检验科标本采集手册参考.docx

上传人:b****8 文档编号:12157383 上传时间:2023-06-04 格式:DOCX 页数:76 大小:58.33KB
下载 相关 举报
检验科标本采集手册参考.docx_第1页
第1页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第2页
第2页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第3页
第3页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第4页
第4页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第5页
第5页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第6页
第6页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第7页
第7页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第8页
第8页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第9页
第9页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第10页
第10页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第11页
第11页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第12页
第12页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第13页
第13页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第14页
第14页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第15页
第15页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第16页
第16页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第17页
第17页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第18页
第18页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第19页
第19页 / 共76页
检验科标本采集手册参考.docx_第20页
第20页 / 共76页
亲,该文档总共76页,到这儿已超出免费预览范围,如果喜欢就下载吧!
下载资源
资源描述

检验科标本采集手册参考.docx

《检验科标本采集手册参考.docx》由会员分享,可在线阅读,更多相关《检验科标本采集手册参考.docx(76页珍藏版)》请在冰点文库上搜索。

检验科标本采集手册参考.docx

检验科标本采集手册参考

标本采集手册目录

1申请单(医嘱单)

(1)本院具有医师执照的医师开申请单,申请者应对患者讲清楚采集标本的目的,采集的时间、方法及注意事项。

(2)申请者应向患者讲清楚采集标本前的准备和用药须知,及可能会影响到结果的注意事项。

(3)申请单的填写

临床医生在填写申请单时,应完整填写申请单的各项内容,字迹清楚,内容应包括:

患者姓名、性别、年龄、病历号(或住院号)、科室、床号(住院病人)、申请日期、标本类型、临床诊断及主要症状、申请检验项目及特殊说明(如用的什么药)、医师姓名、标本采集日期和时间。

(4)电子申请单的填写

临床医生可通过医院网络开启电子申请,进入医生系统——检验申请流程——在患者姓名窗口进入检验申请窗口——申请单——选择申请项目——录入标本采集时间——核实无误后保存申请——提交申请——自动打印条码——申请状态自动变为已发送(具体步骤需遵从当前使用HIS系统操作说明)。

(5)知情同意书(见附件6):

医师开具申请单(医嘱单)并完成对患者的上述告知义务后,患者无异议接受申请单并交纳相关检查费用,住院病人无异议并接受标本采集,视患者知情同意申请单(医嘱单)的检查项目。

2标本容器的标识

住院患者标本容器上贴上条码,条码信息必须与患者申请单一致且为唯一性标识,包括住院号、条码号、姓名、科室、床号、检验项目、采集时间、采集者信息等。

检验科在接收标本后,要打印条码再次进行实验室内编号,同时须有标本接收时间。

门诊病人检验申请单必须有临床医生签字或盖章,检验科接收标本后进行条码编号,一个患者3联,分别贴在标本管、申请单上,余下联交予患者用于领取报告单。

3患者准备

3.1患者状态

一般需在安静、休息状态下采集标本。

如患者出于高度紧张状态,可使血红蛋白、白细胞增高;运动后由于能量消耗、体液丢失,可造成CK、LDH、ALT、AST等一时性升高,还可引起血液中钠、钙、白蛋白、血糖等成分的改变。

3.2饮食

多数试验要求在采血前禁食12h,因为饮食中的不同成分可直接影响实验结果。

(1)餐后血液中ALT、GLU、BNU、Na等均可升高,但空腹达24h以上,可出现低血糖,血中TG、游离甘油及脂肪酸可增高。

(2)高脂餐后2~4h采血,多数人ALP含量增高,主要来自肠源性同工酶。

(3)高蛋白质餐使血浆尿素、血氨增加,但不影响肌酐含量。

(4)高比例不饱脂肪酸食物,可减低胆固醇含量;香蕉、菠萝、番茄可使尿液5-羟色胺增加数倍。

(5)含咖啡因饮料,可使血浆游离脂肪酸增加,并使肾上腺和脑组织释放儿茶酚胺。

(6)食物如含有动物血液,可引起粪隐血假阳性。

(7)饮酒后使血浆乳酸、尿酸盐、乙醛、乙酸等增加,长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶亦较不饮酒的病人为高,甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。

(8)吸烟:

瘾大者血液一氧化碳血红蛋白含量可达8%,而不吸烟者含量在1%以下。

此外,儿茶酚胺、血清可的松亦较不吸烟者为高,血液学方面亦有变化,白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、血红蛋白偏高、平均红细胞体积偏高。

