大鼠海马神经元的培养及细胞培养注意事项.docx

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大鼠海马神经元的培养及细胞培养注意事项

1.成年大鼠海马神经元的培养

●步骤

1.获得海马细胞

◆大鼠乙醚麻醉,断头处理;

◆迅速解剖海马组织,置于含有2ml4℃的HibernateA/B27的35mm的培养皿中;

◆随后将其移入含有同上培养基的培养皿,去除脑膜及多余的脑白质(?

);

◆将海马移入组织切碎机冷处理台面上事先用HibernateA/B27润湿的滤纸上,沿海马长轴将组织切成的薄片,随后将其移入含有5ml4℃的HibernateA/B27的离心管中;

◆30℃震荡8min。

◆大吸管将其移入含有木瓜蛋白酶(预热至30℃)的离心管,置于170rpm的旋转平台(保持组织片悬浮状态),30℃水域温育30min;

◆将海马组织切片移入15ml含有2mlHibernateA/B27的离心管中,30℃温育5min,吸管吹打10次(30s),静置2min,将上清移入另一离心管,重复上述步骤2次;

2.梯度分离

◆将细胞悬液加入Nycoprepgradient(4ml)的上方,室温,1900rpm,离心15min;去除最上方的碎片;吸管收集含有细胞的部分;用5mlHibernateA稀释;第三层富含神经元;将第四层用2mlB27:

NeurobasalA重悬,1100rpm离心1min;

3.盖玻片处理:

50ug/mL多聚-D-赖氨酸(无菌水溶解)包被过夜,吸去多余的多聚赖氨酸,无菌水漂洗一次,自然干燥1h;

4.

◆细胞接种:

以目标密度稀释于B27:

NeurobasalA,以每盖玻片60到120Ul接种,置于5%CO2:

9%O2中孵育1h;

◆将盖玻片移入24孔培养板中,每孔以0.4ml37℃B27/NeurobasalA漂洗一次,去除未贴壁细胞及细胞碎片;改用的生长培养基;

◆培养后4天,每3-4天更换一半培养基;新的培养基中的FGF2含量是远培养基的2倍;

 

1.培养器皿的准备:

1)溶液瓶——装配各种溶液——输液瓶;

2)螺口瓶——血清或培养基;

3)培养瓶——细胞培养——一般采用带螺口的,清洗时注意防止盖子中垫片的丢失;

4)培养皿——细胞组织的分离、培养、染色——包括直径为30mm、60mm、120mm

5)血球细胞计数板——细胞计数

6)移液管——连接上手动(吸耳球)或电动负压吸取装置——在移液管尾部塞入少量脱脂棉;

7)离心管——分离、漂洗、收集细胞——一般选用螺口带盖的;Eppendorf——塑料尖底带盖的离心管

8)磁力搅拌器:

用于神经细胞的分离机溶液的配置;最好配合使用可调温度的加热装置;可用高压蒸汽消毒。

9)加样器:

微量加样器——一般采用紫外线消毒:

超净台内,<30cm,20~30min;移液器吸嘴置于移液器吸嘴盒中高压消毒。

10)培养板(塑料消毒密封装备的即用型)——盖板及带圆孔的底板;

2.无菌室操作规范:

1)使用无菌间前先用无菌间的紫外灯照射30min,然后打开通风装置30min以消除实验室中的臭氧。

操作结束后及时清理无菌间,紫外灯照射20min。

2)进入无菌间前洗手,带好口罩、手套,更换无菌间的鞋子、衣服方可进入

3.超净台操作规范:

1)超净台使用前先用70~75%酒精擦拭,然后用超净台的紫外灯消毒30min,关灯打开风机后使用;使用完成后及时清理台面并用酒精擦拭台面;

2)超净台内不放与实验无关的东西;

3)超净台内非一次性物品都需灭菌处理,不能高压灭菌的用70%-75%的酒精消毒;

4)操作人员的手套用70%-75%的酒精消毒方可进入超净台操作;

5)操作时尽量接近酒精灯;拿取吸管时避免接触使用端;不要在开口器上方操作;吸取不同液体用不同的吸管;吸管不接触瓶口;培养用吸管、培养瓶等开口常规在酒精灯上过火;

4.常用仪器的使用:

