第一篇血液标本采集指南.docx
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第一篇血液标本采集指南
第一篇血液标本采集指南
（依据二甲要求制定本采集指南）
血液标本采集法
1.血清标本测定血液中某些物质的含量（如非蛋白氮，尿素氮等）。
2.血清标本测定血清酶、脂类、电解质和肝功能等。
3.血培养标本查找血液中的病原体（如伤寒杆菌培养等）。
一般常规检验用毛细血管采血法，这种采血法由检验人员执行，血清生化及细菌培养等检验因需要较多量的血液，一般由护理人员协助采血。
目前不少生化项目检验已采用微量测定法，故也可采用毛细血管采血法采标本。
（二）静脉采血法
1.用物同静脉注射法，备干燥注射器（5－10ml），7号针头，标本容器（按需要备干燥试管、抗凝管或血培养瓶），酒精灯，火柴等。
2.操作方法
（1）备齐用物，贴好标签，核对无误后按静脉穿刺法采取所需血量，立即卸下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内，切勿将泡沫注入，避免震荡，以防红细胞破裂而造成溶血。
因血液中细胞的内外成分有很大差异，如细胞内钾离子浓度是细胞外的20倍，细胞内的某些酶含量也较细胞外高，如发生溶血，则直接影响检验结果的准确性。
（2）如需全血、血浆，可将血液如上法注入盛有抗凝剂的试管内，立即轻轻摇动，使血液和抗凝剂混匀，以防血液凝固。
如需作二氧化碳结合力测定时，抽取血液后，应立即注入有石蜡油的抗凝试管中，注入时针头应插入石蜡油面以下，以隔绝空气，立即送验。
否则血液中二氧化碳逸出，使检验结果降低，影响准确性。
（3）采集血培养标本时，应防止污染。
静脉采血后，将血液注入培养瓶内，一般培养标本用肉汤培养瓶，如做伤寒杆菌培养则备胆汁培养瓶。
临床常用的培养瓶有两种，一种是密封瓶，瓶口除橡胶塞外另加铝盖密封。
瓶内盛培养液约50ml，经高压灭菌，使用时将铝盖剔去，用2％碘酒和70％酒精消毒瓶盖，更换针头将抽出的血液注入瓶内，摇匀后送验。
另一种是三角烧瓶，瓶口以棉花塞子及纸严密包封，使用时先将封瓶纸松开，取血后将棉塞取出迅速在酒精灯火焰上消毒瓶口，将血液注入瓶内，轻轻摇匀，再将棉塞经火焰消毒后盖好，扎紧封瓶纸送验。
一般血培养取血5ml，亚急性细菌性心内膜炎病人，因血中细菌数目较少，为提高细菌培养阳性率，应取血10－15ml.
（4）采血完毕，连同检验单及时送验，清理用物，归还原处。
一次性注射器使用后应经消毒液浸泡集中处理。
血液标本采集所需血量视检验目的而定，各医院检验方法不同，其采血量也各异。
下面介绍常用检验项目全血、血清标本和放射免疫检验采血量与要求（表17－1，17－2，17－3，17－4）。
表17－1常用全血标本采血量与要求（不需空腹）
检验项目
采血量（ml）
标本容器
要求
血氨（BA）
5.0
肝素抗凝
立即送验
血液酸碱度（pH）
2.0
肝素抗凝
空针肝素化后方可采血
二氧化碳分压（PaO2）
2.0
肝素抗凝
隔绝空气
氧分压（PaO2）
2.0
肝素抗凝
隔绝空气
碳酸氢盐
2.0
肝素抗凝
隔绝空气
表17－2常用全血标本采血量与要求（空腹）
检验项目
采血量（ml）
标本容器
要求
血沉ESR
1.6
3.8%枸橼酸钠溶液0.4ml
充分混匀及时送验
血糖BG
1～2
抗凝瓶
充分混匀及时送验
二氧化碳结合力（CO2-Cp）
2.0
抗凝瓶
充分混匀及时送验
非蛋白氮（NPN）
2.0
抗凝瓶
充分混匀及时送验
尿素氮（BuN）
2.0
抗凝瓶
充分混匀及时送验
红细胞比积（Hct）
2.0
抗凝瓶
充分混匀及时送验
肌肝（Cr）
3.0
抗凝瓶
充分混匀及时送验
肌酸（Cre）
