动物生理学实验指导生院.docx
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动物生理学实验指导生院
动物生理学实验指导
张素华编
动物科技学院生理实验室
第一部分实验总论
第一节绪论
一、实验目标与要求
通过实验使学生初步掌握生理学实验的一些基本操作技能，学会检查人体功能活动的一些测试方法，验证和巩固某些基本理论知识，培养认真、负责、严谨求实的态度和团结协作的良好作风，增强对事物进行观察、比较、分析和综合的能力。
为此要求：
1.实验前应仔细阅读实验指导，了解本次实验的目标、原理、步骤等，并复习有关理论知识。
2.实验时要按照实验指导及教师的指示进行操作和观察，客观、及时地记录实验现象或结果，并联系讲授内容进行思考。
3.实验后须及时整理实验记录，分析实验结果，按照规定格式书写实验报告，按时交负责教师评阅。
二、实验报告书写要求
因实验内容不同，可以填表、叙述等形式写出报告。
书写要整洁，文字应简练、通顺。
首先注明班级、组别、姓名、实验日期，写出实验题目、实验目标等项目，然后着重书写实验结果以及分析和讨论。
并要求：
1.实验结果必须凭自己观察，随时记录，如实填写。
有曲线记录的，经必要注明后，剪贴在实验报告上。
2.分析和结论实验结果的分析，是根据学过的理论知识对结果进行解释。
如果出现非预期的结果时，应分析其可能的原因。
实验结论，是从实验结果中归纳出概括性的判断，即本次实验所验证的理论概要。
三、生理实验室规则
1.须携带实验指导、记录本等文具准时进实验室，并穿戴实验衣帽。
2.遵守学习纪律，保持实验室安静；严肃、认真、安全地进行实验，不做与本实验无关的事情。
3.实验室的一切物品，未经教师许可，不得擅自取用或带出。
4.各组应用的实验器材、物品，在使用前应查点清楚，不得随意与别组调换；如遇机件不灵或损坏时，应报告教师，以便及时修理或更换。
5.节约水电及一切消耗性物品，爱护仪器和用具。
损坏物品应赔偿。
6.保持实验室整洁。
公共器材和药品用毕后立即归还原处，动物尸体和废弃物应放到指定地点。
7.实验完毕，应将实验器材、用品和实验台收拾干净，查点清楚，放还原处。
各小组轮流搞好实验室的清洁卫生，关好窗户、水电，经教师检查无误后，方可离开。
四、常用生理盐溶液的配制
1．常用生理盐溶液
生理学实验中常用的生理盐溶液有数种，其成分和用途各异，如下表所示。
药品名称
任氏溶液
（Ringer，s）
用于两栖类
乐氏溶液
（Locke，s）
用于哺乳类
台氏溶液
（Tyrode，s）
用于哺乳类（小肠）
生理盐水
两栖类
哺乳类
氯化钠（NaCl）
6.5克
9.0克
8.0克
6.5克
9.0克
氯化钾（KCl）
0.14克
0.42克
0.2克
—
—
氯化钙（CaCl2）
0.12克
0.24克
0.2克
—
—
碳酸氢钠（NaHCO3）
0.20克
0.1～0.3克
1.0克
—
—
磷酸二氢钠（NaH2PO4）
0.01克
—
0.05克
—
—
氯化镁（MgCl2）
—
—
0.1克
—
—
葡萄糖
2.0克（可不加）
1.0～2.5克
1.0克
—
—
蒸馏水加至
1000毫升
1000毫升
1000毫升
1000毫升
1000毫升
配制生理盐溶液的方法，是先将各成份分别配成一定浓度的基础溶液（见下表），然后按表所载份量混合之。
成份
浓度（％）
任氏溶液
乐氏溶液
台氏溶液
氯化钠（NaCl）
20
32.5毫升
45.6毫升
40.0毫升
氯化钾（KCl）
10
1.4毫升
4.2毫升
2.0毫升
氯化钙（CaCl2）
10
1.2毫升
2.4毫升
2.0毫升
磷酸二氢钠（NaH2PO4）
1
1.0毫升
—
5.0毫升
氯化镁（MgCl2）
5
—
—
2.0毫升
碳酸氢钠（NaHCO3）