吸烟组血浆硫氰酸盐浓度明显高于非吸烟组。

3.3药物

药物对检验的影响非常复杂,在采样前,以暂停各种药物为宜,如某种药物不可停用,则应了解可能对检验结果产生的影响。

3.4体位

体位影响血液循环,由于血液和组织间液因体位不同而平衡改变,则细胞成分和大分子物质的改变较为明显,例如由卧位改为站位,血浆TP、ALB、酶、Ca、胆红素、Tch及TG等浓度增高;RBC、Hb、HCT等亦可增加。

由于体位的因素,在确立参考值时,应考虑门诊和住院病人可能存在的结果差异,故采集标本时要注意保持正确的体位和保持体位的一致性。

3.5时间

病人准备还应考虑病人的生物钟规律,特别是激素水平分析,如女性生殖激素与月经周期密切相关;胆固醇则在经前期最高,排卵时最低;纤维蛋白原在经前期最高,血浆蛋白则在排卵时减少。

生长激素于入睡后会出现短时高峰。

胆红素、血清铁以清晨最高;血浆蛋白在夜间降低;血Ca往往在中午出现最低值。

故采血时间应在相同时间进行。

4采集时间

要求空腹的项目--住院病人在8:

00之前,门诊病人最好在9:

00以前,以空腹12小时为准;特殊项目请在相关部门预约。

常规项目和急诊项目原则上24小时均可进行。

5血液采集

5.1采血注意事项

严格按照无菌技术操作,无论医生、护士、检验人员除穿戴工作服外,还应戴一次性口罩,同时严格做好采血手的消毒,防止患者采血部位感染。

保证一人一针,杜绝交叉感染。

真空采血过程如有血液外溢和污染,立即使用过氧乙酸溶液或75%的酒精溶液消毒处理。

对所有的采血材料严格执行使用前再次检查,保证安全。

采血人员对所采集的标本做好登记工作,并签名。

样品采集完后,对所使用的材料做好无害化处置,保证环境和人员安全。

静脉采血时,止血带离抽血扎针部位上方约5cm距离,注意袖筒不要太紧,止血带压迫时间宜小于1分钟,若止血带结扎超过2分钟,大静脉血流受阻而使毛细血管内压上升,可有血管内液和组织液交流,能使相对分子质量小于5000的物质逸入组织液;随着压迫时间延长,局部组织发生缺氧而引起血液成分的变化较大,检查结果时出现不应有的增高和减低。

为保证检查结果的准确性不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采血。

防止溶血:

容器不清洁、不干燥;淤血时间过长;穿刺不顺利,组织损伤过多;抽血速度过快;血液注入容器时未取下针头或注入速度过快时产生大量泡沫;震荡过于剧烈等。

若用普通注射器采血后,未取下针头直接将血液注入真空管内,也易造成溶血。

5.2采集过程

收取检验申请单(医生、护士、检验人员)→审查合格(核对检验单上姓名、住院号、科别、床号、检验项目等是否填写清晰,能正确辨认)→检查真空管条码信息是否与申请单病人信息和要求的检验信息一致→按申请单上的病人姓名呼唤其姓名以再次确认病人→找好采血静脉并消毒→按照采血顺序采取静脉血→用棉签压迫伤口→充分混匀样品(在采血单上填上采血时间)→送至相关部门检测(由运送部或临床医护人员完成)。

5.3采集部位

通常选择手肘中央部分较粗的静脉血管,用食指触摸,是否为有弹性的血管(肌肉较无弹性),若血管不明显,请轻拍手肘中央部位(约5~10次),让血管较易浮现,若该部位不明显,可改用手背处静脉(请患者手轻握),轻拍手背中央部位(约5~10次),让血管较易浮现。

小儿采用股静脉采血或颈外静脉采血,但有危险性,以少用为宜。

5.4真空采血方法

确定穿刺部位后,先以碘酒消毒,以选定之静脉穿刺部位为中心点,由内往外以环状涂拭消毒,消毒直径约7.5cm,稍待干躁后进行第二次75%酒精消毒。

真空采血装置,设计备有软橡皮套管式止血装置,酒精消毒后,穿刺,回血后即将另一端的硬插管插入真空定量采血管内,血液足量后,拔出硬插管即止血,当插入另一支真空定量采血管时又可采血。

整个采血过程无血液溢出和污染,采血完成后,针头从静脉拔除前,先将最后一支试管退出持针器,再拔除针头。

针头拆卸,建议直接在针头撤卸器上进行;也可用镊子夹除丢入专用污染废弃桶内;在无镊子卸针的情况下,请将针头平放在桌上,以针就盖。

千万不可用手拿针盖而将针套入,避免针扎意外。

止血:

退针后请病人手指压住棉签,手伸直抬高于心脏,保持两分钟(如果是有出血倾向患者如紫癜,ITP,血液病等,请病人不要离开检验科,要压迫5~10分钟直到无血渗出为止)。

5.5真空管采血顺序

血标本采集时建议的真空管使用顺序如下:

⑴血液培养(分成人需氧瓶、儿童需氧瓶、厌氧瓶、分支杆菌瓶)(直立旋转混匀)。

⑵生化、免疫(红头)。

⑶凝血象(蓝头)(颠倒混匀8-10次)。

⑷血细胞分析、糖化血红蛋白(紫头)(颠倒混匀8-10次)。

⑸生化、免疫、血流变(绿头)(颠倒混匀8-10次),分离胶普通管(黄头)。

⑹血沉(黑头)(颠倒混匀8-10次)

6尿液采集

6.1临床根据检测的需要选择留尿的方式

⑴首次晨尿:

即留取清晨第一次尿,能真实的反映肾脏病情况。

⑵随机尿:

不为条件所限,适于门诊、急诊病人,但受多种因素的影响,有形成分的浓度较低。

⑶午后尿:

午餐后2h尿中尿胆原和糖含量高,适于这两种成分的检验,可提高阳性检出率。

⑷中段尿采集法:

是临床上最多采用的方法,女性病人先以肥皂水或1:

1000高锰酸钾水溶液冲洗外阴部及尿道口;男性病人应翻转包皮,用肥皂水或1:

1000苯托溴铵冲洗或消毒尿道口,再用灭菌纱布擦干,让病人排尿,弃去前段尿,收集中段尿10-20ml,盛于无菌容器内立即加盖送检

⑸12h尿:

头晚8时排空膀胱并弃去此次尿液,再收集至翌晨8时前的全部尿液,适用于Addis尿沉渣计数。

⑹24h尿:

适于代谢产物24h定量测定,如尿蛋白、糖、钠、钾、氯、钙、尿酸、17-羟皮质醇和17-酮皮质醇等。

应准确的收集24h尿液,采集方法:

早上8点到第二天早上8点,早上8时排空膀胱并弃去此次尿液,再收集,直到第二天早上8点将小便全部收集在容器中,并测尿量,从混匀尿液中采集100-200ml送检。

收集24h尿液根据检验目的加入适当防腐剂。

24h尿液沉渣还可用于找抗酸杆菌。

⑺特殊体位采集标本:

如分别采集直立或运动后尿标本与平卧8h后尿标本,对体位性蛋白尿、运动性血尿诊断有帮助。

⑻下午2点钟至4点钟留取尿标本:

适于尿胆原检查。

⑼清洁尿(中段尿、导尿、膀胱穿刺尿等):

适于细菌培养,应注意无菌操作。

6.2采集注意事项和要求

⑴应用清洁、有盖、干燥的一次性容器,防止日照与污染。

⑵采集尿液量:

尿常规与一般定性检查留取尿液约30-100ml。

⑶尿标本要新鲜,留取后立即送检。

放置2h以上尿中成分可发生变化,如红细胞、白细胞溶解等。

⑷尿标本要防止月经血、白带、精液、前列腺液、粪便、烟灰等异物混入。

为此应避免月经期验尿。

女性患者先要清洁外阴部,用0.1%苯托溴铵溶液侵过的棉球擦洗外阴部并消毒尿道口。

一般检查留取晨起第一次清洁中段尿,作细菌培养者应先做尿道口局部消毒处理并注意无菌操作。

⑸尿胆原等化学物质因光分解或氧化,需要避光。

7粪便采集

7.1患者准备

病人必须清楚标本采集前严格饮食控制、标本采集和运送是保证实验结果准确的前提的,应认真与医生合作。

免疫法实验前无需控制饮食,化学法实验前3天严格禁食动物性食品,根据病人的病情酌情禁食维生素C等还原性药物。

7.2标本采集

通常采取自然排出的粪便,无粪便排出而又必须检查时,可经肛门指诊或采便管拭子取标本,灌肠或服油类泻剂的粪便不适合做检验标本。

粪便应取新鲜标本,不得混有水、尿液和其它成分。

用勺子取新鲜粪便指头大小或2ml(稀便)放入便盒内,大便不正常的,如有脓血粘液时,应选择有脓血粘液部分。

不要用卫生纸或其他吸水的物质包大便送检。

婴儿不能用尿不湿上的大便。

7.3标本送检

大便标本采集后应立即送检,不超过1小时。

送检过程中需防止出现标本外溢。

7.4标本处理

粪便标本应及时检验(一般在采集后1小时内检查完毕)。

试验所使用的器具必须干净,防止试验出现假阳性。

标本容器为一次性使用,检验后标本应焚烧化。

7.5标本拒收

被容器吸干了水分的标本拒收;标本量过少的标本拒收;混入了尿液或其它成分的标本拒收;采集1小时后采送检的标本拒收。

8阴道分泌物标本采集

8.1患者准备

取阴道分泌物之前应避免性生活、阴道冲洗和上药。

8.2标本采集

采用无菌生理.盐水棉拭子自阴道后穹窿、子宫颈或阴道壁上多部位取材。

8.3标本运送

将标本置于消毒小瓶内,迅速送检。

如需检查滴虫,应注意保暖。

8.4标本处理

制备成生理盐水涂片以观察阴道分泌物。

若要求找到滴虫,收到标本后应迅速涂片镜检,如不能迅速镜检应将标本继续保温。

制成薄涂片做革兰氏染色寻找线索细胞。

8.5标本拒收

标本采集后未能及时送检,放置时间过长,未采取保温措施的标本。

9前列腺液标本采集

9.1患者准备

患者检查前3天应禁止性活动;检查前先排尿;如做细菌培养,应先清洗尿道口,用无菌试管收集前列腺液。

9.2标本采集

检查者右手食指涂润滑剂后置于肛门外慢慢插入,直至食指尽量插入直肠内。

摸准前列腺,用力适中、均匀,先从上向下按摩前列腺左右叶2~3次,后由中线向肛门按压2~3次,挤压会阴部尿道,前列腺液便从尿道口流出。

取样时应弃去第一滴液体,再用试管或玻片收集。

9.3标本运送

取样后立即送检,避免标本干涸。

9.4标本拒收

已干涸的标本不能进行镜检,拒收。

10脑脊液标本采集

10.1腰椎穿刺的适应症

(1)怀疑任何形式的脑炎或脑膜炎时;

(2)怀疑多发性硬化以及评价痴呆和神经系统病变时;

(3)疑有蛛网膜下腔出血时;

(4)评价炎性神经病和多发性神经根病时;

(5)怀疑脑占位性病变时;