凝血酶元活动度及时间（PT）
1.8
试管内盛3.13%枸橼酸钠0.2ml
充分混匀及时送验
纤维蛋白元（Fb）
2.0
抗凝瓶
充分混匀及时送验
E－玫瑰花结形成试验（ERT）
2.0
肝素抗凝
HDL－胆固醇
2.0
不抗凝
表17－3放射免疫检验采血量与要求
检验项目
采血量（ml）
要求
甲状腺功能测定
总三碘甲状腺原氨酸（TT3）总甲状腺素（TT4）
促甲状腺激素（TSH）
甲状腺球蛋白抗体（TGA）
甲状腺微粒体抗体（MCA）
3、3，、5，、三碘甲状腺原氨酸γt3
4.0
防止溶血防止溶血
防止溶血
防止溶血
防止溶血
防止溶血
乙肝检测
表面抗原（HBsAg）表面抗体（HBsAb）
e抗原（HBsAg）
e抗体（HBeAb）
核心抗原HBcAg
核心抗体HBcAb
4.0
空腹采血防止溶血
表17－4常用血清标本采血量与要求
检验项目
采血量ml
多项目合并采血量
标本容器
要求
丙氨酸氨基转移酶（ALT）门冬氨酸氨基转移酶（AST）
胎儿甲种球蛋白（AFP）
乙肝表面抗原（HBsAg）
1.01.0
1.0
1.0
4ml
干燥试管干燥试管
干燥试管
干燥试管
空腹抽血严防溶血空腹抽血严防溶血
空腹抽血严防溶血
空腹抽血严防溶血
黄疸指数（Ⅱ）总胆红素（TBIL）
2.02.0
3ml
干燥试管干燥试管
空腹抽血严防溶血空腹抽血严防溶血
总胆固醇（Chol）胆固醇脂（Choiesl）
三酸甘油酯（TC）
2.02.0
2.0
3ml
干燥试管干燥试管
干燥试管
空腹抽血严防溶血空腹抽血严防溶血
空腹抽血严防溶血
血清蛋白（A／G）蛋白电泳（SPE）
3.02.0
3ml
干燥试管干燥试管
严防溶血严防溶血
碱性磷酸酶（AKP）血清淀粉酶（AMS）
乳酸脱氢酶（LDH）
2.03.0
3.0
干燥试管干燥试管
干燥试管
严防溶血严防溶血
严防溶血
血钾（K）血纳（Na）
血钙（Ca）
血氯化物（Cl）
2.02.0
2.0
2.0
3ml
干燥试管干燥试管
干燥试管
干燥试管
严防溶血严防溶血
严防灰尘污染
严防灰尘污染
γ－谷氨酰转肽酶（γ－GT）肥达氏反应（Widalsreaction）
抗O（ASO）
红斑狼疮细胞（LES）
2.03.0
3.0
5.0
干燥试管干燥试管
干燥试管
干燥试管
空腹抽血严防溶血严防灰尘污染
严防灰尘污染
写明时间及时送验
3.注意事项
（1）根据不同的检验目的，计算所需的采血量，选择试管。
（2）需空腹抽血时，应事先通知病人，避免因进食而影响检验结果（因清晨空腹时血液中的各种化学成分处于相对恒定状态）。
（3）采集血标本应严格执行无菌技术操作，严禁在输液、输血的针头或皮管内抽取血标本，应在对侧肢体采血。
（4）如同时抽取几个项目的血标本，一般应先注入血培养瓶，其次注入抗凝管，最后注入干燥试管，动作要准确迅速。
（5）取血后，应将注射器的活塞略向后抽，以免血液凝固而使注射器粘连并阻塞针头。
（6）生化血必须清晨空腹抽取。
（三）动脉采血法（以作血气分析为例）
1.用物同静脉穿刺法，另加肝素抗凝剂（表17－5），橡皮泥或橡皮塞。
2.部位多选用桡动脉、肱动脉、股动脉。
3.操作方法用2ml注射器，连接7号针头，吸1：
500肝素生理盐水溶液1ml，将活塞来回抽动，使内壁沾匀肝素，再推掉全部肝素溶液，将活塞推至空筒顶端后不再回拉，以保持注射器内无空气。
选择动脉（桡动脉采血比较方便），常规消毒病人的皮肤及操作者的左手食、中指后，以左手绷紧皮肤，右手持注射器，用左手食指触摸动脉搏动处，以45度角进针，见血液自动加入空筒内至2ml后拔出针头，嘱病人按压局部5分钟，应立即用橡皮泥或橡皮塞封闭针头（针头斜面埋入橡皮中即可），以隔绝空气，在手中搓动注射器，使血与肝素混合，立即送验。
表17－5常用血液抗凝剂