5
4.0毫升
2.0毫升
20.0毫升
葡萄糖
2.0克（可不加）
1.0～2.5克
1.0克
加蒸馏水至
1000毫升
1000毫升
1000毫升
应当注意的是，氯化钙溶液须在其它基础溶液混合并加蒸馏水稀释之后，方可一面搅拌一面逐滴加入，否则将生成钙盐沉淀．葡萄糖应在临用时加入，加入葡萄糖的溶液不能久置。
2．氨基甲酸乙酯常用于兔、猫、狗、蛙的全身麻醉药，使用方便，一次给药可维持4-5小时。
剂量为1克／公斤体重．即20％的溶液5ml。
第二节动物生理学常用动物及基本操作技术
一．实验动物
生理学实验主要以活的动物为对象，如鱼、蛙、家兔、小白鼠、大白鼠、羊、鸡等。
实验动物的选择必须根据不同的实验目的。
如心脏生理实验要求心脏标本存活期长，所需条件简单——可以选蛙类等。
接近保定动物必须遵守操作规程，密切注意动物反应。
保证人和动物的安全。
1.两栖类生物医学中常用蟾蜍和青蛙，分别属于两栖纲无尾目的蟾蜍科和蛙科。
它们皮肤光滑、湿润、有腺体无鳞片。
蛙类的心脏在离体情况下仍有节奏地搏动很久，常用来研究心脏的生理、药物对心脏的作用。
腓肠肌和坐骨神经可用来观察外周神经的生理功能和骨骼肌的收缩。
蛙的制动一般采用损毁脑及脊髓的办法。
左手握蛙，用食指将蛙头下压成直角，右手指可触摸到柔软凹陷的枕骨大孔，用蛙针刺入向前搅动捣毁脑。
2.家兔属哺乳动物兔型目。
解剖学上，家兔颈部有降压神经独立分支，属于传入性神经，适合做急性心血管实验。
家兔较驯服，一般不会咬人。
但有的品种（如长毛兔）或在哺乳、刚产仔和有咬癖时也会咬人，所以必须防备。
家兔的脚爪锐利，若不小心或方法不当易被其抓伤，或造成兔子的创伤甚至导致流产等。
正确的捉兔方法是，一只手在兔子头前挡住，当它匍匐在地时，顺势大把抓住双耳及颈部皮毛，承重在颈部皮毛上，迅速提起，另一只手托住臀部和下腹，抱在胸前。
二．常用麻醉剂
临床手术以及术前捕捉制动等，都会引起动物的疼痛、不适、恐惧等对身心的恶性刺激，还会在动物体内引起实质性的变化，从而影响实验结果的质量。
因此实验常在手术前对动物进行毁脑或麻醉。
麻醉措施也会在动物体内造成变化，但这些变化是能够预见和可以控制的，并且任何一项手术都能引起比麻醉时更大的不适。
鼠等效果也好。
由于戊巴比妥钠对心肌、血管平滑肌和呼吸中枢有抑制作用，一般不用于心.血管和呼吸机能方面的研究。
麻醉时需有尼克刹米备用。
乌拉坦（氨基甲酸乙酯）可导致较持久的浅麻醉，对呼吸无明显影响，安全系数大。
兔对其较敏感，狗、猫、鸟类（1.25g/kg）、蛙类（2g/kg）等均可用。
兔狗猫用量每公斤体量0.75～1g，配成20%或25%溶液耳缘静脉注射。
三．手术器械与使用
手术器械是施行手术的必需工具，虽然手术器械的种类、样式很多，但其中有一些是各类手术所必须使用的基本器械，正确和熟练地掌握这些器械的使用方法，对于保证手术操作的顺利进行关系很大。
1.蛙类解剖器材
（1）剪刀：
粗剪刀用于剪骨骼和皮肤等粗硬组织；手术剪用于剪肌肉、腱膜等一般软组织；眼科剪刀用于剪神经、血管、心包膜等细软组织。
（2）镊子：
手术镊用于牵提皮肤夹捏肌肉等组织；眼科镊用于夹捏细软组织。
（3）探针：
用于破坏脑和脊髓。
（4）玻钩：
用于分离神经、血管。
（5）锌铜弓：
用于对神经肌肉标本施加刺激，以检查其兴奋性。
（6）蛙心夹：
用于夹住心尖，另一端借缚线连于杠杆，以描记心脏舒缩。
（7）蛙板和蛙钉：
用蛙钉将蛙腿固定于一约20cm×15cm的木板上。
制备神经肌肉标本，应在清洁的玻璃板上操作，为此可在板中央嵌一玻璃板。
2.哺乳类动物手术器材
（1）手术刀：
用于切开皮肤和器官。
（2）剪刀：
剪毛用粗剪刀；剪线及一般软组织用手术剪刀；剪破血管、输尿管以便插管时使用眼科剪刀。
（3）镊子：
圆头镊子用于夹捏组织和牵提切口处的皮肤；眼科镊子用于夹捏细软组织。
