CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用.pdf

CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用.pdf

《CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用.pdf》由会员分享，可在线阅读，更多相关《CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用.pdf（19页珍藏版）》请在冰点文库上搜索。

（19）国家知识产权局（12）发明专利申请（10）申请公布号（43）申请公布日（21）申请号202211418723.4（22）申请日2022.11.14（71）申请人南昌大学地址330031江西省南昌市红谷滩区学府大道999号（72）发明人梁尚栋李琳杨茹楠徐秀梅杜俊培高云李桂林刘双梅（74）专利代理机构南昌朗科知识产权代理事务所（普通合伙）36134专利代理师郭毅力郭显文（51）Int.Cl.A61K31/713（2006.01）A61P25/00（2006.01）（54）发明名称CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用（57）摘要CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用，实验证实CpG寡核苷酸1826可降低星状神经节卫星胶质细胞激活和炎症细胞因子的表达，抑制嘌呤2Y12受体的表达，降低脂质过氧化损伤来减轻星状神经节神经细胞的铁死亡，从而改善心脏自主神经功能。

CpG寡核苷酸1826作为实施例表明，具有抑制炎性作用的CPGODN或对交感神经产生抗损伤保护作用的CPGODN，在糖尿病心脏自主神经疾病、交感神经损伤相关疾病中具有防治药物作用。

权利要求书1页说明书8页序列表（电子公布）附图9页CN115969872A2023.04.18CN115969872A1.CpG寡聚脱氧核苷酸在制备防治糖尿病心脏自主神经疾病防治药物中的应用。

2.CpG寡聚脱氧核苷酸在制备治疗交感神经损伤相关疾病防治药物中的应用。

3.CpG寡聚脱氧核苷酸在制备用于上述疾病防治的口服、注射、含片或其它局部或全身用药剂型药物中的应用。

权利要求书1/1页2CN115969872A2CpG寡核苷酸对糖尿病心脏自主神经疾病药物中的应用技术领域0001本发明涉及糖尿病心脏自主神经疾病药物用途发明领域，尤其是涉及CpG寡核苷酸制备降低糖尿病心脏自主神经疾病药物和防治交感神经损伤相关疾病中的应用。

背景技术0002糖尿病（DiabetesMellitus，DM）是一组代谢性临床综合征，随着社会的发展和人们生活水平的提高糖尿病的患病率逐年升高，其致死率被列为大多数高收入国家疾病致死率的第五甚至第四位，成为仅次于癌症、艾滋病、心脑血管病之后第4位需要优先考虑的疾病。