(一)电热干燥箱:

1)用于玻璃器皿的消毒,而塑料、橡胶制品及金属器械不用于干热消毒

2)干热消毒的温度一般为160-170℃;用于RNA实验的器皿为250℃;

3)进行消毒后,鼓风和升温同时开始,待温度升至100℃时,关闭鼓风;消毒结束后,待温度降至100℃以下时打开箱门;

4)消毒完成后,将灭菌处理的器皿置于56℃电热干燥箱内长期保存

(二)CO2培养箱

1)将不透气的培养瓶/培养皿置于培养箱时,应旋松螺口使之与外界气流相通维持PH的恒定;取出是应旋紧开口;

2)保持培养箱内空气的洁净,定期用酒精或紫外线消毒;

3)保持培养箱内较高的湿度——定期在外箱内加水或将无菌潮湿的纱布置于托盘内;

(三)高压蒸汽灭菌器——适用于玻璃器皿、塑料器皿、橡胶制品、金属制品及培养用水、平衡盐液、布料的消毒灭菌。

1)灭菌的液体应置于耐高温的玻璃器皿中,容量为总容量的1/2~3/4,瓶塞要有通气口;

5.培养用液:

(一)水

1)培养用水一般使用三蒸水,或者二蒸水+去离子处理;高压蒸汽灭菌后使用;

2)新鲜使用,一般不超过2周;

3)外购的蒸馏水一般为金属蒸馏器制备,一般需要用石英或玻璃蒸馏器在蒸馏一次

(二)平衡盐:

1)取材和分离细胞中,细胞必须全程维持于生理PH和渗透压的平衡盐液中;

2)以酚红作为指示剂,正常呈红色,酸性呈黄色,碱性呈紫色;酚红一般对细胞无毒,但在强光下可产生细胞毒性。

3)碳酸氢盐缓冲系统在空气中易变碱;磷酸盐缓冲系统、HEPES可维持空气中的酸碱平衡。

4)配置时:

用新鲜培养用水配置;溶质称量应准确;先溶解Ca,Mg,再溶解其他成分,且前一种物质溶解后再溶解后一种物质;先将物质溶解于少量液体,配置完后再定容;

5)用高压蒸汽灭菌(8磅15min)或过滤除菌

6)灭菌后4℃贮存

7)配置的平衡盐的PH并不是细胞最合适的,根据情况调节PH至

8)Hanks(HBSS)——D-Hanks(不含Ca,Mg,不含葡萄糖)

(三)血清:

1)外观:

清亮透明,棕黄色或土黄色,无沉淀或极少沉淀,比较粘稠

2)清蛋白>35~45g,球蛋白<20g,血红蛋白越低越好

3)存储:

●新购血清——56℃30min热灭活(高品质胎牛血清及新生牛血清可不灭活);

●若一次用不完,将其分装,置于-20℃,保存6~12月;

●使用时,从-20℃取出,置于4℃24h(4℃可保存1月),置于37℃水域温热;溶解过程中必须规则缓慢摇匀。

●避免反复冻融。

(四)基础培养基

1)认真阅读说明书,注意添加成分;

2)配置时应充分溶解,NaCO3应最后添加

3)配置所用器皿应十分清洁,所用水为培养用水;

4)配置后超净台内过滤除菌,4℃保存(=<7d)

5)使用前37℃预热;

6)如DMEM(营养成分浓度高,含有Ca,Mg),F12(营养成分丰富,浓度较低)

(五)谷氨酰胺补充液:

(146g/mol)

1)谷氨酰胺不稳定,一般配置成100×的贮液,-20℃保存

2)配置时应加温至30℃,充分溶解后过滤除菌,-20℃保存;

3)使用前添加,终浓度为2mmol/L

4)若培养基内已添加谷氨酰胺,4℃储存2~4周应加入原剂量的谷氨酰胺

(六)胰蛋白酶液

1)称取胰蛋白酶置于容器内加入少量D-hanks液调至糊状——然后加入D-hanks至100ml——加入NaCO3调节PH至8——4℃过夜——NaCO3/mol/LHCl调节PH至——粗滤纸过滤——过滤除菌——分装成小份-20℃保存

