生物工程发酵工艺实验指导书.docx
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生物工程发酵工艺实验指导书
生物工程发酵工艺实验指导书
内蒙古科技大学生命科学与技术学院
生物工程系
实验一菌种的传代培养
一、实验目的
1.掌握菌种传代培养的原理
2.掌握菌种传代培养的操作过程
二、实验原理
细胞在培养器中长成致密单层后，已基本上饱和，为使细胞能继续生长并且活化细胞的代谢性能，同时也将细胞数量扩大，就必须进行传代（再培养）。
活化后的菌种经过扩大培养就会大量繁殖，把菌种通过逐级扩大培养，使其大量繁殖并保留生长更加良好的菌种。
传代培养也是一种将细胞种保存下去的方法，同时也是利用培养细胞进行各种实验的必经过程。
三、实验器材
1.菌种：
金色链霉菌
2.培养基（麸皮培养基）：
麸皮36.0g；（NH4）2HPO43.0g；KH2PO40.2g；MgSO40.1g；琼脂15.0g；蒸馏水1.0L；pH7.0
3.其它：
电子天平；250ml三角瓶；电炉；灭菌锅；培养皿；试管；无菌操作台；酒精灯；接种环；涂布棒；报纸；细绳；棉塞；牛皮纸；玻璃棒。
四、实验步骤
（一）使用培养皿培养菌种
1.按上述培养基配方配制250ml培养基，装入一只三角瓶中，加热使药品溶解，用棉塞塞住瓶口，并用牛皮纸扎紧，以备灭菌。
2.把培养皿用报纸包好，细绳系牢，以备灭菌。
3.把物品放入灭菌锅中在121℃下灭菌15～20min，灭菌后放入已杀菌的无菌操作台中。
4.在无菌条件下，在每只培养皿中分别倒入培养基20ml左右，放平，冷却后备用。
5.待培养基冷却凝固后，在无菌条件下，选择一个生长良好的菌种，用接种环在平板培养基上接种，并用涂布棒将菌种均匀涂遍整个培养皿。
6.将接种好的平板做好标号后，将其放入29℃的培养箱中培养，倒置培养。
（二）使用试管培养菌种
1．按上述培养基配方配制250ml培养基，装入一只三角瓶中，加热使药品溶解，然后将其倒入试管用棉塞塞住瓶口，并用牛皮纸扎紧，以备灭菌。
把物品放入灭菌锅中在121℃下灭菌15～20min，灭菌后放入已杀菌的无菌操作台中。
将灭了菌的试管取出并斜放（保证足够的斜平面），待其冷却凝固。
接下来的步骤同培养皿的培养方法。
注意事项：
1．4和5步均为无菌实验。
2．传代培养周期为4～5d。
实验二发酵种子培养
一、实验目的
掌握发酵种子培养的原理和方法。
二、实验原理
种子扩大培养简称种子扩培是发酵工程的一个组成部分，其实指将保存在砂土管、冷冻干燥管中处休眠状态的生产菌种接入试管斜面活化后，再经过扁瓶或摇瓶及种子罐逐级扩大培养,最终获得一定数量和质量的纯种过程。
其目的首先是出于接种量的需要与菌种的驯化，同时对于缩短发酵时间、保证生产水平也有帮助。
所以种子扩大培养的任务是为了得到纯而壮的培养物，即获得活力旺盛的、接种数量足够的培养物。
对于不同产品的发酵过程来说，必须根据菌种生长繁殖速度快慢决定种子扩大培养的级数。
抗生素生产中，放线菌的细胞生长繁殖较慢，常采用二级或三级种子扩大培养；一般50t发酵罐多采用二级或三级发酵，有的也采用四级发酵如链霉素生产。
种子扩培所得的纯种培养物称为种子。
对于种子而言，应当具备以下要求：
总量及浓度能满足要求；生理状况稳定，个体与群体区隔明显；活力强，移种发酵后，能够迅速生长；无杂菌污染。
种龄是指种子罐中培养的菌体开始移入下一级种子罐或发酵罐时的培养时间。
种龄的确定受到诸多因素的影响，如果种龄过短则菌体太少，如果种龄过长，则菌体易老化。
种子扩培的一般过程是：
斜面菌种→一级种子培养（摇瓶）→二级种子培养（种子罐）→发酵
对于种子制备过程，其大致可区分为实验室阶段和生产车间阶段，前期不用种子罐，所用的设备为培养箱、摇床等实验室常见设备，在工厂这些培养过程一般都在菌种室完成，因此将这一培养过程称为实验室阶段的种子培养。