糖尿病分为1型（胰岛素依赖性）和2型（非胰岛素依赖性）糖尿病。

糖尿病心脏自主神经病变（DCAN）是2型糖尿病的常见严重并发症，其特征是支配心脏和血管的自主神经纤维受损，导致心血管系统功能障碍。

特别是，心脏交感神经的区域性丧失可导致心脏交感神经元重塑，从而增加室性心律失常和心源性猝死的易感性。

颈交感神经系统参与维持心血管稳态。

心脏交感神经来自颈交感神经节，星状交感神经神经节的神经纤维可以分布到心丛，从而影响心脏的活动。

糖尿病自主神经纤维病的星状交感神经节神经元接收到的传入信号可以影响交感传出活动，从而影响心脏功能的调节。

0003嘌呤信号转导（Purinergicsignalling）主要是兴奋嘌呤受体（Purinergicreceptor）产生效应。

P受体包含P1和P2受体，腺苷及其类似物作用于P1受体，三磷酸腺苷（ATP）及其类似物作用于P2受体。

P2受体又分为配体门控非选择性离子通道型受体（P2X受体）和促代谢型G蛋白偶联型受体（P2Y受体）。

嘌呤能受体已被证明与心血管疾病有关。

P2Y12受体是P2Y亚型的一员，是一种G蛋白偶联型受体。

颈交感神经节存在P2Y12受体的表达。

卫星胶质细胞（SGC）紧密包裹颈交感神经节中的神经元胞体。

外周炎症导致颈交感神经节SGC激活。

然后，ATP诱导的P2Y12受体激活介导SGC释放白细胞介素1（IL1）和肿瘤坏死因子（TNF）参与心脏自主神经疾病的病理变化。

研究表明，星状交感神经节中P2Y12的表达上调并参与糖尿病自主神经病变的过程，下调P2Y12受体的表达可通过减弱异常交感兴奋反射有效改善心功能。

0004糖尿病患者的活性氧（ROS）和氧化损伤增加。

在细胞膜的膜磷脂中高表达的多不饱和脂肪酸很容易受到ROS的攻击，引发许多氧化还原反应，统称为脂质过氧化。

铁死亡已被描述为一种依赖铁的细胞死亡形式，由脂质过氧化物的过量积累介导。

谷胱甘肽过氧化物酶4（GPX4）是铁死亡的关键调节因子，以谷胱甘肽（GSH）为代价催化脂质过氧化物的减少，并保护细胞免受膜脂质过氧化。

GPX4失活或GSH耗竭导致脂质氢过氧化物的积累，破坏铁稳态最终导致铁死亡。

形态学上，铁死亡主要表现为线粒体改变，包括线粒体体积减少、线粒体嵴减少甚至消失、双层膜密度增加、线粒体外膜破裂等。

线粒体损伤可导致线粒体DNA释放到细胞质中。

0005CpG寡核苷酸（CpGODNs）是合成的短链DNA分子，在特定序列环境中包含未甲基化的CpG二核苷酸（CpG基序）。

说明书1/8页3CN115969872A3发明内容0006本发明的第一个目的在于提供CPGODN在制备防治糖尿病心脏自主神经疾病防治药物中的应用。

0007本发明的第二个目的在于提供CPGODN在制备防治交感神经损伤相关疾病防治药物中的应用。

0008CPGODN的作用涉及抑制2型糖尿病模型大鼠星状神经节卫星胶质细胞激活、减少炎性细胞因子表达、降低嘌呤2Y（P2Y）12受体表达、改善铁死亡病理变化，进而缓解糖尿病心脏自主神经疾病。

成果表明CPGODN可通过以上作用，防治糖尿病心脏自主神经疾病、防治交感神经损伤相关疾病。

CPGODN1826抑制2型糖尿病模型大鼠星状神经节卫星胶质细胞激活、减少炎性细胞因子表达、降低嘌呤2Y（P2Y）12受体表达、改善神经细胞铁死亡病理变化的作用。

CPGODN1826作为实施例表明具有抑制炎性作用的CPGODN或对交感神经产生抗损伤保护作用的CPGODN，具有防治糖尿病心脏自主神经疾病、防治交感神经损伤相关疾病的药物作用。

附图说明0009图1为CpGODN1826对2型糖尿病模型大鼠交感神经放电（SND）活动的影响。

糖尿病大鼠的SND明显高于对照组大鼠（p0.001，图1A，B）。

CpGODN1826处理后，与未处理糖尿病（DM）组相比，可显著改善糖尿病大鼠异常的颈部SND。

结果表明经CpG1826处理能有效降低糖尿病大鼠颈部SND的激活（p0.001，图1A，B）。

0010图2为糖尿病大鼠星状交感神经节P2Y12受体在mRNA水平的表达明显高于对照大鼠（p0.001）。

CpG1826处理后，较未经处理的DM组相比显著降低了P2Y12受体的表达水平（p0.01）。

0011图3为糖尿病大鼠星状神经节P2Y12受体在蛋白水平的表达明显高于对照大鼠（p0.01）。

CpG1826处理后，较未经处理的DM组相比显著降低了P2Y12受体的表达水平（p0.01）。

0012图4为免疫荧光双标检测2型糖尿病神经病理痛大鼠星状神经节（SG）中P2Y12受体与卫星胶质细胞标志物胶质纤维酸性蛋白（glialfibrillaryacidicprotein，GFAP）共表达结果。

免疫荧光检测显示SG中P2Y12受体与卫星胶质细胞标志物GFAP共表达，提示PY12受体可存在于SG卫星胶质细胞。

糖尿病模型（DM）大鼠SG中P2Y12受体与卫星胶质细胞标志物GFAP共表达较对照组增加，CpGODN1826处理可降低糖尿病模型大鼠SG中P2Y12受体与卫星胶质细胞标志物GFAP上调的共表达。