（4）止血钳：
用于提起皮肤切口、分离皮下组织和夹钳血管止血。
蚊式止血钳适用于分离小血管及神经周围的结缔组织。
（5）动脉夹：
用于阻断动脉血流。
（6）气管插管：
急性动物实验时插入气管，以保证呼吸道通畅。
（7）动脉插管：
急性动物实验时插入动脉，另一端接水银检压计或血压换能器。
（8）解剖台：
固定动物，以便实验操作。
有兔解剖台、狗解剖台。
（9）注射器：
用于注射各种药物和溶液。
（10）搪瓷盆、杯等：
用于放置手术器械、溶液、兔毛等。
四．生理手术的组织与实施
生理手术由密切相关的术前准备、手术实施和术后工作等三部分组成。
1.术前准备包括人员、器具和实验动物准备三个方面。
术者：
是手术的执行者。
应全面负责术前诊断，拟定手术计划和总结工作。
手术助手：
是协助术者完成手术工作，所以应当了解手术进程及术中术者的意图，从扩创固定、结扎止血、组织缝合都应使术者感到“得心应手”，如果不能很好地同术者配合，将影响手术进行。
器械助手：
负责器械、术中负责传递器械、纱布及准备缝针、缝线。
术后做好清理工作。
麻醉助手：
除努力做到术中麻醉平稳和安全外，并负责对实验动物的全身检查、并作好记录。
监测动物生理状况，有特殊情况及时报告术者，做好急救工作。
保定助手：
负责动物的保定，注意人畜安全；协助麻醉助手。
凡参加手术的人员应分工明确，密切协作，同心协力，确保手术顺利完成。
实验完成后，要及时处理动物。
急性实验后处死动物，要考虑简便快速的方法，以减轻动物挣扎的痛苦。
可根据动物大小选择采用颈椎脱臼法（如小鼠）、空气栓塞法（如兔）、打击法、急性大量放血法、药物致死法和断头法等。
五．基本生理手术操作
虽然生理手术的种类多样，手术的范围、大小和复杂程度也有很大的不同，但手术的基本操作，如组织分离、止血、打结和缝合的技术是基本相同的。
因此，掌握手术基本操作技术是做好一切手术的基础。
在学习生理手术过程中，必须认真作好基本功的训练，做到正确、熟练地掌握基本操作，才能逐步做到动作稳健、敏捷、准确、轻柔，缩短手术时间，提高手术的效率和成功率。
1.组织分离组织分离包括使用带刃器械（刀、剪）作锐性切开和使用止血钳、手术刀柄或手指等作钝性分离。
钝性分离是将有关器械或手指插入组织间隙内，用适当的力量分离或推开组织。
这种方法适用于肌肉、皮下结缔组织、筋膜、骨膜和腹膜下间隙等。
优点是迅速省时，且不致误伤血管和神经。
但不应粗暴勉强进行，否则造成重要血管和神经的撕裂或器械穿过邻近的空腔脏器或组织，将导致严重后果。
锐性切开和钝性分离各有优点，在手术过程中可以根据具体情况，选择使用。
总的目的是充分显露深部组织和器官，同时又不致造成过多组织的损伤。
为此，必须注意确定准确切开的部位，控制切口大小以满足实验需要为度，切开时按解剖层次分层进行等。
2.止血在手术过程中，组织的切开、切除等都可造成不同程度的出血。
因此，在手术操作中，完善而彻底地止血，不但能防止严重的失血，而且能保证术部清晰，便于手术顺利地进行，避免损伤重要的器官，有利于切口的愈合。
小血管出血或静脉渗血，可使用纱布或干棉球压迫止血法，是按压，不可擦拭，以免损伤组织和使血栓脱落。
若未能确切止血，用此法也可清除术部血液，辨清组织及出血点以进行其他有效的止血方法。
较大的出血，特别是小动脉出血时，先用止血钳准确夹闭血管断端，结扎后除去止血钳。
较大的血管应尽量避开，或先作双重结扎后剪断。
3.颈部分离血管神经将麻醉好的家兔仰卧保定在手术台上。
剪去颈部被毛，于甲状软骨下方纵行剪（切）开皮肤约5cm。
用止血钳等器械钝性分离皮下组织和肌肉，直至暴露气管。
左手拇指和食指捏住切口缘的皮肤和肌肉，其余三指从皮肤外侧向上顶，右手持玻璃分针。
在气管一侧找到颈部血管神经束，粗壮搏动的是颈动脉，与颈动脉伴行的神经中最细的为降压神经（又称主动脉神经），最粗的为迷走神经，交感神经居中。