2)使用时4℃过夜,室温/水浴活化

3)使用时终浓度为0.05%

(七)DNA酶

1)降解DNA,有助于细胞分离——在吹打分离细胞时加入

2)称取酶置于容器内加入少量D-hanks液调至糊状——然后加入D-hanks至100ml——4℃过夜——NaCO3/HCl调节PH至——粗滤纸过滤——过滤除菌——分装成小份-20℃保存

3)使用时4℃过夜,室温/水浴活化

(八)Neurosal:

——未开封4℃避光保存6月,开封后4℃避光保存1月

(九)B27:

新购后分装,-70℃保存;4℃保存一周。

避免反复冻融

(十)多聚赖氨酸

1)使用浓度:

100ug/ml;使用剂量:

2)新购后应立即分装,-20℃保存。

使用前溶解(室温30min),4℃保存1周。

3)避免反复冻融,冻融2次后不要使用

(十一)抗生素液

1)将10000u的青霉素/10mg链霉素加入PBS液中溶解——加PBS液至100ml——分装-20℃贮存

2)使用时加入培养基:

终浓度为青霉素100u/mL,链霉素100ug/mL。

6.培养器皿的清洗消毒灭菌

(一)玻璃器皿的清洗

1)浸泡:

●重复使用的器皿使用后立即浸泡于自来水中;

●新使用的器皿使用前先浸泡于自来水中,然后用5%HCl浸泡过夜;

●要求:

完全浸泡于水中,器皿内完全充满清水不留有空气死腔;

2)刷洗:

用优质的洗涤液及软毛刷刷洗,刷洗后用水冲尽洗涤剂,晾干;

3)浸酸:

将器皿浸于配置好的酸液中

要求:

完全浸泡于水中,器皿内完全充满酸液不留有空气死腔

浸泡过夜(至少>6h)

注意:

酸液呈棕红色,若呈绿色提示酸液失效,应更换酸液;

4)冲洗:

方法一:

用洗涤装置冲洗;自然晾干;

方法二:

流水灌满后倒掉(>15次)然后蒸馏水冲洗2~3次;自然晾干;

(二)塑料器皿的清洗灭菌

●塑料器皿一般为一次性使用,拆开包装即可使用,使用后即弃;

●若欲重复使用,可按如下步骤:

流水冲净,晾干——2%NaOH浸泡过夜——自来水冲洗数遍——5%HCl浸泡30min——自来水冲洗(15遍)——单蒸水浸洗3次——双蒸水浸泡24h——70%酒精浸泡>1h——超净台紫外线照射>1h——使用;

(三)胶塞、盖子的清洗

自来水浸泡——2%NaOH煮沸10~20min——自来水冲洗5~6遍——1%HCL浸泡1h——自来水冲洗5~6遍——蒸馏水漂洗2—3遍——晾干;

(四)手术器械的清洗:

纱布拭去表面污物——自来水洗净——酒精棉球擦拭

(五)注射器的清洗:

使用后用来苏水冲洗数次——单蒸水洗3次——95%酒精洗3次——置于铝饭盒中。

(六)滤器的清洗消毒及使用

1)清洗:

使用后用清洗液清洗——自来水冲洗15min——去离子水浸泡24h——三蒸水浸泡24h

2)消毒:

新的滤膜(每次更换)于双蒸水中浸泡5~10min,正面朝上置于滤器中,稍旋旋钮(不宜过紧),包装后高压蒸汽消毒——消毒后无菌条件下旋紧旋钮——行过滤

3)过滤完成后常规打开滤器,核实滤器有无破裂或移动。

(七)包装:

1)培养瓶、培养皿、胶塞、盖子等直接置于铝饭盒中(螺口旋松);

2)移液管、吸管头端用脱脂棉球将接口端堵塞,置于消毒桶中,桶底部垫纱布;

3)注射器,金属器械用纱布包好后置于铝饭盒中;

4)移液器的吸管头、小滤器置于专用的塑料盒中;

(八)消毒灭菌

1)干热消毒——适用于玻璃器皿160~170℃90~120min

2)湿热消毒——适用于玻璃器皿、布类、金属器械、橡胶制品的消毒灭菌

金属器械、玻璃器皿、布类——15磅30min;

常规使用液体——15磅15min;

橡胶制品——10磅10min;

湿热消毒后应置于37~56℃的温箱中储存;