0013图5为实时定量逆转录聚合酶链式反应（RTPCR）检测IL1的mRNA表达。

结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中IL1的mRNA表达较对照组显著增加（p0.001）；CpGODN1826处理后的IL1的mRNA表达较未处理模型组降低（p0.01）。

0014图6为蛋白印迹（Westernblotting）检测IL1的蛋白水平表达。

结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中IL1的蛋白水平表达较对照组显著增加（p0.01）；CpGODN1826处理后的IL1的蛋白水平表达较未处理模型组降低（p0.05）。

0015图7为定量RTPCR检测TNF的mRNA表达。

结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中TNF的mRNA表达较对照组显著增加（p0.001）；CpGODN1826处理后的TNF的mRNA表达说明书2/8页4CN115969872A4较未处理模型组降低（p0.001）。

0016图8为Westernblotting检测TNF的蛋白水平表达。

结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中TNF的蛋白水平表达较对照组显著增加（p0.01）；CpGODN1826处理后的TNF的蛋白水平表达较未处理模型组降低（p0.05）。

0017图9为Westernblotting检测NFBp65的蛋白水平表达。

结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中NFBp65的蛋白水平表达较对照组显著增加（p0.01）；CpGODN1826处理后的NFBp65的蛋白水平表达较未处理模型组降低（p0.05）。

0018图10为2型糖尿病大鼠模型SG中谷胱甘肽过氧化物酶4（glutathioneperoxidase4，GPX4）的蛋白表达变化。

蛋白印迹结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中GPX4表达较对照组显著降低（p0.01）；CpGODN1826处理后GPX4的表达较未处理模型组上调（p0.01）。

0019图11为2型糖尿病大鼠模型SG中活性氧（ROS）含量变化。

化学荧光法检测结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中ROS含量较对照组显著增加（p0.001）；CpGODN1826处理后ROS的含量较未处理模型组降低（p0.001）。

0020图12为2型糖尿病大鼠模型SG中Fe2+含量变化。

比色法检测结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中Fe2+含量较对照组显著增加（p0.01）；CpGODN1826处理后Fe2+的含量较未处理模型组降低（p0.01）。

0021图13为2型糖尿病大鼠模型SG中、丙二醛（MDA）含量变化。

化学荧光法检测结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中MDA含量较对照组显著增加（p0.001）；CpGODN1826处理后MDA的含量较未处理模型组降低（p0.001）。

0022图14为2型糖尿病大鼠模型SG中还原性谷胱甘肽（GSH）含量变化。

微板法检测结果显示糖尿病模型组（DM）大鼠SG中GSH含量较对照组显著降低（p0.01）；CpGODN1826处理后GSH的含量较未处理模型组上调（p7.8mM或餐后血糖水平11.1mM的大鼠为成功建立了II型糖尿病模型。

0033成功建模后，将大鼠分为四组：

对照组、2型糖尿病（T2DM）模型组、2型糖尿病（T2DM）模型加CpGODN1826处理组、2型糖尿病（T2DM）模型大加CpGODN对照处理组。

2型糖尿病（T2DM）模型大鼠腹腔注射CpGODN1826或CpGODN对照（200g/kg体重）。

将CpGODN1826和CpGODN对照溶解在无菌水中。

在整个实验过程中，对照组大鼠喂食标准实验室食物。

糖尿病组大鼠继续给予高糖高脂饲料喂养。

在第7周末（每日治疗后1周），所有动物通过腹腔注射50mg/kg戊巴比妥钠进行麻醉，并在禁食810小时后实施安乐死。

然后，采集星状神经节和全血样本进行分析。

00342.血压、心率变异性和交感神经放电的测量0035使用无创尾袖法测量血压和心率（SoftronBP98A，SoftronCo.，Tokyo，Japan）。

将传感器置于大鼠尾部，通过袖带充气和放气获得血压。

利用基于心电图（ECG）记录数据的频域方法分析心率变异性（HRV）。

从5分钟的短期记录中计算出整个频谱频率范围（总功率频率，TP，00.5Hz）和极低频（VLF，0.0030.04Hz）、低频（LF，0.040.15Hz）以及高频（HF，0.150.40Hz）中RR间隔（两个R波间距离）变化的功率。