而后期种子培养在种子罐里面进行，一般在工程上归为发酵车间管理，因此形象地称这些培养过程为生产车间阶段。
并非所有的种子扩大培养都采用从摇瓶到种子罐的二级发酵模式，其实际发酵级数受到发酵规模、菌体生长特性、接种量的影响。
种子培养基与发酵培养基的区别：
种子培养基一般是基础培养基，含有微生物生长繁殖需要的基本营养物质，微生物生长过程中不需在添加营养素、改变pH值的外界条件；发酵培养基多为营养培养基，添加特殊营养成分，且发酵过程中要调pH值，温度等外界条件。
三、实验器材
菌种：
金色链霉菌
培养基：
葡萄糖42.0g；NaCl2.0g；（NH4）2SO43.0g；CaCO34.0g；MgSO40.25g；KH2PO40.25g；pH6.0；蒸馏水1.0L。
其它：
电子天平；三角瓶（250ml、100ml）；电炉；棉塞；牛皮纸；细绳；灭菌锅；无菌操作台；酒精灯；无菌吸管；摇床。
四、实验步骤
1.按上述培养基配方配制50ml培养基，装入一只250ml三角瓶中，加热使药品溶解后（保持低温加热），用棉塞塞住瓶口，并用牛皮纸扎紧，以备灭菌。
2.用一个100ml的三角瓶装入蒸馏水，用棉塞塞住瓶口，并用牛皮纸扎紧，以备灭菌。
3.把物品放入灭菌锅中在115℃时灭菌15—20min，灭菌后放入已杀菌的无菌操作台中。
4.待培养基和无菌水冷却至适宜温度时，在无菌条件下，将两支斜面的孢子用无菌水制成悬浮液，用无菌吸管吸1ml接入摇瓶的培养基中。
5.将摇瓶放置在29℃、160r/min的摇床上培养22—24h。
注意事项：
1．接种必须在无菌条件下进行。
2葡萄糖在超过115℃的时候就会发生变性，灭菌时必须特别注意，要有人看护。
实验三金霉素的发酵
一、实验目的
掌握摇瓶发酵的原理
掌握摇瓶发酵的操作过程
二、实验原理
1.发酵来源
发酵现象早巳被人们所认识，但了解它的本质却是近200年来的事。
英语中发酵一词fermentation是从拉丁语fervere派生而来的，原意为“翻腾”，它描述酵母作用于果汁或麦芽浸出液时的现象。
沸腾现象是由浸出液中的糖在缺氧条件下降解而产生的二氧化碳所引起的。
在生物化学中把酵母的无氧呼吸过程称作发酵。
我们现在所指的发酵早已赋予了不同的含义。
发酵是生命体所进行的化学反应和生理变化，是多种多样的生物化学反应根据生命体本身所具有的遗传信息去不断分解合成，以取得能量来维持生命活动的过程。
发酵产物是指在反应过程当中或反应到达终点时所产生的能够调节代谢使之达到平衡的物质。
实际上，发酵也是呼吸作用的一种，只不过呼吸作用最终生成CO2和水，而发酵最终是获得各种不同的代谢产物。
因而，现代对发酵的定义应该是：
通过微生物（或动植物细胞）的生长培养和化学变化，大量产生和积累专门的代谢产物的反应过程。
2、发酵的定义
（1）微生物生理学严格定义的“发酵”：
有机物被生物体氧化降解成氧化产物并释放能量的过程统称为生物氧化。
微生物生理学把生物氧化区分为呼吸和发酵，呼吸又可进一步区分为有氧呼吸和无氧呼吸。
因此，发酵是生物氧化的一种方式。
发酵是这样一种生物氧化方式：
在没有外源最终电子受体的条件下，化能异养型微生物细胞对能源有机化合物的氧化与内源的（已经经过该细胞代谢的）有机化合物的还原相耦合，一般并不发生经包含细胞色素等的电子传递链上的电子传递和电子传递磷酸化，而是通过底物（激酶的底物）水平磷酸化来获得代谢能ATP；能源有机化合物释放的电子的一级电子载体NAD，以NADH的形式直接将电子交给内源的有机电子受体而再生成NAD，同时将后者还原成发酵产物（不完全氧化的产物）。
细胞中的NAD是有限的，如果作为一级电子载体的辅酶NAD不能得到再生，就不能被回用，有效的电子载体就会愈来愈少，脱氢反应就不能持续进行下去了。