3)过滤消毒——适用于培养基、消化液及血清的消毒灭菌;

4)经高压蒸汽灭菌,用双层布包裹置于干燥环境中可保持无菌10~14d;

7.为了便于固定及染色细胞,可将细胞接种于盖玻片上,盖玻片置于培养皿或培养板中,盖玻片可取出固定染色及封片

8.组织获取:

时间尽可能短,保持组织无菌状态,保持组织的湿润。

9.细胞的分离——单细胞悬液

方法:

1)使用不含Ca,Mg等二价阳离子的平衡盐溶液收集、分散细胞

2)酶消化法:

1不用含有Ca,Mg等二价阳离子的平衡盐溶液/含血清或其他蛋白质的溶液溶解酶

2控制于适宜的PH环境

3消化处理后及时终止酶的活性——离心漂洗/加入血清或特殊抑制剂

3)机械吹打法:

1吹打口径越小对细胞损伤越大

2不时让未离散的组织块下沉,及时收集含有分散细胞的悬液;加入新的平衡盐液重复上述过程

3将组织块从吸管中排除时,应将吸管置于液面以上,并贴于试管壁排除——避免产生气泡及由此引起的细胞的破裂

4要缓慢吹打。

吸入时候要很缓慢,吹出的时候可以略快,但是也要缓慢

10.培养物的维持:

1)维持于能自动注入空气及CO2的培养箱内

2)保持较高的湿度,减少蒸发

3)温度:

维持于略低于37℃,细胞在>39℃时可迅速死亡

4)换液时间依不同细胞而定。

11.培养板:

1)培养板属于半开放培养,有利于培养箱中CO2的交换。

2)孔直径愈小,细胞聚集现象越明显,24、96孔板这种现象不可避免,因为液体的附壁使得孔内培养液不是成一个液平面,而是周边高,就像凹镜一样,而使用这两种孔板由于需要加干预等原因而不能加足量培养液,使得细胞随培养液一起出现“边集”现象,如果为了使孔中央也有均匀细胞而增加接种细胞数量的话,这要看你需要观察何种指标,如果是MTT,免疫组化的话会因为细胞成层而影响结果。

对策:

消化细胞时要注意吹打均匀,避免细胞成团;

孔内培养液量要足够,接种时加足量培养液,加干预时换一次液,干预液加培养液量等于接种时培养液量,这样的话“边集”现象会有所改观。

培养种板之前,把培养板放入培养箱里进行几个小时的饱和后再取出。

种入细胞时力量要轻,可采取用滴头在培养板孔的侧面慢慢加入让细胞悬液流入板孔中。

铺板后不要做圆周的晃动,做十字晃动,即上下左右晃动。

教你如何用WORD文档(2012-06-27192246)转载▼

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杂谈

1.问:

WORD里边怎样设置每页不同的页眉?

如何使不同的章节显示的页眉不同?

答:

分节,每节可以设置不同的页眉。

文件――页面设置――版式――页眉和页脚――首页不同。

2.问:

请问word中怎样让每一章用不同的页眉?

怎么我现在只能用一个页眉,一改就全部改了?

答:

在插入分隔符里,选插入分节符,可以选连续的那个,然后下一页改页眉前,按一下“同前”钮,再做的改动就不影响前面的了。

简言之,分节符使得它们独立了。

这个工具栏上的“同前”按钮就显示在工具栏上,不过是图标的形式,把光标移到上面就显示出”同前“两个字来。

3.问:

如何合并两个WORD文档,不同的页眉需要先写两个文件,然后合并,如何做?

答:

页眉设置中,选择奇偶页不同与前不同等选项。

4.问:

WORD编辑页眉设置,如何实现奇偶页不同比如:

单页浙江大学学位论文,这一个容易设;双页:

(每章标题),这一个有什么技巧啊?

答:

插入节分隔符,与前节设置相同去掉,再设置奇偶页不同。

5.问:

怎样使WORD文档只有第一页没有页眉,页脚?

答:

页面设置-页眉和页脚,选首页不同,然后选中首页页眉中的小箭头,格式-边框和底纹,选择无,这个只要在“视图”――“页眉页脚”,其中的页面设置里,不要整个文档,就可以看到一个“同前”的标志,不选,前后的设置情况就不同了。

6.问:

如何从第三页起设置页眉?