辨认清楚后，才能分离，避免先分离搞乱位置后使神经与筋膜难以辨认。
分离时根据需要先将较细的神经分离出来，再分离其它神经和血管，并随即在各血管神经下穿埋粗细颜色不同的丝线以标记。
在类似的分离操作中，尽量避免用金属器械刺激神经，更要防止刃器或带齿的器械损伤血管神经，多用烧制好的玻璃分针或玻璃钩顺血管神经的走向剥离。
4.插管术
动物插管是为了保证动物的正常生理状态而常用的一种处理方法，如为了保证动物的肺通气通畅，需做气管插管，使动物通过气管插管进行呼吸；为了测定血压或放血；注射、取血、输液等需采用血管插管。
（1）插管的一般原则：
动作要轻，创面要小，尽量避免对周围组织的损伤，减少对动物的伤害；所有插管要与所在组织扎牢，以免脱落；保持所裸露组织的湿润；经常观察插管部位，以防意外情况出现。
（2）气管插管 动物（以家兔为例）暴露、游离出气管，并在气管下穿一较粗的线。
用剪刀或专用电热丝于喉头下2～3cm处的两软骨环之间，横向切开气管前壁约1/3的气管直径，再于切口上缘向头侧剪开约0.5cm长的纵向切口，整个切口呈”┴” 。
若气管内有分泌物或血液要用小干棉球拭净。
然后一手提起气管下面的缚线，一手将一适当口径的“Y”气管插管斜口朝下,由切口向肺插入气管腔内，再转动插管使其斜口面朝上，用线镈结于套管的分叉处,加以固定
（3）颈动脉插管 事先准备好插管导管，取适当长度的塑料管或硅胶管，插入端剪一斜面，另一端连接于装有抗凝溶液（或生理盐水）的血压换能器或输液装置上，让导管内充满溶液。
给动物静脉注射肝素（500U/kg），使全身肝素化（也可不进行此操作）,分离出一段颈总动脉，在其下穿两根线备用。
将动脉远心端的线结扎，用动脉夹夹住近心端，两端间的距离尽可能长。
用眼科剪在靠远心端结扎线处的动脉上呈45º度剪一小口，约为管径的1/3或1/2，向心脏方向插入动脉导管，用近心端的备用线，在插入口处将导管与血管结扎在一起，其松紧以开放动脉夹后不致出血为度。
小心缓慢放开动脉夹，如有出血，即将线再扎紧些，但仍以导管能抽动为宜。
将导管再送入2～3cm，并使结扎更紧些,以使导管不致脱落。
用远心处的备用线围绕导管打结、固定。
操作完毕后将血管放回原处。
5.腹壁切开法腹中线切口适用于兔的腹部实验手术。
不管是前中部，还是中后部腹中线切口，通路手术所经过的组织层次基本相同。
将动物在手术台上仰卧保定，可作全身麻醉配合局部浸润麻醉。
腹部正中线剪毛，助手将腹部皮肤左右提起，术者用手术剪（或刀）纵向剪一小口，再水平插入剪刀，剪刀尖上挑式剪开腹中线皮肤。
此时皮下可见一纵向腹白线，如皮肤同样先剪一小口，再用钝头外科剪（腹膜剪）或伸入手指垫着，沿腹白线打开腹腔，以免伤及脏器。
第三节计算机生物信号采集处理系统
基础医学实验手段和设备的不断更新，促进了机能学实验研究的发展。
计算机是一种现代化、高科技的自动信息分析、处理设备。
利用计算机采集、处理生物信息，让计算机进入机能学实验室已成为必然趋势。
一、计算机在机能学实验中的应用
一）计算机应用的一般过程通常人们把电子的、机械的以及磁性的各种部件所组成的计算机实体称为硬件，如输入设备、中央处理器（CPU）、内存储器、外存储器、输出设备等。
而把指挥计算机工作的各种程序和数据称为“软件”。
在实际使用时，首先从输入设备键盘、鼠标、磁盘将程序及数据送入内存，再输入让程序运行的命令，这时中央处理器就按照内存中程序的安排，从中取出数据到运算器内进行运算、处理，并将结果送回内存中保存。
同时将运行的结果按照要求通过输出设备显示、打印出来，也可以送到磁盘上储存起来。
由此可见，计算机是按照人们的要求来完成程序规定的任务。
二）生物信息的采集、处理过程计算机采集、处理生物信息的一般过程如图20。
数据分析、处理