使用RM6240生物信号分析系统（中国成都仪器厂）记录并分析SG的节后颈交感神经放电（SND）。

简而言之，在用戊巴比妥钠（50mg/kg，i.p.）麻醉大鼠后，分离左颈交感神经，并轻轻地将其置于双极金丝电极上。

用浸有石蜡油的无菌棉将神经电极接头与周围组织电隔离。

使用RM6240B多通道生理信号采集与处理系统（中国成都仪器厂）记录并整合输出。

将参比电极连接到皮肤皱褶上。

00363.定量实时聚合酶链反应（实时PCR）0037使用EastepTM总RNA提取试剂盒（PromegaBiotechCo.，Ltd.，中国北京）从SGs中提取总RNA。

使用逆转录系统试剂盒（PromegaBiotechCo.，Ltd.，中国北京）合成cDNA模板。

所用引物由上海三工生物有限公司设计合成，肌动蛋白正向5tgtcacaactgggacgata3和反向5ggggtgttgaagtcaaa3；P2Y12的正向5CTTCGTCCCTTCCATTTG3和反向5AGGTGCTCTCTTCACGTA3；IL1的正向5CCTATGTTGCCCGTGGAG3和反向5CACACTACTAGCGGTCGTCA3；TNF的正向5说明书4/8页6CN115969872A6CACGTCGTAGCAAACCACCAA3和反向5GTTGGTTGTCTTTGAGATCCAT3。

使用GreenMasterMix和ABIStepOnePlus进行定量RTPCRTM实时PCR系统（AppliedBiosystems，FosterCity，CA，USA）。

基因表达水平采用2CT法定量。

actin被用作内部参照物。

00384.蛋白质印迹0039收获的SG在带有RIPA裂解缓冲液的均质器中进行均质（中国北京Applygen）。

将匀浆置于冰浴中20分钟，然后在4下以12000rpm离心10分钟。

使用BCA蛋白质定量试剂盒（中国武汉博士德）测定上清液中的总蛋白质浓度。

含有等量蛋白质（20g）的样品用10SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离，然后电泳转移到聚偏氟乙烯（PVDF）膜上。

在室温下，用含0.05吐温20（TBST）的25mMTris缓冲盐水（pH7.2）中的5脱脂干奶封闭膜2小时，然后用一级抗体培养：

兔单克隆P2Y12抗体（1:

1000，Abcam，Cambridge，MA，USA），兔抗白介素1（IL1），肿瘤坏死因子（TNF）（1:

800，Abcam，Cambridge，MA，USA）、兔抗谷胱甘肽过氧化物酶4（GPX4）（1:

500,Affinity,Cincinnati,OH,USA）、肌动蛋白（1:

1000，ZSGBBIO，Beijing，China）、兔抗核转录因子B（NFB）p65（1:

500，Abcam，Cambriding，MAandUSA）在4下过夜。

随后，在室温下将膜与辣根过氧化物酶结合的二级抗体（山羊抗鼠IgG或山羊抗兔IgG，1:

2000，ZSGBBIO，中国北京）孵育1小时。

使用ImageProPlus软件分析所得化学发光带的强度。

00405、双标记免疫荧光0041对于双标记免疫荧光染色，用冷冻切片机将冷冻SG切片至8m厚。

用PBS清洗切片，并在室温下在PBS中含有3牛血清白蛋白和0.3TritonX100的封闭溶液中培养2小时。

组织与一级抗体兔抗P2Y12（1:

100，以色列耶路撒冷Alomone实验室）、小鼠抗胶质纤维酸性蛋白（glialfibrillaryacidicprotein，GFAP）（1:

100；Millipore）。

随后，在室温下用二级抗体（山羊抗兔TRITC和山羊抗小鼠FITC，ZSGBBio，中国北京。

AlexaFluorR488结合山羊抗兔和Cy5结合山羊抗鼠，Abcam，Cambridge，MA，USA）在PBS中稀释至1:

200浓度。

核染色采用4，6二氨基2苯基吲哚（DAPI）。

所有图像都是在荧光显微镜下拍摄的（日本东京奥林巴斯），并由单盲观察。

00426、铁含量、脂质过氧化和抗氧化活性水平的测定0043丙二醛（MDA）被认为是脂质过氧化的标志物。

抗脂质过氧化的主要内源性抗氧化剂是GPX4，它被认为是铁积累诱导的活性氧链反应的关键调节因子。

GPX4的功能活性取决于合成GSH。

铁、丙二醛、谷胱甘肽水平由化验试剂盒（中国南京建成生物工程研究所）根据制造商的说明使用化学比色法测定。

GPX4水平通过ELISA试剂盒（中国南京卡米洛生物工程有限公司）采用双抗体夹心技术测定。

在冰浴中制备组织匀浆，然后以2500rpm离心10min。

取上清液进行以下测试。

采用化学荧光法通过检测试剂盒（中国南京建成生物工程研究所）测定活性氧水平。

取新鲜组织，用酶消化法制备单细胞悬液进行检测。

操作步骤严格按照说明书执行。

使用多功能微孔板阅读器检测各组在相应波长条件下的吸光度值。

根据手册中的相应公式计算结果。

00447、透射电子显微镜。

0045新鲜DRG组织被切成1mm3的碎片，并迅速储存在2.5戊二醛中进行固定。

用0.1MPBS冲洗3次/15分钟后，样品在4下脱水，然后在室温下100丙酮脱水3次。

在包埋、固化、说明书5/8页7CN115969872A7切片和染色后，在透射电镜下观察所选图像。

00468、统计分析0047使用SPSS21.0软件（SPSS，Chicago,IL,USA）对数据进行分析，并使用单因素方差分析（ANOVA）和Bonferronisposthoc检验确定统计显著性，以进行多重比较。

p0.05具有统计学意义。

0048二、结果0049

（一）CpGODN1826对II型糖尿病大鼠血压、心率和颈交感神经活动的影响0050表1糖尿病组的血压和心率高于对照组，但用CpGODN1826后显著下降。

交感神经放电（SND）活动如图1所示。

糖尿病大鼠的SND明显高于对照组大鼠（p0.001，图1A，B），这表明2型糖尿病患者颈交感神经的兴奋性增加。

然而，CpGODN1826处理后可显著改善糖尿病大鼠异常的颈部SND（p0.05，图1B）。

这些结果表明，CpGODN1826处理能有效降低糖尿病大鼠颈部SND的激活水平。

0051表1CpGODN1826对2型糖尿病（T2DM）大鼠心率（HR）和血压（BP）的影响00520053*p0.05、*p0.01和*p0.001与对照组相比；#p0.001与糖尿病组相比。

0054

（二）CpGODN1826对II型糖尿病大鼠心率变异性的影响0055心率变异性（HRV）报告如表2所示。

与对照组相比，II型糖尿病组的TP、VLF、LF和HF等频域变量显著降低，表明交感神经和副交感神经张力均降低。

此外，随着LF/HF比率显著增加，糖尿病大鼠的交感神经和副交感神经张力之间存在不平衡。

然而，与糖尿病大鼠相比，CpGODN1826处理大鼠的TP、VLF、LF和HF显著增加（p0.01）。

此外，CpG治疗显著提高了DM组的LF/HF比率（p0.001）。

DM+CpGODN对照组与DM组之间无显著差异。

这些数据表明，CpGODN1826改善了糖尿病大鼠的自主神经失衡。

0056表2.CpGODN1826对2型糖尿病大鼠心率变异性的影响说明书6/8页8CN115969872A800570058*p0.05和*p0.01与对照组相比；#p0.05和#p0.01与糖尿病组相比。

0059（三）CpGODN1826对星状神经节中P2Y12表达的影响0060糖尿病大鼠星状神经节P2Y12受体在mRNA水平的表达明显高于对照大鼠（p0.001；图2）。