答:

在第二页末插入分节符,在第三页的页眉格式中去掉同前节,如果第一、二页还有页眉,把它设置成正文就可以了

●在新建文档中,菜单―视图―页脚―插入页码―页码格式―起始页码为0,确定;●菜单―文件―页面设置―版式―首页不同,确定;●将光标放到第一页末,菜单―文件―页面设置―版式―首页不同―应用于插入点之后,确定。

第2步与第三步差别在于第2步应用于整篇文档,第3步应用于插入点之后。

这样,做两次首页不同以后,页码从第三页开始从1编号,完成。

7.问:

WORD页眉自动出现一根直线,请问怎么处理?

答:

格式从“页眉”改为“清除格式”,就在“格式”快捷工具栏最左边;选中页眉文字和箭头,格式-边框和底纹-设置选无。

8.问:

页眉一般是---------,上面写上题目或者其它,想做的是把这根线变为双线,WORD中修改页眉的那根线怎么改成双线的

答:

按以下步骤操作去做:

●选中页眉的文字,包括最后面的箭头●格式-边框和底纹●选线性为双线的●在预览里,点击左下小方块,预览的图形会出现双线●确定▲上面和下面自己可以设置,点击在预览周围的四个小方块,页眉线就可以在不同的位置。

9.问:

Word中的脚注如何删除?

把正文相应的符号删除,内容可以删除,但最后那个格式还在,应该怎么办?

答:

步骤如下:

1、切换到普通视图,菜单中“视图”――“脚注”,这时最下方出现了尾注的编辑栏。

2、在尾注的下拉菜单中选择“尾注分隔符”,这时那条短横线出现了,选中它,删除。

3、再在下拉菜单中选择“尾注延续分隔符”,这是那条长横线出现了,选中它,删除。

4、切换回到页面视图。

尾注和脚注应该都是一样的。

10.问:

Word里面有没有自动断词得功能常常有得单词太长了,如果能设置下自动断词就好了

答:

在工具―语言―断字―自动断字,勾上,word还是很强大的。

11.问:

如何将word文档里的繁体字改为简化字?

答:

工具―语言―中文简繁转换。

12.问:

怎样微调WORD表格线?

WORD表格上下竖线不能对齐,用鼠标拖动其中一条线,可是一拖就跑老远,想微调表格竖线让上下对齐,请问该怎么办?

答:

选定上下两个单元格,然后指定其宽度就可以对齐了,再怎么拉都行pressAlt,打开绘图,其中有个调整坐标线,单击,将其中水平间距与垂直间距都调到最小值即可。

打开绘图,然后在左下脚的绘图网格里设置,把水平和垂直间距设置得最小。

13.问:

怎样微调word表格线?

我的word表格上下竖线不能对齐,用鼠标拖动其中一条线,可是一拖就跑老远,我想微调表格竖线让上下对齐,请问该怎么办?

答:

可以如下操作:

●按住ctl键还是shift,你haveatry●doubleclicktheline,tryit)●打开绘图,设置一下网格(在左下角)。

使水平和垂直都为最小,试一把!

●pressAlt

14.问:

怎么把word文档里已经有的分页符去掉?

答:

先在工具――选项――视图――格式标记,选中全部,然后就能够看到分页符,delete就ok了。

15.问:

Word中下标的大小可以改的吗

答:

格式―字体

16.问:

Word里怎么自动生成目录啊

答:

用“格式样式和格式”编辑文章中的小标题,然后插入-索引和目录

17.问:

Word的文档结构图能否整个复制论文要写目录了,不想再照着文档结构图输入一遍,有办法复制粘贴过来吗?

答:

可以自动生成的,插入索引目录。

18.问:

做目录的时候有什么办法时右边的页码对齐?

比如:

1.1标题..........11.2标题...............2

答:

画表格,然后把页码都放到一个格子里靠右或居中,然后让表格的线条消隐就可以了,打印出来就很整齐。

19.问:

怎样在word中将所有大写字母转为小写?

比如一句全大写的转为全小写的答:

格式-更改大小写-小写

20.问:

在存盘的时候,出现了问题,症状如下:

磁盘已满或打开文件过多,不能保存,另开新窗口重存也不管用。

如何解决?