剂名
抗凝力
机理
应用
禁忌
10%草酸钾
0.2ml抗凝10ml的血
与Ca＋＋结合成不溶性草酸钙而抗凝血
非蛋白氮二氧化碳结合力
血K＋血Ca＋
草酸钠
1～2mg抗凝1ml的血
与Ca＋＋结合成不溶性草酸钙而抗凝血
凝血酶原时间及复钙时间测定
血Na+血Ca＋
3.8%枸橼酸钠
6mg抗凝1ml的血
与血中生成不溶性离子化的枸橼酸钙，阻止血液凝固
血沉1:
4输血1:
9
双草酸盐（草酸钾、草酸胺）
0.5ml抗凝5ml的血
保持红细胞形态不变
RBC压积测定
草酸钾氟化钠
0.1ml抗凝1ml的血
抑制葡萄糖分解而保持血糖浓度
血糖测定
BWN（尿素氮）
肝素
0.1ml抗凝5～10ml的血
抑制凝血酶元转为凝血酶
血氨血气分析
4.注意事项
（1）血标本必须隔绝空气。
因为血气分析是指当天大气压条件下，用隔绝空气的血标本与一定浓度的气体相结合，而后测定人体内PH值、氧分压等，作为监测及追踪观察病人的血气情况。
血标本中若进入空气将产生误差。
因此采血的注射器使用前应检查有无漏气，针头必须连接紧密，标本采集后立即封闭针头斜面。
（2）及时送验。
标本采集后应立即送验，如要等待测定，应将标本置于0到4度冰箱内保存不得超过1小时，以免影响检验结果。
第二篇尿液标本采集指南
一、标本采集一般要求
1．患者告知 尿液标本采集，首先应告知患者关于尿液标本采集的目的，以及以口头和书面的形式具体指导尿液标本留取的方法。
尿液标本采集的一般要求见表1
表1尿液标本采集的一般要求
一般要求
①患者应处于安静状态，按平常生活饮食
②用于细菌培养的尿标本须在使用抗生素治疗前采集，以有利于细菌生长
③运动、性生活、月经、过度空腹或饮食、饮酒、吸烟及姿势和体位等可影响某些检查的结果
④清洁外生殖器、尿道口及周围皮肤，女性患者应特别避免阴道分泌物或经血污染尿液
⑤如采用导尿标本或耻骨上穿刺尿标本，一般应由医护人员先告知患者及家属有关注意事项，然后由医护人员进行采集。
采集婴幼儿尿，应由儿科医护人员指导，用小儿专用尿袋收集。
2．明确标记 在尿液采集容器和检验申请单上，应准确标记患者姓名、性别、年龄、留尿日期和时间、尿量、标本种类等信息，或以条形码做唯一标识。
信息标记 尿标本容器、离心管（试管）、载玻片必须便于标记和识别，且应保持洁净。
信息标记必须粘贴于容器上，不能粘贴于容器盖，牢固且防潮，即使在冰箱内仍保持信息清晰完整。
二、标本种类及采集方法
尿液标本类型的选择和收集方式取决于尿液检查目的（通常主要包括化学检查、尿有形成分显微镜检查和细菌学检查等，见表2）、患者状况和检验要求。
临床常用的尿液标本，依据时间或检测项目的分类如下：
（一）晨尿
晨尿（firstmorningurine）指清晨起床、未进早餐和做运动之前排出的尿液。
通常晨尿在膀胱中的存留时间达6～8h，各种成分较浓缩，已达检测或培养所需浓度。
可用于肾浓缩功能的评价、绒毛膜促性腺激素测定以及血细胞、上皮细胞、管型及细胞病理学等有形成分分析。
住院患者最适宜收集晨尿标本，然而在标本采集前1d，应提供患者尿采集容器和书面采集说明，如外阴、生殖器清洁方法、留中段清洁尿的注意事项等。
晨尿采集后在2h内送检，否则应采取适当防腐措施。
（二）随机尿
随机尿（randomurine）指患者无需任何准备、不受时间限制、随时排出的尿液标本。
如患者摄入大量液体或剧烈运动后可影响尿液成分，因而随机尿不能准确反映患者状况。
随机尿标本新鲜、易得，最适合于门诊、急诊患者的尿液筛检试验。
（三）计时尿
计时尿（timedcollectionurine）指采集规定时段内的尿液标本，如收集治疗后、进餐后、白天或卧床休息后3h、12h或24h内的全部尿液。
