狂犬病毒感染猪与gE基因缺失疫苗注苗猪免疫学鉴别诊断。

2．1材料准备：

gE蛋白包被ELISA板、酶标抗体，底物（OPD—H2O2），酶联免疫检测仪；溶液配制见附录F（原则附录）

2．2操作环节：

2．2.1加入待检血清待检血清经56oC30分钟灭活后用保温液作40倍稀释，每孔加入，37℃作用30min。

2．2.2洗涤弃去孔内液体，每孔用200uL洗涤液洗3次，每次3min，用吸水纸拍干。

2．2.3加入酶标抗体用洗涤液将酶标抗体按工作浓度稀释，每孔100uL，37℃作用30min,重复2.2环节。

2．2．4加入底物（OPD-H2O2）：

每孔100uL，室温避光显色25分钟。

2．2．5终结反映每孔加入50uL终结液终结反映。

2．2．6测定OD值在酶联免疫检测仪上490nm波长处读数。

测定490nm波长处OD值，记为P值，阴性对照OD值记为N值，N值如不大于0.1时，按0.1计算，不不大于0.1时为实际值。

当阳性对照孔OD值―阴性对照OD值不不大于0.25时，实验成立。

2．2．7成果鉴定：

P/N≥2.1判为gE抗体阳性

P/N≤1.9判为gE抗体阴性

1.9

伪狂犬病病毒血凝（HA）与血凝抑制（HI）实验办法

（一）红血球制备：

将小白鼠尾尖剪断，插入盛有灭菌阿氏液离心管抽气瓶中，负压抽吸，采血完毕后，将离心管取出，用PBS洗涤3次，每次1500转/分钟离心10分钟，使用时加PBS配成0.1%红血球悬液。

（二）待测血清预解决：

取待测血清0.1毫升加PBS0.3毫升，56℃灭活30分钟，加入0.4毫升25%白陶土25℃振荡1小时，离心取上清液加入0.1毫升配好0.1%红血球悬液37℃作用1小时,离心除去红血球,上清液作为1:

8稀释血清用于HI实验.

（三）HA实验操作:

选用96孔V型板每孔加入PBS50微升,在第一排孔前6孔内加入50微升PrV病毒液,后两孔作为空白对照,用微量加样器作倍比稀释,从1:

2至1:

1024,即将第一排孔病毒液混匀后吸出50微升至第二排孔均匀混合,再从第二排孔吸出50微升至第三排孔,依次类推至最后一排孔取50微升弃掉,每孔加入50微升0.1%红血球，在振荡器较微振荡混合均匀，以一定温度作用2小时，观测成果，以完全凝集红血球最大稀释倍数作为一种血凝单位。