与未经处理的DM组相比，CpGODN1826处理显著降低了P2Y12受体的mRNA表达水平（p0.01；图2）。

0061糖尿病大鼠星状神经节P2Y12受体在蛋白水平的表达明显高于对照大鼠（p0.01；图3）。

与未经处理的DM组相比，CpGODN1826处理显著降低了P2Y12受体的蛋白表达水平（p0.01；图3）。

0062如图4所示，在双重免疫荧光分析中，糖尿病大鼠星状神经节（SG）中P2Y12和GFAP的共同表达水平较高。

CpGODN1826处理显著降低了共表达水平。

GFAP是卫星胶质细胞（SGCs）的标志物。

GFAP的上调揭示了SGC的激活。

这些数据表明，P2Y12受体和GFAP共同定位于SG的SGC中。

P2Y12受体可能参与了SGC的激活。

CpGODN1826可能通过降低P2Y12受体的表达来抑制伤害性信号的传递和SGC的激活。

0063（四）CpGODN1826对星状神经节中IL1和TNF表达的影响0064活化的卫星胶质细胞导致促炎因子的增加。

定量RTPCR检测IL1的mRNA表达。

与对照组大鼠相比，糖尿病大鼠IL1在mRNA的表达显著增加（p0.001；图5）。

然而，CpGODN1826处理显著降低了IL1的mRNA高表达（p0.01；图5）。

DM组和DM+CpGODN对照组之间没有显著差异。

Westernblotting检测IL1的蛋白表达。

与对照组大鼠相比，糖尿病大鼠IL1蛋白水平上的表达显著增加（p0.011；图6）。

然而，CpGODN1826处理显著降低了IL1蛋白的上调表达（p0.05；图6）。

DM组和DM+CpGODN对照组之间没有显著差异。

CpGODN1826处理通过抑制促炎细胞因子IL1发挥保护作用。

0065定量RTPCR检测TNF的mRNA表达。

与对照组大鼠相比，糖尿病大鼠IL1在mRNA的表达显著增加（p0.001；图7）。

然而，CpGODN1826处理显著降低了TNF的mRNA高表达（p0.001；图7）。

DM组和DM+CpGODN对照组之间没有显著差异。

Westernblotting检测TNF的蛋白表达。

与对照组大鼠相比，糖尿病大鼠TNF在蛋白水平上的表达显著增加（p0.01；图8）。

然而，CpGODN1826处理显著降低了TNF蛋白的上调表达（p0.05；图8）。

DM组和DM+CpGODN对照组之间没有显著差异。

CpGODN1826处理通过抑制促炎细胞因子TNF发挥保护作用。

说明书7/8页9CN115969872A90066（五）CpGODN1826对II型糖尿病大鼠NFBp65表达的影响0067核因子B信号通路将代谢与炎症结合起来。

实验结果表明，糖尿病大鼠的NFBp65蛋白水平显著高于对照大鼠（p0.01；图9）。

然而，用CpGODN1826后，糖尿病大鼠的NFBp65表达显著降低（p0.05；图9）。

DM组与DM+CpGODN对照组之间无显著差异。

0068（六）CpGODN1826对II型糖尿病大鼠谷胱甘肽过氧化酶4（GPX4）表达的影响0069谷胱甘肽过氧化酶4（GPX4）的主要作用是将细胞内过多的ROS还原成为无毒的化合物，抑制GPX4可导致ROS的积累和脂质过氧化物的产生导致组织细胞铁死亡。

实验结果表明，糖尿病大鼠的GPX4蛋白水平显著低于对照大鼠（p0.01；图10）。

然而，用CpGODNODN1826后，糖尿病大鼠的GPX4表达显著增加（p0.01；图10）。

DM组与DM+CpGODN对照组之间无显著差异。

0070（七）CpGODN1826对II型糖尿病大鼠铁含量、脂质氧化和抗氧化活性的影响0071与对照组相比，DM组的活性氧水平显著升高（p0.001；图11）。

给予CpGODN1826后，糖尿病大鼠体内活性氧水平的降低（p0.001；图11）。

0072与对照组相比，DM组的铁水平显著升高（p0.01；图12）。

给予CpGODN1826后，糖尿病大鼠体内铁水平的降低（p0.01；图12）。

0073与对照组相比，DM组的丙二醛水平显著升高（p0.001；图13）。

给予CpGODN1826后，糖尿病大鼠体内丙二醛水平的降低（p0.001；图13）。

0074此外，与对照组相比，DM组谷胱甘肽（GSH）水