答:

把word文档全选,然后复制,然后关掉word,电脑提示你粘贴板上有东西,要不要用于别的程序,选是,然后,再重

新打开word,然后粘贴,然后,保存。

21.问:

WORD中的表格一复制粘贴到PPT中就散掉了,怎么把WORD里面的表格原样粘贴到PPT中?

答:

1)比较好的方法是:

先把表格单独存为一WORD文件,然后插入--对象,选由文件创建,然后选中上面的WORD文件,确定;2)还可以先把表格copy到excel中,然后copy到PPT中,这个也是比较好的办法;3)可以先做成文本框,再粘贴过去;4)复制粘贴,但是在PPT中不能粘在文本框里面;5)拷屏,做成图片,再弄到PPT里面。

22.问:

有没有办法将PPT的文字拷入WORD里面?

答:

另存就可以了。

只要以.rtf格式另存即可

23.问:

word中图片的分栏如何处理?

假如有:

12图34这样的结构,我想实现:

13图(要横跨两栏)24但是,试了半天总是:

12图34怎么办呀?

help!

答:

设置图片格式――版式――高级――文字环绕――环绕方式选上下型――图片位置――对齐方式选居中――度量依据选页面,要先改文字环绕,然后才能改图片位置

24.问:

用word写东西时字距老是变动,有时候自动隔得很开,有时候进入下一行的时侯,上一行的字距又自动变大了,这是为什么?

怎么纠正啊?

答:

是因为自动对齐的功能,格式――段落――对齐方式可以选。

还有允许断字的功能如果check上,就不会出现你说的情况了。

25.问:

在使用WORD的样式之后,如标题1、标题2之类的,在这些样式前面总会出现一个黑黑的方块,虽然打印的时候看不到,但看着总是不舒服,有没有办法让它不要显示呢?

答:

“视图”--“显示段落标志”,把前面的勾去掉。

其实这个很有用,可以便于知道哪个是标题段落

26.问:

文章第一页下面要写作者联系方式等。

通常格式是一条短划线,下面是联系方式,基金支持等。

这样的格式怎么做出来?

就是注明页脚吗?

答:

插入――脚注和尾注

27.问:

文字双栏,而有一张图片特别大,想通栏显示,应该怎么操作?

答:

可以选择的内容,按双栏排。

选择其他内容,按单栏排。

28.问:

Word里面如何不显示回车换行符?

答:

把视图-显示段落标记的勾去掉或工具-选项-视图-段落标记

29.问:

有没有方法把WORD里的软回车一下子替换掉?

识别出来的文字全带着软回车,能把他们一次全删掉吗?

答:

查找+替换,按CTRL+H;软回车好象是^l,在特殊字符里有

30.问:

在WORD里的框框里怎么打勾?

答:

画个文本框,文本框里写一个钩,然后拖过去;或者先在WORD里插入符号“√”,然后选中“√”,到-》格式-》中文版式-》带圈字符-》选“□”

31.问:

还是不行,这样拷过去的框框字体是windings的,而原来的是宋体的,两者有很大的区别。

答:

根据模板新建专业型,里面有框,双击后打勾,copy就ok

32.问:

Word中怎么在一个英文字母上打对号?

答:

透明方式插入图片对象,内容是一个√

33.问:

WORD里怎么显示修订文档的状态?

文档修订后,改后标记很多,但是在菜单里没有“显示修订最终状态”等,怎么调出来?

答:

工具-自定义-命令-类别(工具)-命令(修订)-把“修订”等拖到工具栏上

34.问:

怎样把许多分开的word文档合并成一个文档。

我的论文是按照章节分开写的,但现在图书馆要提交电子版的学位论文,是一个文档的,我找了很多选项但好象不能合并,选择插入文件功能,可以加入内容,但文档中的页眉却插不进去,有谁有高见?

答:

acrobat6可以直接把多个文档打印成一个pdf文档。

可以提交pdf格式的论文,先一个一个word文档转换为pdf格式的,然后在pdf文档菜单的文件菜单中,选上作为pdf格式打开,追加上就可。

35.问:

Word里面要写方程式怎么办啊?

答:

插入-对象-公式编辑器equation,如果没有公式编辑器Equation,要自

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