换能器
显示
生物体电信号放大器A/D转换器计算机
储存
打印等
二BL-420生物机能实验系统介绍
一）BL-420生物机能实验系统功能特点
1．采用12位A/D转换器，最高采样速率可达60kHz。
2．四通道高增益（2～50000倍），低噪声，程控的生物电放大器。
各通道扫描速度分别可调。
3．程控电刺激器，包括电压输出（0V～35V，步长最小达5mV）和电流输出（0mA～10mA，步长最小达1μA）两种模式。
4．程控全导联心电选择。
5．以中文win98为软件平台，全中文图形化操作界面。
6．网络控制功能，可实现教师与学生在计算机上直接对话。
7．以生理实验为基础，预设置了8个系统共32个实验模块。
8．独特的双视显示功能，可实现实时实验生物波形与实验记录波形同时对比观察的功能。
9．数据分析功能，可实时地对原始生物信号以及储存在磁盘上的反演信号进行积分、微分、频谱、频率直方等运算、分析；并同步显示该处理后的图形。
10．测量功能对信号进行实时测量、光标测量、两点测量以及区间测量，可测量出多项生物指标，如：
最大、最小以及平均值，信号的频率、面积、变化率以及持续时间等，且可将测量结果数据或原始数据导出到Excel或txt文件中。
11．数据反演功能，在反演数据过程中，可用鼠标拖动数据查找滚动条进行快速查找；并可对反演信号进行数据、图形剪辑。
12．有打印单、多通道的实验数据功能；在打印时，还可进行图形比例压缩，确定打印位置。
二）使用指南
1．主界面
BL-NewCentury.exe操作主界面
主界面从上到下依次主要分为：
标题条、菜单条、工具条、波形显示窗口、数据滚动条及反演按钮区、状态条等6个部分。
主界面从左到右主要分为：
标尺调节区、波形显示窗口和分时复用区三个部分。
波形显示窗口可以通过鼠标左、右视分隔条，同时显示反演波形和实时观察的生物波形（左视显示实时记录下来的生物波形，右视显示实时的生物波形）。
在标尺调节区的上方是刺激器调节区，其下方则是Mark标志区。
分时复用区包括：
控制参数调节区、显示参数调节区、通用信息显示区和专用信息显示区四个分区，它们分时占用屏幕右边相同的一块显示区域，可以通过分时复用区顶端的4个切换按钮在这4个不同用途的区域之间进行切换。
分时复用区的下方是特殊实验标记选择区。
各部分功能详见表1-1。
表1-lBL-NewCentury软件主界面上各部分功能
名称
功能
备注
标题条
显示BL-NewCentury软件的名称以及实验标题等信息
菜单条
显示所有的顶层菜单项，您可以选择其中的某一菜单项以弹出其子菜单。
最底层的菜单项代表一条可执行命令
菜单条中一共有8个顶层菜单项
工具条
一些最常用命令的图形表示集合，它们使常用命令的使用变得方便与直观，可直接点击执行
共有21个工具条命令
刺激器调节区
调节刺激器参数及启动、停止刺激
包括两个按钮
左、右视分隔条
用于分隔左、右视，也是调节左、右视大小的调节器
左、右视面积之和相等
时间显示窗口
显示记录数据的时间
在数据记录和反演时显示
4个切换按钮
用于在4个分时显示复用区中进行切换
增益、标尺调节区
在实验过程中调节硬件增益，在数据反演时调节软件放大倍数。
选择标尺单位及调节标尺基线位置
波形显示窗口
显示生物信号的原始波形或数据处理后的波形，每一通道显示窗口对应一个实验采样通道
显示通道之间的分隔条
用于分隔不同的波形显示通道，也是调节波形显示通道高度的调节器
4个显示通道的面积之和相等
分时复用区
包含硬件参数调节区、显示参数调节区以及通用信息区和专用信息区4个分时复用区域
这些区域占据屏幕右边相同的区域
Mark标志区
用于存放Mark标志和选择Mark标志
Mark标志在光标测量时使用
状态条
显示当前系统命令的执行状态或一些提示信息
数据滚动条及反演按钮区