因此辅酶NAD的再生是生物氧化（包括发酵）继续进行下去的必要条件。
（2）专业词汇“发酵（fermentation）”
“发酵”这个词汇在生活中往往是人联想到发面制作大饼、油条、馒头、包子，或者联想到食品酸败物品霉烂。
“发酵”作为专业词汇其含义不但覆盖发面制作大饼、油条、馒头、包子，更重要的是指用发酵的手段工业化生产酒及酒精饮料、食品及食品添加剂、饲料及饲料添加剂、药品、化工材料等等。
（3）工业生产上定义的发酵——“工业发酵”
工业生产上笼统地把一切依靠微生物的生命活动而实现的工业生产均称为“发酵”。
这样定义的发酵就是“工业发酵”。
工业发酵要依靠微生物的生命活动，生命活动依靠生物氧化提供的代谢能来支撑，因此工业发酵应该覆盖微生物生理学中生物氧化的所有方式：
有氧呼吸、无氧呼吸和发酵。
近百年来，随着科学技术的进步，发酵技术发生了划时代的变革，已经从利用自然界中原有的微生物进行发酵生产的阶段进入到，按照人的意愿改造成具有特殊性能的微生物以生产人类所需要的发酵产品的新阶段。
3、发酵的特点
发酵和其他化学工业的最大区别在于它是生物体所进行的化学反应。
其主要特点如下：
1）发酵过程一般来说都是在常温常压下进行的生物化学反应，反应安全，要求条件也比较简单。
2）发酵所用的原料通常以淀粉、糖蜜或其他农副产品为主，只要加入少量的有机和无机氮源就可进行反应。
微生物因不同的类别可以有选择地去利用它所需要的营养。
基于这—特性，可以利用废水和废物等作为发酵的原料进行生物资源的改造和更新。
3）发酵过程是通过生物体的自动调节方式来完成的，反应的专一性强，因而可以得到较为单—的代谢产物。
4）由于生物体本身所具有的反应机制，能够专一性地和高度选择性地对某些较为复杂的化合物进行特定部位地氧化、还原等化学转化反应，也可以产生比较复杂的高分子化合物。
5）发酵过程中对杂菌污染的防治至关重要。
除了必须对设备进行严格消毒处理和空气过滤外，反应必须在无菌条件下进行。
如果污染了杂菌，生产上就要遭到巨大的经济损失，要是感染了噬菌体，对发酵就会造成更大的危害。
因而维持无菌条件是发酵成败的关键。
6）微生物菌种是进行发酵的根本因素，通过变异和菌种筛选，可以获得高产的优良菌株并使生产设备得到充分利用，也可以因此获得按常规方法难以生产的产品。
7）工业发酵与其他工业相比，投资少，见效快，开可以取得显著的经济效益。
基于以上特点，工业发酵日益引起人们重视。
和传统的发酵工艺相比，现代发酵工程除了上述的发酵特征之外更有其优越性。
除了使用微生物外，还可以用动植物细胞和酶，也可以用人工构建的“工程菌’来进行反应；反应设备也不只是常规的发酵罐，而是以各种各样的生物反应器而代之，自动化连续化程度高，使发酵水平在原有基础上有所提高和和创新。
4、发酵的类型
根据发酵的特点和微生物对氧的不同需要，可以将发酵分成若干类型：
1）按发酵原料来区分：
糖类物质发酵、石油发酵及废水发酵等类型。
2）按发酵产物来区分：
如氨基酸发酵、有机酸发酵、抗生素发酵、酒精发酵、维生素发酵等。
3）按发酵形式来区分，则有：
固态发酵和深层液体发酵。
4）按发酵工艺流程区分则有：
分批发酵、连续发酵和流加发酵。
5）按发酵过程中对氧的不同需求来分，一般可分为：
厌氧发酵和通风发酵两大类型。
三、实验器材
菌种：
金色链霉菌
培养基：
葡萄糖42.0g；NaCl2.0g；（NH4）2SO43.0g；CaCO34.0g；MgSO40.25g；KH2PO40.25g；pH6.0；蒸馏水1.0L。
试剂：
蒸馏水
其它：
电子天平；三角瓶（500ml）；纱布；牛皮纸；细绳；灭菌锅；无菌操作台；酒精灯；无菌吸管；摇床。
四、实验步骤
