植物遗传转化体系的建立PPT文档格式.ppt

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其中，叶圆片与农杆菌共培养是最简单的转化方法；

愈伤组织的转化效率高、生长速度快，是快速检测外源基因表达的最好受体；

原生质体则是单克隆转化的最佳材料。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.1原生质体,原生质体是无细胞壁的细胞。

与悬浮细胞一样，被转化的受体是单个独立的细胞，为选择遗传均一性的转基因植株提供了可能性。

水稻广亲和品种02428的原生质体用聚乙二醇（PEG）法导入具有潮霉素B（HPT）抗性基因、卡那霉素抗性基因（KanR）和昆虫荧光素酶基因（Luc）的质粒pTHL27DNA，在含有25g/ml潮霉素B和100g/ml卡那霉素的培养基KPR和N6上连续培养处理4周，可以很好地除去非转化的敏感的原生细胞；

然后在无抗菌素选择压力的培养基中，转化细胞可再生植株（杨歧生等，1996）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.2悬浮细胞,以悬浮细胞作受体的转化方法包括农杆菌介导法、基因枪法、PEG介导法、电激法和显微注射法等。

小麦幼胚悬浮细胞用JQ-700基因枪法转化，得到了GUS基因瞬间表达的各项最适参数。

他们还建立了冀谷11号谷子幼穗的悬浮培养细胞系及植株再生体系。

将胚性悬浮细胞系接种到MS培养基，20d继代1次，直至出现绿芽点；

然后转入无激素的MS0或1/2MS0培养基分化植株。

以基因枪轰击转化悬浮细胞后，放置48h，检测GUS短暂表达频率TTF为20-40%；

在添加200mg/L卡那霉素的MS培养基上，有5-10的愈伤组织具有抗性，且能稳定传代（董云洲等，1998）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.3胚性愈伤组织,愈伤组织的转化方法也适用于胚性愈伤组织。

胚性愈伤组织的转化已在玉米、甘蔗、芹菜等植物上获得成功。

芹菜胚性愈伤组织用根癌农杆菌C58C1（pBZ6111）感染后，在MS+2,4-D1mg/L十KT0.1mg/L培养基上继代培养。

在筛选到的氯霉素抗性愈伤组织中检测到胭脂碱合成酶活性，表明外源基因已整合到芹菜细胞基因组中并得到表达。

抗性愈伤组织可在无激素的基本培养基上增殖，但分化出的再生植株畸形（郑世学等，1996）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.4胚状体,胚状体是由愈伤组织经过改造后分化而来的，其转化方法也同愈伤组织。

用根癌农杆菌LBA4404介导番木瓜环斑病毒外壳蛋白（PRSV-CP）与核酸酶（Nuclease）嵌合基因，通过振动共培养法转化番木瓜子叶型胚状体，在选择培养基上筛选诱导再生转基因植株。

NPTII分析和Southernblot分子杂交结果表明，PRSV-CP-Nuclease嵌合基因已经整合到番木瓜核基因组中（周鹏等，1995）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.5叶圆片,叶圆片（叶盘）是农杆菌转化的主要受体。

采取新鲜植株上无菌的幼嫩叶片，用打孔器或解剖刀切取直径3-5mm的叶圆片，在液体培养瓶中与农杆菌共培养20-30min，其间轻轻摇动使农杆菌从切口侵入叶片。

然后将共培养后的叶圆片在滤纸上吸干，转移到非选择性培养基上培养3d，再转入含卡那霉素或羧苄青霉素等抗生素的选择培养基上培养，诱导植株再生，这样可获得遗传均一性较高的转基因植株。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.5叶圆片,叶盘法常见于双子叶植物的遗传转化，马铃薯“东农303的叶盘用含有质粒pPZH1和辅助质粒pGV2260双元载体的根癌农杆菌菌株C58C1进行转化，在选择培养基上培养30d后，叶盘切口形成抗性愈伤组织，转化率为4-38；

经NPTII酶活性分析和DNA分子杂交证实获得了转基因再生植株（王光清等，1994）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.1植物基因转化的受体8.1.6其他受体,除了叶圆片、愈伤组织、悬浮细胞或原生质体等几种常见的受体之外，还有多种不同类型的组织或器官可作为外源基因的受体，如子叶、胚轴、茎段、根、体细胞胚、花粉等等。

如将切成小段形成一定伤口的金鱼草下胚轴与根癌农杆菌LBA4404（p35SGUSINT）共培养，通过不定芽途径获得抗G418的再生植株，经DNA/DNA斑点杂交及GUS活性原位组织检测，初步证实外源基因GUS已整合到金鱼草基因组并得到表达（余迪求等，1996）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）,根癌农杆菌（Agrobacteriumtumefacience）介导法是植物基因转化中使用最普遍的一种方法。