准确的计时和规范的操作（包括防腐方法、食物或药物禁忌等）是确保计时尿检验结果可靠的重要前提。
计时尿常用于物质的定量测定、肌酐清除率试验和细胞学研究。
1．3h尿 一般收集上午6～9时的尿液，多用于检查尿液有形成分
2．餐后尿 通常收集午餐后2～4h内的尿液，有利于检出病理性尿胆原（为最大分泌时间）、糖尿、蛋白尿。
3．12h尿 即从晚上8时开始到次晨8时终止的12h内全部尿液。
女性留尿前要清洗外阴，夏天则要先加40%甲苯1ml防腐。
检验当天，除正常饮食外不再饮水，以利尿液浓缩（因低渗会使部分红细胞与管型溶解）。
12h尿还可用于微量清蛋白、球蛋白排泄率测定。
4．24h尿 要规范采集此类尿标本最为困难，最常见的问题是未能采集到全部24h内的尿量。
因此，要求患者密切配合。
（1）收集方法：
必须明确告知患者尿标本采集具体步骤，并提供书面说明：
①容器：
容量最好大于4L，清洁，无化学污染，并预先加入合适的防腐剂。
②方法：
在开始标本采集的当天（如早晨8点），患者排尿并弃去尿液，从此时间开始计时并留取尿液，将24h的尿液全部收集于尿容器内。
③在结束留取尿液标本的次日（如早晨8点），患者排尿且留尿于同一容器内。
④测定尿量：
准确测量并记录总量。
⑤混匀标本：
全部尿液必须充分混匀，再从中取出适量（一般约40ml）用于检验，余尿则弃去。
⑤避免污染：
儿童24h尿标本采集过程中，应特别注意避免粪便污染。
（2）主要用途：
24h尿主要用于肌酐清除率试验、儿茶酚胺、17-羟皮质类固醇（17-羟）、17-酮类固醇（17-酮）、总蛋白质（totalprotein，TP）、尿糖、电解质等化学物质定量或结核杆菌检查等。
5．尿三杯试验 患者一次连续排尿，分别留取前段、中段、末段的尿液，分装于3个尿杯中。
此试验多用于泌尿系统出血部位的定位和尿道炎诊断等。
6．尿红细胞形态检查 患者清洁外阴，保持正常饮食习惯，不要饮大量水，清晨5～6时排去第1次尿，留取晨尿第2次的中段尿10ml送检，主要用于泌尿系统出血部位的判断。
7．中段尿（midstreamurine）留尿前先清洗外阴，女性应清洗尿道旁的阴道口，男性应清洗龟头；再用0.1%清洁液（如新洁尔灭等）消毒尿道口，但不可用抗生素和肥皂等清洗尿道口，以免影响细菌生存力。
在排尿过程中，弃去前、后时段排出的尿液，以无菌容器收集中间时段的尿液，主要可避免生殖道和尿道远端细菌的污染。
中段尿一般用于细菌培养
8．导管尿（catheterizedurine）、耻骨上穿刺尿（suprapubicaspirationurine） 主要用于尿潴留或排尿困难时的尿液标本采集（2岁以下小儿慎用），但要征得患者或家属同意。
以无菌术采集尿液标本。
表2尿液标本类型和应用范围
标本类型和采集方法
应用范围
随机尿
常规筛检、细胞学研究等
晨尿
常规筛查、蛋白尿检查、细胞学研究
定时尿
物质定量检测、细胞学研究、清除率试验等
中段尿
常规筛检、细胞学研究、微生物培养
导管尿（经尿道）
常规筛检、微生物培养
导管尿（经输尿管）
鉴别肾脏和膀胱感染
耻骨上穿刺尿
微生物（尤其厌氧菌）培养、常规筛查、细胞学研究
三、标本保存和处理
尿标本应在采集后2h内分析完毕，对不能及时检验的尿标本，必须进行适当处理或以适当的方式保存，可降低因标本送检延时引起的尿液理化性状改变（表3）。
表3 尿液标本无防腐保存措施下的潜在变化
理化性质
变化及机制
颜色变化
因物质氧化或还原、尿色素原或其他成分分解或改变所致。
如胆红素转为胆绿素、血红蛋白转为高铁血红蛋白、尿胆原转为尿胆素
透明度
假性减低：
因细菌繁殖、溶质析出如结晶和无定形物质
气味
假性增加：
因细菌繁殖或分解尿素形成氨所致
pH
假性增加：
因细菌分解尿素形成氨、CO2挥发所致；假性减低：