1.按上述培养基配方配制50ml培养基，装入一只三角瓶中，加热使药品溶解，用纱布塞住瓶口，并用牛皮纸扎紧，以备灭菌。
2.把物品放入灭菌锅中在121℃下灭菌15～20min，灭菌后放入已杀菌的无菌操作台中。
用吸管从种子培养基将菌液接入灭菌后的培养基中，接种量为2%
3.将摇瓶放置在29℃、160r/min的摇床上培养。
4.定时取样，以备后续测定。
实验四发酵液中残糖量的分析
一、实验目的
掌握发酵液中的残糖量测定的原理和方法
二、实验原理
本实验葡萄糖含量的测定用DNS法。
糖的测定方法有物理的和化学的两类。
由于化学方法比较准确，常常使用。
还原糖的测定是糖测定的基本方法。
还原糖是指含有自由醛基和酮基的糖类。
单糖都是还原糖，利用单糖、双糖和多糖的溶解度的不同可把它们分开。
用酸水解法使没有还原性的双糖，彻底水解成具有还原性的单糖，再进行测定，就可以求出样品中的还原糖的含量。
有几种方法可用于测定还原糖。
在碱性溶液中，还原糖变为烯二醇（1，2-烯二醇）。
烯二醇易被各种氧化剂如铁氰化物，3，5-二硝基水杨酸和Cu++氧化为糖酸。
铁氰化物和二硝基水杨酸盐的还原作用是还原糖定量测定的基础。
还原糖和碱性二硝基水杨酸试剂一起共热，产生一种棕红色的氨基化合物，在一定的浓度范围内，棕红色物质颜色的深浅程度与还原糖的量成正比。
因此，我们可以测定样品中还原糖的量。
三、实验器材
1.待测溶液：
发酵液。
2.试剂：
3,5—二硝基水杨酸（DNS）把6.3gDNS溶于262ml2mol/L的NaCl中，将此溶液与500ml含有182g酒石酸钾钠的热水混合，向该溶液中加入5g重蒸酚和5gNa2SO3，充分搅拌至溶解，待溶液冷却后，用水稀释到100ml，存储于棕色瓶中。
3.其它：
pH试纸；容量瓶（100ml）；玻璃漏斗；吸量管（0.1ml，1ml，0.5ml，5ml，10ml）；试管；恒温水浴；沸水浴锅。
四、实验步骤
（一）葡萄糖标准曲线制备
1.按表1制备九个管；
2.向九只试管中分别加入DNS试剂，充分混合；
3.将九只试管放入沸水浴中加热煮沸5min；
4.将试管放入盛有冷水的烧杯中冷却；
5.向试管中分别加入4ml蒸馏水，充分混合；
6.以空白试管做对照，于540毫微米波长下，分别测定各管的OD值；
7.画每管在540毫微米波长下的吸收值（作为纵坐标），对每管所含的葡萄糖微克数（作为横坐标）的图，得到一条通过零点的直线。
表1葡萄糖标准曲线制备
管号
葡萄糖存储液（1mg/ml）
水（ml）
最终浓度（μg/ml）
1
0
0.5
0
2
0.05
0.45
100
3
0.1
0.4
200
4
0.15
0.35
300
5
0.2
0.3
400
6
0.25
0.25
500
7
0.3
0.2
600
8
0.35
0.15
700
9
0.4
0.1
800
（二）还原糖的测定
1.根据经验，将样品稀释N倍，使稀释液中的葡萄糖含量在0．1～1mg/ml的范围之内；
2.取蒸馏水1ml，稀释液1ml，DNS1.5ml加入试管中；
3.在沸水浴中煮沸5分钟；
4.在冰水浴中迅速冷却；
5.用比色管定容到5ml；
6.以参比做比较，在分光光度计上540nm测定去其OD值。
参比的操作为
（2）步中将稀释液用蒸馏水代替。
（三）计算残糖量
根据还原糖的OD值，使用葡萄糖的标准工作曲线，计算残糖量。
实验五金霉素含量的测定
一、实验目的
掌握金霉素含量的测定原理和操作过程
二、实验原理
金霉素在440nm下具有吸光度，通过测定发酵液中金霉素吸光度的变化，比较金霉素标准曲线，可以计算出发酵液中金霉素的含量。
三、实验器材
1.样品：
不同时间的金霉素发酵液
2.试剂：
蒸馏水；固体草酸；2mol/LHCl。
3.其它：