其Ti质粒（Tumor-inducingplasmid）具有将DNA整合到植物染色体上，并使之与植物内源基因同步表达的能力。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）8.2.1.2Ti质粒的构建,利用农杆菌进行遗传转化前，必须对Ti质粒进行改造。

改造的目的有以下几点：

（1）去除T-DNA区的激素基因。

因为激素基因的产物会导致转化细胞激素水平的不平衡而引起细胞的无限分裂，阻碍正常植株的再生。

（2）保留T-DNA区的左右边界，尤其是左边界，以保证T-DNA的正常转化。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）8.2.1.2Ti质粒的构建,（3）在去除的T-DNA区，增加至少一个可以在植物体内表达的选择基因，以使转化细胞易于被检测出来。

（4）在T-DNA区外加一个可以克隆外源目的基因的多聚接口。

（5）在T-DNA区外加一个抗菌素基因标记质粒，该基因只能在细菌中表达，而不能在植物中表达。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）8.2.1.3外源基因的转化,根癌农杆菌与烟草细胞原生质体共培养，再生了具有明显肿瘤特征的幼苗（Marton等，1979）。

Horsch（1985）等首创了根癌农杆菌与植物叶圆盘共同温育而实现转化的“叶圆盘共培养法”（Leefdiskcocultivation），实现了烟草的转化。

李宝健等（1990）用此法已将外源基因转移到花椰菜、甘蓝、苜蓿、花叶芋、胡萝卜、番茄、烟草等细胞中并得到表达。

另外，我国已在龙葵、大豆、甘蓝、菊花、诸葛菜等植物上通过农杆菌转化获得了转化植株。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,除Ti质粒外，发根农杆菌（Agrobacteriumrhizogenes）的Ri质粒（Root-inducingplasmid）也已成为植物基因工程载体家庭中的新成员。

发根农杆菌感染植物伤口，向目的植物转入Ri质粒中的T-DNA，经一段时间后被感染的植物会在不定的部位生出发状根。

发状根没有向地性，可在无激素的培养基上培养生长，生长迅速并产生许多分枝，其增长速度一个月可增殖数倍到数百倍。

发根农杆菌对植物的这种作用主要依赖于其菌体中的Ri质粒。

例如通过发状根培养来生产只有在高度的根趋向分化细胞中才能产生的有用次生代谢物质等。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）8.2.1.3外源基因的转化,一般而言，农杆菌只感染双子叶植物；

但利用Ti质粒作载体已将外源基因导人了水稻、玉米、吊兰、石刁柏、香蕉等某些单子叶植物中。

农杆菌介导的遗传转化技术简单，易于掌握，对植物受体要求不严，绝大多数双子叶植物和少数单子叶植物的组织或器官均可，且转化频率较高，转化周期较短，是目前应用最广的一种植物遗传转化方法。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）8.2.1.3外源基因的转化,对丝石竹幼茎中段、茎段切口、叶片和愈伤组织，用注射器针刺接种109个/mL发根农杆菌菌液。

在含500g/L羧苄青霉素的MS基本培养基上25暗培养诱发毛状根。

将从接种位点长出的毛状根剪成1-1.5cm小段，毛状根小段脱分化形成愈伤组织，在不含激素、蔗糖浓度2的培养基上可获得再生植株。

冠瘿碱检测结果表明毛状根、愈伤组织和再生植株都含有由发根农杆菌Ri质粒T-DNA编码合成的农杆碱和甘露碱。

由此证明Ri质粒T-DNA被插入寄主细胞的核基因组中，当植株再生时被稳定地传递给子代（王敬文等，1992）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8PLANTGENETICTRANSFORMATION,例如：

农杆菌叶盘法转化（主要操作）一、无菌受体材料的准备二、配制培养基预培养培养基、共培养培养基、筛选培养基、生根培养基三、受体材料预培养四、农杆菌培养五、侵染六、共培养七、选择培养八、继代选择培养九、生根培养,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.1农杆菌介导法（Agrobacterium-mediatedtransformation）,草类遗传转化过程,8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,A.草地早熟禾的愈伤组织的间接诱导；

B.胚性愈伤组织的诱导；

C.愈伤组织的分化；

D.组培苗的再生；

E.抗性愈伤组织的筛选；

F.转基因苗的壮苗和生根培养；

G.转基因植株的再生,8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.2基因枪转化法（Microprojectilebombardment）,基因枪法又称微弹射击法，是由Klein（1987）等建立的。

他们利用超声波使外源DNA液均匀地包裹钨弹（0.2-2.0m），利用手枪的动力原理发射出微弹与DNA的复合体，击中靶细胞，穿透细胞壁和原生质体膜，为进一步整合到基因组提供机会，实现外源基因在完整组织中的表达。