用于实时实验和反演时快速数据查找和定位，同时调节4个通道的扫描速度。
特殊实验标记选择区
用于编辑特殊实验标记，选择特殊实验标记，然后将选择的特殊实验标记添加到波形曲线旁边
包括特殊标记选择列表和打开特殊标记编辑对话框按钮
2．生物信号显示窗口生物信号显示窗口如图所示，其窗口说明详见表1-2。
表1-2生物信号显示窗口功能
名称
功能
备注
标尺基线
生物信号的参考零点，其上为正，其下为负
波形显示
显示采集到的生物信号波形或处理后的结果波形
背景标尺点
波形幅度大小和时间长短的参考刻度线或点
其类型和颜色可选
生物信号显示窗口
3．工具条工具条如下图所示。
工具条
工具条和命令菜单的含义相似，也是一些命令的集合，是我们实验中常用的一些命令。
工具条上的每一个图形按钮被称为工具条按钮，每一个工具条按钮对应一条命令。
三、BL-420生物机能实验系统操作步骤
1．开机只有当计算机各接口连线连接完毕后，才能开机。
2.打开“BL-420生物机能实验系统”外置系统
3．启动软件用鼠标双击桌面上的“BL-420生物机能实验系统”快捷图标，显示器显示BL-420生物机能实验系统的主界面。
4．开始实验的方法
鼠标单击菜单条的“实验项目”菜单项，弹出下拉式菜单，移动鼠标，选定实验系统及内容后，用鼠标左键单击该项，系统自动进入已设置基本参数的该实验监视状态。
如要以全屏方式显示某通道信号，只需用鼠标双击该通道任一部位，即完成单通道的全屏显示。
同时也可以通过拖动各通道之间的分隔条任意调节各通道显示区的大小。
如要恢复原通道显示大小，用鼠标双击显示区的任一部位即可。
5．数据显示在实验过程中，我们要不断观察生物信号测量的数据。
这时只需用鼠标单击分时显示复用区“
”或“
”按钮，该区即根据不同通道记录信号的类型，显示不同的测量数据。
6．暂停观察如要仔细观察正在显示的某段图形，鼠标单击工具条上的“
”暂停按钮，此时该段图形将被冻结在屏幕上。
如需继续观察扫描图形，鼠标单击“
”启动键即可。
7．刺激器的使用当需要给标本刺激时，鼠标单击工具条的“
”启动刺激按钮；停止刺激时，鼠标再次单击工具条的“
”刺激按钮。
8．实验标记在我们实验过程中对发生的事件如用药、刺激等要作标记，它是我们实验后分析数据时对该事件的标志。
在该系统中标记有两种方式。
一种是特殊实验标记，鼠标右键弹出。
另一种是通用实验标记，在界面的工具条上。
9．实验结束当实验结束时，用鼠标单击工具条的“
”停止键。
如果在实验中启动了“
”记录存盘框，此时会弹出一个存盘对话框，提示你给刚才记录存盘的实验数据输入文件名（文件名自定义）。
否则，计算机将以“Temp.dat”作为该实验数据的文件名，并覆盖前一次相同文件名的数据，存入储存器。
当单击“确定”，存盘对话框消失后，即可调出本次实验图形数据进行反演。
10．数据测量
方法：
鼠标单击工具条上的“
”区间测量投钮，此时，图形暂停扫描，通道内出现一垂直线条，线条随鼠标移动而移动；单击鼠标左键以确定要测量图形的始端，同时第二条垂直线出现，相同方法确定终端。
在被测量图形段内出现一条水平直线。
用鼠标上下移动该直线，选定频率计数的基线，鼠标单击以示确定（水平直线也代表该区问的时程，用此测量方法同样可以测量某波形的时程）。
这时所有被测量的参数自动显示在该通道信息区内，单击鼠标右键结束本次测量。
注意事项
1．在开机状态下，切忌插入或拔出计算机各插口连线。
2．切忌液体滴人计算机及附属设备内。
3．未经允许，不得随意改动计算机系统设置。
4．在实验开始记录时，注意是否在记录状态下（记录按钮被显示为按下状态），否则不进行数据存盘，反演时无图形数据。
5．未经许可严禁自带软盘上机操作。
第二部分
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