电子天平；三角瓶（100ml）；烧杯（50ml）；恒温水浴锅；容量瓶（50ml）；分光光度计；pH试纸；吸管。
四、实验步骤
（一）金霉素含量的测定
1.取发酵液50ml左右。
2.加入固体草酸，调节发酵液pH在1.2—1.4之间，过滤。
3.取适量滤液，稀释100倍。
4.取1ml稀释液加入5ml2mol/L的HCl。
5.100℃水浴5min，定容到50ml；对照样品不加热。
5.440nm测定吸光度。
（二）金霉素含量计算
对比标准曲线计算金霉素含量。
图1金霉素标准曲线
实验六发酵罐的熟悉及灭菌操作
（一）发酵罐的熟悉
一、装置介绍
本次试验所用FUS-15L生物反应器是一个精心设计、精密加工装配而成的生物反应系统，总容积15L，工作容积10.5L，能精确的测量温度、搅拌转速、pH值和溶解氧浓度，并能精确的控制温度、搅拌转速和pH值。
配备有自动消泡装置及输送料液的蠕动泵系统。
机械搅拌装置位于罐盖上部，采用机械密封结构，具有可靠的抗污染密封性能。
气体过滤器，具有过滤效率高、流量大、阻力小、能耐重复蒸气消毒（耐蒸气消毒温度≤140℃），能有效而可靠地虑出空气中杂菌，而且体积小，安装更换方便等优点；主要管路均采用“O”型密封圈结构的连接方式，可有效地防止因泄漏而导致发生污染。
该装置由罐体、管路系统、自动控制系统三大部分组成，安装、拆卸、清洁方便，容易维修保养。
反应器特性
2.1概述
反应器采用不锈钢材制成，经机械加工、精细抛光后，内、外壁表面粗糙度不大于0.8um。
设计压力为0.2Mpa。
反应器工作温度≤125℃，反应器搅拌功率为185W，转速为150~1000rpm,搅拌器型式为两档六平叶拆卸式涡轮浆。
加热器加热功率为750KW。
2.2罐体
（1）罐体的总容积15L，工作容积体10.5L。
（2）罐高（H）为445mm，罐径（D）为200mm，高径比H:
D为2:
2.1。
（3）罐体夹套装有进出水口各一个，用于培养过程中恒温水、冷却水的循环或进、处，以及高温灭菌时蒸汽加热、保温的进、出。
（4）罐体夹套右侧上方装有压力表，便于观察蒸汽灭菌及补充冷水时夹套内的压力变化。
（5）罐体的下部右侧有两个直径Φ25㎜的标准电极插孔，用于安装进口或国产的PH及DO电极。
（6）罐体正面装有矩形视镜，背面配有圆形灯镜和专用照明灯具，以便于观察罐内培养液的情况与叶面上部的其它空间。
（7）取样放料阀位于罐体下部，与蒸汽管道连接，可反复消毒灭菌。
开启和关闭采用手动顺时针和逆时针的旋转方式。
该阀门可以在培养过程中作为取样阀又可以在放料过程中作为放料阀。
（8）搅拌器为两档六平叶拆卸式涡轮浆。
（9）反应器内壁装有可拆卸的4块挡板，以增强培养过程中的混合效果。
（10）罐体下部装有单管气体分布器，消毒灭菌时可以通入蒸汽。
培养过程可通入无菌空气。
（11）罐体背面上部装有排气管道并与冷凝器连接，用于培养过程中的排气冷凝。
2.3罐盖
罐盖用不锈钢材料制成，有“O”型密封圈与罐体法兰密封。
罐盖的两侧装有可拆卸的手柄。
在罐盖中心装有搅拌器动力输出的“轴系总成”四周分布有9个开孔（见图1）.该9个孔的用途分别为：
其中通用接口b有6个，均为插针式接口，可用于补料、换液和酸、碱、消泡剂的加入及备用，并以硅橡胶垫圈与注射式密封针头及压帽互相衔接。
连接硅橡胶管的注射式密封针头和压帽可分别单独灭菌。
之后，在火焰保护下插入即可。
这里值得注意的是：
在接种的时候打开接种口a进行接种操作时，由于开孔口径较大易于排气，致使罐内压力跌零。
此时应加大通气量，使罐内始终保持正压状态，同时，须使接种口处于火焰保护状态。
操作时动作要快，时间不宜过长，避免因操作因素造成污染。
接口b也可以作为压差式接种的接种口，接种完毕应用消毒酒精棉封住接种口，并旋上螺口盖帽。
二、反应器管路系统
管路系统流程示意图