根据基因枪的动力原理，目前至少有6种不同类型的基因枪：

火药基因枪、高压放电基因枪、压缩气体基因枪、粒子流基因枪、微靶点射基因枪和气枪基因枪。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,基因枪转化的操作包括以下6个步骤：

（1）靶细胞或组织的预处理，主要是调节渗透压；

（2）微粒子弹的制备，将外源DNA液包裹到金属颗粒上；

金粉和钨粉是基因枪转化中最普遍采用的金属颗粒。

钨粉比较便宜，但与DNA结合时间过长会催化性降解DNA并对某些类型细胞有毒害作用。

金粉大小比较一致，不会引起DNA降解，对细胞也无毒害。

（3）装备基因枪；

（4）轰击；

（5）过渡培养，在不加选择压的培养基上培养一两周，以利于靶细胞的恢复和外源基因的充分表达；

（6）筛选培养或直接分化再生植株。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,基因枪法已成为继农杆菌介导法之后的第二大基因转化方法，尤其在禾本科作物上应用更为广泛。

例如：

美国康乃尔大学的Sanford（1990）利用“基因枪”把目的基因射入桃的胚胎愈伤组织、胚轴、子叶、茎尖和叶片，进行直接转化，并检测到GUS基因在这些组织中的瞬间表达。

基因枪曾成功地转化了小麦、玉米、水稻、兰花等单子叶植物和云杉等裸子植物，也曾将外源DNA导入线粒体和叶绿体中。

目前存在的主要问题一是转化效率普遍较低；

二是基因枪的造价高，转化成本也较高。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.3聚乙二醇-介导法（PEG-mediatedtransformation）,聚乙二醇（PEG）介导法与PEG诱导原生质体融合的机理相似，不同的是后者发生在原生质体之间，而前者发生在原生质体与DNA之间。

在高浓度的二价钙离子（Ca2+）和高pH值的条件下，略带负电的高分子PEG可能促进DNA向原生质体膜沉淀，或参与原生质体的内吞作用下，使外源DNA分子进入原生质体和细胞核，并整合到染色体上。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.3聚乙二醇-介导法（PEG-mediatedtransformation）,Krens（1982）等用这种方法首先实现了烟草的遗传转化。

用PEG介导法转化诸葛菜子叶及下胚轴原生质体，系统研究了转化过程及其影响因素。

以诸葛菜下胚轴原生质体为受体，PEG介导的主要步骤如下（周冀明等，1996）：

（1）将下胚轴切成0.5mm小段，在CPW-13mol/L中质壁分离1h，于25-28往复式摇床（45r/min）上酶解12h。

（2）200目尼龙网过滤，500r/min离心5min，收集原生质体。

同样条件下CPW-9mol/L洗两次，沉淀的原生质体重新悬浮于2mLCPW-9mol/L中。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.3聚乙二醇-介导法（PEG-mediatedtransformation）,（3）在10mL离心管中加入8mLCPW-21S溶液，再缓缓加入上述2mL原生质体悬浮液，离心5min（600r/min）。

（4）小心吸出漂浮于溶液界面间的原生质体，重新用CPW-9mol/L离心洗涤一次，可得纯化原生质体。

（5）将纯化后的原生质体以（2-5）106/mL的密度悬浮于1mLMaCa-1中10min，加人25L质粒DNA静置10min，再加入PEG（相对分子质量6000）至终浓度13.3混匀，室温静置30min，轻轻混匀后静置10min。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.3聚乙二醇-介导法（PEG-mediatedtransformation）,（6）用MaCa-2稀释至10mL，离心收集，并用MaCa-2和原生质体培养基各洗一次，最后调整密度至5104/mL，28暗培养。

（7）培养一定时间后分别向培养基中加入一定量的潮霉素进行筛选。

研究结果表明，最适质粒量为25-30g，PEG浓度为15，pH值8.0。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.3聚乙二醇-介导法（PEG-mediatedtransformation）,PEG法是进行基因直接转移的普遍方法，成本低廉，效果稳定。

PEG法转化原生质体的频率虽然较低，但结合PEG融合细胞、高pH值、热激和原生质体同步处理等其他细胞工程技术的综合处理，可提高转化效率。

其中的影响因素较多，如植物品种及其原生质体再生系统的效率，外源基因的浓度与构象，携带DNA，PEG溶液，加人PEG和DNA的顺序（先加DNA好），介质中二价阳离子（Ca2+）的种类和浓度，转化细胞的筛选方法等。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2植物基因转化的方法8.2.4其他转化方法8.2.4.1电激法（Electroporation）,电激法是采用高压直流电脉冲的“电激穿孔”作用打开原生质膜，促进细胞膜吸附的DNA进入植物原生质体。

