REACH法规第五卷译稿29Word文件下载.docx

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从这些不同的储备液

（1）制备另一个储备液

（2），包含所有的微量元素（混合溶液），比如：

M4和M7培养液

M4和M7培养液用来制备营养液，营养物和维生素见下：

含维生素储备液应分成小等份冷冻保存。

维生素在使用之前加入培养液。

N.B.当准备培养液时应避免盐的沉淀,将小份储备液加入大约500-800毫升的去离子水然后再稀释至1升。

N.N.B.最早关于M4的文章可在ELendt，B.P.（1990）找到。

SeLeninmdeficiencyincrustacea;

anuLtrastructuraLapproachtoantennaLdamageinDapHniamagnastraus.ProtopLasma,154,25-33.

附件2

有机碳总量（TOC）分析及绘制藻类饲料的TOC含量图

很明显藻类饲料的碳含量不能直接测量，但是从相互关系（如计算图）中用替代物来测量如藻类细胞数或吸光度）。

TOC的测量应是在高温下氧化而不是在紫外线下或用过硫化persulphate方法（见:

TheInstrumentalDeterminationofTotalOrganicCarbon,TotalOxygenDemandandRelatedDeterminands1979,HMSO1980;

49HighHolborn,LondonWC1V6HB）。

因为需绘制图表，藻应该与生长培养液离心分离。

测量替代物和TOC浓度在同样的3份样品中。

应做空白实验并在藻类样品TOC浓度中扣除。

计算图超过范围的碳浓度应该是线性的。

样例见下：

N.B.这些不应该进行转变；

实验室准备他们自己的计算图是很必要地。

concentratedalgalfeed:

浓缩藻饲料

dryweight:

干重

correlationcoefficient:

相关系数

absorbance:

吸光度

dilution:

稀释

pathlength:

光程

suspension:

悬浮

distilledwater:

蒸馏水

附件3

培养液的数据记录样例，物理/化学品监测数据,喂养,

水蚤繁殖及成体的死亡率

实验N0:

数据starded:

复制:

培养液:

食物的类型:

实验物质:

标称浓度

*指出实验用的是哪一容器

++在有关的表中记录成体死亡率M。

+在有关的表中记录夭折的窝AB。

附件4

化学分析实验结果数据记录的样例

（A）标称浓度

（b）标称浓度的测量百分数

附件5

时间-加权平均值的计算

时间-加权平均值

所给实验物质的浓度衰退，选择适当的浓度是必需的，代表水蚤生活浓度范围。

选择应该基于生物学和统计学。

比如,如果峰值浓度对繁殖的影响最大,那么应使用最大的浓度。

然而，如果累积或较长时间的有毒物质被考虑是更重要的，然后一个平均浓度是更适合。

在这种情况，应使用一个适当的时间-加权平均值，即使这将给即时浓度带来变化。

图1:

时间-加权平均值的例子

图1展示了一个共7天的（简化）实验，在第0，2，4天重复营养液。

细的Z型线代表每个时间所对应的浓度。

假设浓度的下降是指数递减过程。

6个方块点代表浓度在观察开始和结束的值

粗的实线指出时间-加权平均值的位置。

时间-加权平均值是计算出来的，这样在时间-加权平均值线下面的区域和在浓度曲线下面区域的面积是相等的。

为上述例子的计算见表1。

表1:

时间-加权平均值的计算

Days是重复时的天数

Conc0在开始时的浓度

Conc1在结束时的浓度

Ln（Conc0）是Conc0的自然对数

Ln（Conc1）是ConCl的自然对数

Area是每个指数曲线下的面积，计算如下：

Area=

*Days

时间-加权平均值（TW值）是总面积除以总数天数。

当然，为了进行水蚤繁殖实验此表格要可以记录21天

显而易见如果只在开始和结束时观测数据就不可能确定消失过程，指数级的递减。

不同的曲线会计算出不同的面积。

无论如何这并不是难以置信的，在缺少其他更多的信息时这可能是最好的。

这项工作需要非常谨慎否则会在末期找不到任何物质而分析失败。

除非可以判断物质在溶液中消失的速度否则不可能得到曲线下面的实际面积，也不可能获得一个合理的时间-加权平均值。