（四）HI实验操作：

在96孔V型板中每孔加入50微升PBS液，然后在第一排孔前6孔内加入50微升已解决血清作为对照，用微量加样器将血清倍比稀释从1：

2至1：

1024，然后各孔加入50微升用PBS稀释好4个血凝单位病毒液，每孔分别加入50微升0.1%红血球悬液，混合均匀后室温放置2小时，观测成果。

（吴斌何启盖）

进口伪狂犬病抗体检测试剂盒（用于普查）

一、试剂

贮存在2-7℃

1．PRV包被酶标板5块

2．抗猪辣根过氧化物酶（HRP）连结物（酶标抗体）60ml

3．PRV阳性对照血清4ml

4．PRV阴性对照血清4ml

5．样品稀释液175ml

6．洗涤液（10×）250ml

7．TMB底物60ml

8．终结液60ml

二、样品准备

用样品稀释液按1：

20稀释待检血清。

（如20ul样品加380ul样品稀释液）。

注意：

阴、阳性对照不稀释。

每同样品必要更换吸嘴，并记录样品在板上位置，在样品加到酶标孔内之前必

须混合均匀。

三、洗涤液准备

浓缩洗涤液（10×）应置室温并摇动使沉淀盐能充分溶解。

在用之前，浓缩洗涤

液（10×）应用蒸馏水或去离子水接1：

10稀释（如30ml浓缩洗涤液加270ml蒸馏水或去离子水即可用于一块板洗涤）。

四、实验过程

在使用之前所有试剂必要置室温并轻轻摇动或涡旋。

1．取出酶标板并记录样品在板上位置。

2．在A1、A2、A3孔内各加未稀释阴性对照100ul。

3．在A4、A5、A6孔内各加未稀释阳性对照100ul。

4．加100ul已稀释样品（1：

20）到相应孔内，每同样品应同步做2孔。

5．室温作用30分钟。

6．倾去孔内液体到废液缸内。

7．每孔用近300ul洗涤液洗3-5次，每次洗后倾去孔内液体。

在加酶标抗体之前

应避免孔内干燥，最后一次洗涤后应在吸水材料上拍干酶标板。

8．在每一孔内加入100ul抗猪酶标抗体。

9．室温作用30分钟。

10．重复环节6和7。

11．在每一孔内加入TMB底物溶液100ul。

12．室温显色15分钟。

13．每一孔内加入100ul终结剂以终结反映。

14．空气调零。

15．在650nm测量并记录样品和对照吸取值。

16．计算成果。

五、成果

阳性对照平均值（PCX）与阴性对照平均值（NCX）之差（P-N）不不大于或等于0.15时实验方成立。

并且阴性对照平均值（NCX）必要不大于或等于0.15。

如果实验不成立，也许操作有误，实验应在熟悉产品阐明书后重试。

每同样品内针对PRV抗体有无是由样品与阳性对照比率（S/P）来拟定。

阳性对照已原则化且有很高水平PRV抗体。

六、成果阐明

1．S/P比值不大于0.4样品拟定为PRV抗体阴性。

2．S/P比值不不大于或等于0.4样品拟定为PRV抗体阳性。

在该实验中定为阳性样品

应再用“伪狂犬病抗体确认试剂盒”来进一步证明其阳性真假。

七、计算

1．阴性对照平均值（NCX）计算

A1A（650）+A2A（650）+A3A（650）0.06+0.063+0.069

NCX=——————————————————例如：

————————=0.064

33

2．阳性对照平均值（PCX）计算

A4A（650）+A5A（650）+A6A（650）0.313+0.299+0.33

NCX=——————————————————例如：

————————=0.314

33

3．S/P比值计算例如：

某样品平均值=0.350

SampleA（650）—NCX0.350-640.286

S/P=————————————S/P=——————=————=1.14

PCX—NCX0.314-0.0640.250

（华中农大覃雅丽、唐勇译）

伪狂犬病gE抗体试剂盒（进口）

一、试剂

贮存在2-7℃

1.PRV包被酶标板6块

2.抗PRV-gE辣根过氧化物酶（HRP）连结物（酶标抗体）60ml

3.阴性猪血清对照-不与PRV-gE反映猪血清5ml

4.阳性对照血清-抗PRV-gE5ml

5.样品稀释液120ml

6.洗涤液（10×）235ml

7.TMB底物60ml

8.8．终结液60ml

二、样品准备

用样品稀释液按1：

2比例稀释待检血清。

每同样品必要更换吸嘴，样品加到酶标孔内之前必要混合均匀。

三、洗涤液准备

浓缩洗涤液（10×）应平衡到室温，摇动使沉淀盐能充分溶解。

在用之前，浓缩洗涤液（10×）应用蒸馏水或去离子水按1：

10稀释（如30ml浓缩洗涤液加270ml蒸馏水或去离子水即可用于一块板洗涤）。

四、实验过程

在使用之前所有试剂必要平衡到室温，用前轻轻摇动混匀。

1．取出酶标板在记录纸上标记好样品在板上位置。

2．在A1、A2、A3孔内各加100ul阴性对照（1:

2稀释）。

3．在A4、A5孔内加入100ul阳性对照（1:

2稀释）。

4．加100ul已稀释样品（1：

2）加到相应孔内。

5．于室温放置1小时或者于2-7℃过夜。

6．倾去孔内液体到废液缸内。

7．每孔用近300ul洗涤液洗3-5次，每次3-5分钟。

每次洗后倾去孔内液体，在洗涤过程中应避免孔内干燥，最后一次洗涤后应在吸水材料上拍干酶标板。

10．在每一孔内加入100ul抗PRV-gE酶标抗体。

11．室温放置20分钟。

10．重复环节6和7。

17．在每一孔内加入TMB底物溶液100ul。

18．室温显色15分钟。

19．每一孔内加入100ul终结剂以终结反映。

20．对空调零。

21．在650nm测量并记录样品和对照吸取值。

22．计算成果。

五、成果

阳性对照平均值（PCX）与阴性对照平均值（NCX）之差（P-N）不不大于或等于0.3时实验方成立。

如果实验不成立，也许操作有误，实验应在熟悉产品阐明书后重试。

每同样品内针对PRV-gE抗体有无是由样品与阴性对照比率（S/N）来拟定。