电激法转化能有效地将外源DNA导入植物细胞，而且不影响原生质体再生植株的过程。

Fromnn（1985）首次通过电激穿孔法，将外源CAT基因导人玉米、胡萝卜、烟草的原生质体并表达。

Shimanoto（1989）和Rhodes（1988）利用电激法实现了水稻和玉米原生质体的转化。

Choudhary（1998）用电穿孔法转化矮牵牛原生质体的结果表明，当电压为1000V/cm时，GUS活性最高。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.2显微注射法（Microinjection）,这是利用特制的显微注射仪直接将外源遗传物质注入植物细胞的转化方法。

该方法虽然每次只能注射少量的受体细胞，但其转化的成功率高，而且可以省去选择性标记的麻烦。

最好选用原生质体作为受体，并且需要预先固定才能注射。

科学家最近提出了一种固定、注射和培养植物原生质体的完整方法。

在盖玻片上放一小尼龙环，环内填满含有琼脂糖凝固的培养基；

在中央滴1L含有原生质体的琼脂糖微滴，使每个微滴中只含5-15个原生质体。

然后对原生质体做显微注射操作，每小时可注射约50个原生质体。

经注射过的原生质体微滴可以直接培养，并再生植株。

显微注射法应用于花粉或其他胚胎类组织可能有更好的应用价值，这样可克服用原生质体带来的培养上的困难。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.2显微注射法（Microinjection）,用显微注射法将外源基因导入含12个细胞的油菜小孢子原胚，80的注射胚再生植株，转基因植株的频率高达51，尽管难于注射每个细胞，但通过形成次生胚，嵌合现象得到解决（Neuhaus等，1987）。

我国学者建立了用微量注射法将外源DNA导入胚组织的技术。

外源海岛棉DNA导入陆地棉和中棉，获得了变异的后代；

还将抗病棉基因导人高产、优质的感病品种中，获得了抗病、优质、高产的棉花新品种（黄骏麟等，1985）。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.3花粉管通道法（Pollen-tubepathway）,周光宇等（1983）首创的花粉管通道法，是将外源DNA的片段在自花授粉后的特定时期注入柱头或花柱，使外源DNA沿花粉管通道进入胚囊，转化受精卵或其前后细胞。

这种方法开创了整株活体转化的先例，在改良农作物的遗传特性上有很大的潜力。

已经实现了外源DNA对水稻、小麦、棉花、油菜等作物的转化。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.3花粉管通道法（Pollen-tubepathway）,DeLaPena等（1987）将外源DNA直接注入黑麦的幼花序中，并获得了转基因植株。

谢永祥等（1995）采用花粉管法，以含有GUS和NPTII基因的pRT99gus质粒转化蝴蝶兰，转基因幼胚及幼苗GUS活性的组织化学分析表明，已获得部分的转化证据。

PCR和Southern杂交分析表明，授粉后30d左右注射DNA，可得到较高的转化效率。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.3花粉管通道法（Pollen-tubepathway）,花粉管通道法的特点是直接操作于整体植株，参与了被转化植物的生殖过程，避开了从细胞到组织的培养，并能与常规育种技术相结合且操作简单，经济适用。

由于目前对高等植物基因表达调整的研究较少，没有完全达到定向改变某一性状的水平，加之对基因与性状的联系所知有限，因此，这种转化方法不失为一种改变作物遗传性、培育优良品种的可行方法。

但是不足之处是，花粉萌发时柱头释放的核酸酶会破坏外源DNA，同时由于花粉管欲进入合子还需要通过重重屏障，因而花粉管通道转化法的转化频率较低。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.4脂质体转化（Liposomestransformation）,脂质体是磷脂在水中形成的一种由脂双分子层围成的囊状结构，一直被作为生物膜模型从结构和功能上进行研究。

由于脂质体内能够包装许多大分子如病毒、核酸和染色体，并能转入植物细胞，所以，开展了以脂质体作为植物细胞遗传工程载体的广泛研究。

8PLANTGENETICTRANSFORMATION,8植物遗传转化体系的建立,8.2.4其他转化方法8.2.4.4脂质体转化（Liposomestransformation）,脂质体进入原生质体可能有如下的机理：

（1）内吞作用：

脂质体靠近原生质体，原生质体内陷，逐渐将脂质体吞入原生质体。

（2）融合作用：

脂质体膜与原生质体膜互相交换脂类，在此过程中使内含物或脂质体进入细胞内。

此时一般需要加人PEG或二价阳离子。

（3）交换作用：

脂质体膜与原生质体膜互相交换脂类，在此过程中使内含