因细菌或酵母菌分解葡萄糖为代谢性酸类物质所致
葡萄糖
假性减低：
因细胞或细菌分解糖所致
酮体
假性增高：
因细菌将乙酰乙酸盐代谢成丙酮所致；假性减低：
因丙酮挥发所致
胆红素
假性减低：
因光氧化作用转变为胆绿素、水解为游离胆红素
尿胆原
假性减低：
因氧化为尿胆素所致
亚硝酸盐
假性增加：
因尿标本采集后产生细菌所致；假性减低：
因转变为氮所致
红/白细胞、管型
假性减低：
因细胞和有形成分分解，特别在稀释的碱性尿液中
细菌
假性增加：
因尿标本采集后产生细菌繁殖所致
四、标本运送与接收
（一）应尽量减少运送环节和缩短储存时间，临床送至检验科的标本传送应做到专人、专业且有制度约束，才能避免标本传送过程中因客观、主观因素造成检测结果的不准确。
运送过程中同时要注意生物安全，防止标本漏出或侧翻，污染环境、器材和衣物。
（二）病房的检验标本应该统一采集、送检的时间，以消除时间原因造成的检验结果误差。
标本采集前应该由医生或者护士告知患者注意事项。
最佳标本采集时间由护士掌握。
标本上应注明患者信息及采集时间、采集人。
采集完成后通知送检人员及时送检。
（二）实验室接收尿液标本的标准
1实验申请单（化验报告单）应清楚填写下列内容：
病人姓名、性别、年龄、科别、床号、病案号、住院号、申请序号、标本类型、临床诊断或主要症状、应用的药物（如维生素C）、收集标本时间、实验室接收时间及申请检查的实验项目。
2尿标本容器标签填写内容应与实验申请单的内容完全一致。
3尿液标本种类、尿量，符合所申请实验的要求。
4尿液及时送检并实施了相应的正确防腐措施。
5收集尿标本的容器、收集尿标本的过程，符合实验要求。
（三）实验室拒收尿液标本的标准
1实验申请单（化验报告单）填写的内容必须与尿液标本容器标签填写内容完全一致，否则拒收。
2尿液常规检查的标本必须在留取标本后2小时之内送到，否则拒收。
3申请24小时尿液定量检查的标本必须是24小时全部尿液的混合液，并准确记录尿量，否则拒收。
4常规尿液检查的标本最少量为10ml；其它尿液检查的标本应5ml，否则拒收。
5送检的申请单和容器应清洁卫生，不能溅有标本，否则拒收。
6.住院病人除急诊外，应在早上9点前送至化验室。
第三篇：
粪便标本采集指南
1．标本的收集、存放与运送的得当与否，直接关系到检验结果的准确性。
应采取新鲜粪便，盛于洁净、干燥无吸水性的有盖容器内，不得混有尿液、水或其他物质，以免破坏有形成分，使病原菌死亡和污染腐生性原虫、真菌孢子、植物种子、花粉易混淆检验结果。
2．采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便；外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为大拇指末段大小（约5g）。
3．标本采集后一般情况应于1h内检查完毕，否则可因pH及消化酶等影响导致有形成分破坏分解。
4．查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即送检。
从脓血和稀软部分取材，寒冷季节标本传送及检查时均需保温。
5．检查日本血吸虫卵时医学教育网原创应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时至少留取30g粪便，且须尽快处理。
6．检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱襞处拭取并立即镜检。
7．找寄生虫虫体及做虫卵计数时应采集24h粪便，前者应从全部粪便中仔细搜查或过筛，然后鉴别其种属；后者应混匀后检查。
8．对某些寄生虫及虫卵的初步筛选检验，应采取三送三检。