2．管路系统阀门标记一览表
表1管路系统阀门标记一览表
序号
代号
名称
1
G-01
气体调节阀
2
G-02
滤器进气阀
3
G-03
无菌空气阀
4
S-01
滤器消毒阀
5
S-02
夹套蒸汽阀
6
S-03
底阀消毒阀
7
S-04
滤器排气阀
8
S-05
蒸汽滤气排水阀
9
W-01
水泵进口阀
10
W-02
冷水旁路阀
11
W-03
水泵出口阀
12
W-04
冲洗阀
13
W-05
夹套回流阀
14
W-06
冷凝水阀
15
M-01
排料取样阀
阀门功能简介
（1）气体调节阀
该阀为装于流量计上的针型阀，用于培养过程中开启、关闭空气及调节空气的流量。
球浮子的中部最大处是为空气流量读数。
（2）滤器进气阀
消毒霉菌是关闭此阀以防止蒸汽通入空气流量计；消毒结束或进入培养阶段时，关闭S-01阀，开启此阀，使空气经过过滤器通入罐内。
（3）无菌空气阀
此阀用于将过滤后的无菌空气经气体分布器通入罐内。
培养过程中，若遇到临时停电、停气等故障时，先关闭此阀，既可保证罐内正压有能防止罐压急剧下降造成培养液倒流现象。
（4）尾气排气阀
消毒时调节排气量以控制罐内温度和压力。
培养过程中调节尾气流量以维持罐压（保持进气和排气的平衡）。
（5）滤器消毒阀
消毒时关闭G-02阀，开启此阀，蒸汽通入过滤器进行消毒，同时将蒸汽经过过滤器通入罐内。
（6）夹套蒸汽阀
消毒时开启此阀和W-11阀，关闭W-02，W-03和W-05阀，蒸汽通过夹套，对罐内培养基进行预热，防止在蒸汽直接通入罐内培养基中时由于产生过多的冷凝水而造成培养基体积增加。
（7）底阀消毒阀
消毒时，开启此阀和M-01,对取样、放样阀（底阀）及取样管道进行灭菌。
（8）滤气排气阀
消毒时排去过滤器中的冷凝水，又可在培养过程中防止可能出现的回流管道的倒流现象出现。
（9）蒸汽过滤器排水阀
使用前开启此阀，排去冷凝水。
（10）水泵进口阀
发酵过程中用于循环泵往夹套通入循环水的阀门，消毒时关闭此阀以防止蒸汽进入泵内。
（11）冷水旁路阀
当水泵出现故障时，开启此阀，保证管路系统充满水。
（12）水泵出水阀
消毒时，关闭此阀，防止蒸汽进入水泵；快速冷却或培养过程中，开启此阀，冷凝水由水泵进入夹套，进行温度控制。
发酵过程中用于循环泵往夹套通入循环水的阀门，消毒时关闭此阀以防止蒸汽进入泵内。
（13）冲洗阀
培养过程结束后，用皮管连接此阀，可对反应器内、外及环境进行冲洗。
（14）夹套回流阀
消毒时，关闭此阀，防止蒸汽经加热器进入水泵；快速冷却或培养过程中，开启此阀，冷却水或恒温水经加热器排入下水道或通入水泵进行循环以控制温度。
（15）冷凝水阀
消毒或培养过程中，为减少培养液的损失，可开启此阀对排气进行冷却，使冷凝液返回罐内。
（16）加热器底阀
快速冷却或排污时，将加热器内的水排入下水道。
（17）温控切换阀
在培养过程中，开启此阀。
而一旦温控电磁阀W-09失灵时，可关闭此阀，打开或关闭W-10，即可维持手动冷却控温，又可对W-09进行维修或更换。
（18）温控电磁阀
培养过程中，当罐内温度高于设定值时，自控系统开启此阀，冷却水加入夹套并流经此阀，使温度恒温。
（19）温控旁路阀
培养过程中，关闭此阀。
而一旦温控电磁阀W-09出现故障时，关闭W-08，开启此阀，可代替W-09阀，进行手动冷却控温。
（20）夹套排污阀
用于排放夹套内的水进入下水道。
亦可在S-05阀下面的疏水器出现故障时，排放夹套内的冷凝水。
（21）排料排气阀
消毒时，开启此阀，蒸汽形成回路，对取样放料阀（底阀）及取样管路进行消毒，罐内液体由此口排放。
（22）底阀
对取样放料阀（底阀）和取样管路消毒结束后，关闭此阀，防止由于
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