因为许多肠道原虫和某些蠕虫卵都有周期性排出现象。
9．隐血试验，应连续检查3天，选取外表及内层粪便，应迅速进行检查，以免因长时间放置使隐血反应的敏感度降低。
10．粪胆原定量检查应连续收集3天的粪便，每天将粪便混匀称重后取出约20g送检。
查胆汁成分的粪便标本不应在室温中长时间放置，以免阳性率减低。
11．脂肪定量检查时，应先食定量脂肪食，每天进食脂肪50～150g，连续6天。
从第3天起，收集72h粪便，也可定时口服色素（刚果红），作为留取粪医学教育网原创便的指示剂，将收集的粪便混合称量，从中取出60g左右送检。
简易法为在正常膳食情况下，收集24h的全部粪便，混合称量，从其中取出约60g送检，测脂肪含量。
12．细菌检验用标本应全部用无菌操作收集，立即送检。
13．无粪便排出而又必须检查时，可经肛门指诊或采便管拭取标本，灌肠或服油类泻剂的粪便常因过稀且混有油滴等而不适于做检查标本。
第四篇：
痰标本采集指南
（一）痰常规标本
1.目的检查痰液中的细菌、寄生虫卵和癌细胞。
2.用物蜡纸盒或广口瓶。
3.操作方法嘱病人晨起用清水漱口清洁口腔，然后用力咳出气管深处的痰液，盛于蜡纸盒或广口瓶内，如查癌细胞，瓶内应放10％甲醛溶液或95％酒精溶液固定后送验。
（二）痰培养标本
1.目的检查痰液中的致病菌。
2.用物朵贝氏液，无菌培养皿或瓶。
3.操作方法清晨痰量多，含菌量亦大，嘱病人先用朵贝氏液，再用清水漱口，以除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1－2口痰于培养皿或瓶中，及时送验。
（三）24小时痰标本
1.目的检查一日痰量，观察痰的性状、颜色、量、气味及内容物（虫卵计数）或浓缩查结核菌。
2.用物痰杯或广口无色玻璃瓶（容量500ml）。
3.操作方法
（1）容器上的贴好标签，注明起止时间，并作好交接班。
（2）嘱病人将晨7时至次日7时的痰液全部留在容器中送验，不可将漱口液、唾液等混入。
第五篇：
血培养标本采集与运送指南
一.采集方法
1.培养瓶消毒程序：
消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2.皮肤消毒程序：
用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后采血。
3.静脉穿刺和培养瓶接种程序：
用10ml注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），采血后直接注入血培养瓶，先注5ml于厌氧培养瓶，并注意避免注入空气，后注其它培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固或严格按厂商推荐的方法采血。
二.注意事项
1.血液标本采集后应立即送检，不能及时送检者应置室温暂存，勿放冰箱。
检验单需注明抗菌药物（特别是磺胺、青霉素）使用情况，采集时间和部位（如左臂等），可疑的诊断。
2.采血部位：
通常为肘静脉，疑为细菌心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
对于成人患者，每次发热时应该分别在两个部位采集血标本以帮助区分是病原菌还是污染菌。
在不同部位取血，2次分离出同样菌种才能确定是病原菌。
不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被固有菌群污染。
3.采血时机：
在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热前半
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