(6)神经系统疾患需系统观察或需椎管内给药、造影和腰麻等。

10.2腰椎穿刺的主要禁忌症

(1)实施腰穿取脑脊液时,一定要考虑是否有颅内压升高,如果眼底检查发现视乳头水肿,一定要先做CT和MRI检查。

影像学检查如脑室大小正常且没有移位,后颅凹没有占位征象,方可腰穿取脑脊液,否则不能做腰穿。

(2)对休克、衰竭或濒危状态及穿刺部位皮肤有炎症者亦不宜作腰穿。

(3)凝血酶原时间延长、血小板计数低于50×109/L、使用肝素或任何原因导致的出血倾向,应该在凝血障碍纠正后方可腰穿。

(4)脊髓压迫症做腰穿时应该谨慎,因为腰穿可以加重脊髓压迫症状。

(5)开放性颅脑损伤或有脑脊液漏者。

10.3患者准备

患者应了解腰椎穿刺术的注意事项,放松心情,积极与医生合作。

10.4标本采集

脑脊液标本由临床医生进行腰椎穿刺采集,必要时可从小脑延脑池或侧脑池穿刺获得。

穿刺后应做压力测定,然后将脑脊液分别收集于3个无菌小瓶中,每瓶1~2ml即可,第1瓶做细菌学检查,第2瓶做化学或免疫学检查,第3瓶做细胞计数,顺序不宜颠倒。

对于要测定PH的,要求严格保持标本采集过程中的厌氧条件。

采集的脑脊液应尽量避免凝固和混入血液。

10.5标本运送

标本采集后应立即送检,不能超过1小时,以免影响检验结果。

11浆膜腔积液标本采集

11.1患者准备

尽量放松心情,积极与医生配合。

11.2标本采集

浆膜腔积液标本由临床医生行浆膜腔穿刺术获得,如胸腔穿刺术、腹腔穿刺术、心包腔穿刺术,穿刺术必须严格无菌操作。

采集标本量视检验目的而定。

积液分别收集于3个无菌小瓶中,第一瓶做细菌学检查,第2瓶做化学或免疫学检查,第3瓶做细胞计数,三瓶顺序不宜颠倒。

12临床血液检验标本的采集

12.1血液常规检查

12.1.1患者准备

采血前患者应避免激烈运动和劳动,一般要求休息15分钟后采血,冬季注意保暖,以保持血液循环畅通。

患者心情平静时方可采血。

尽量避免药物干扰,化疗患者要求在化疗前采集标本。

12.1.2标本采集

采血部位通常选择肘前静脉,幼儿可采用颈外静脉。

使用一次性真空采血管,紫头管(抗凝剂为EDTA-K2)。

抗凝血2ml。

12.1.3标本运送

血液标本应采集后立即送检,并尽快检查。

避免标本温度变化过大。

12.1.4标本处理与存储

未能及时检验的抗凝血标本在室温下保存,4小时内检测完毕。

一般WBC、RBC、PLT可稳定24小时,白细胞分类可稳定6~8小时,血红蛋白可稳定数日。

低温(4℃)保存可使血小板计数结果降低。

12.1.5标本拒收

检验申请单填写内容与血液标本标识内容不一致或不清楚者可拒收;标本量小于1ml者(婴幼儿、严重烧伤等特殊情况除外),可拒收;血液中有凝块,严重溶血、脂血者,拒收。

12.2网织红细胞

同血液常规检查的标本采集。

12.3红细胞沉降率

12.3.1患者准备

患者在安静状态下,采血前一周应尽量避免服用对检测有影响的药物;患者采血时宜采用坐位或卧位。

12.3.2标本采集

采血部位通常选择肘前静脉,幼儿可采用颈外静脉。

使用黑头管(抗凝剂为枸橼酸钠),采血量1.6ml。

12.3.3标本运送

采血后应尽快进行测定。

12.3.4标本处理与存储

要求标本应在采血后3小时内完成检测,且在18-25℃室温下进行,室温过高血沉加快,可按温度系数校正。

温度过低时血沉减慢,无法校正。

室温下标本放置时间不应超过3小时,置4℃不应超过6小时。

12.3.5标本拒收

标本量低于要求量、严重溶血、脂血、有凝块者拒收。

12.4骨髓细胞检查

12.4.1患者准备

患者骨髓穿刺前应避免剧烈运动,休息15分钟。

消除恐惧和疑虑。

12.4.2标本采集

成人一般取髂后、髂前上棘。

取材过程中如遇取材不佳或干抽,可换位取材。

必要时应多部位取材,以便全面了解骨髓造血情况。

术前应做好消毒处理,严格按照无菌操作规程进行操作。

术前给患者注射麻药做局部麻醉,穿刺后应压迫穿刺点一段时间,以免术后出血,再盖上消毒敷料。

骨髓液量不宜过多,一般不超过0.2ml,一般不需抗凝,若需要,应使用EDTA-K2。

12.4.3标本运送

骨髓标本采集后应迅速送检。

12.4.4标本处理与存储

骨髓标本送检后应迅速制片,涂片要新鲜染色,染色剂以瑞氏-姬姆萨混合染色为佳,固定和染色时间要比血片长。

12.4.5标本拒收

骨髓标本稀释、凝固拒收。

12.5血清铁、总铁结合力、血清铁蛋白、运铁蛋白

12.5.1患者准备

一般采血前24小时要素食,避免高脂食物。

12.5.2标本采集

标本采集以晨8时为宜,采集患者静脉血2ml,不抗凝或肝素抗凝。

12.5.3标本运送

标本采集后应立即送检。

12.5.4标本处理与存储

标本送检后应立即检测,4小时内完成。

如不能立即检测,应分离血清4℃冰箱保存,1周内进行检测。

12.5.5标本拒收

溶血标本应拒收。

12.6尿含铁血黄素检测

标本最好留取第一次晨尿,不能用铁制容器盛标本。

12.7血红蛋白电泳

12.7.1患者准备

一般采血前24小时要素食,避免高脂食物。

12.7.2标本采集

采集静脉血2ml,紫头抗凝管。

12.7.3标本运送

标本采集后应立即送检。

12.7.4标本处理与存储

标本制成血红蛋白液后,可在4℃冰箱保存1周。

-20℃冰冻可保存几个月,但应避免反复冻融,也可通入一氧化碳形成一氧化碳血红蛋白,冰冻后长期保存。

12.7.5标本拒收

标本抗凝失败或抗凝不完全,致使游离红细胞过少者,应予以拒收。

12.8凝血和抗凝血筛选试验

血浆凝血酶原时间(PT)、活化部分凝血活酶时间(APTT)、凝血酶时间(TT)和纤维蛋白原(FIB)等。

12.8.1患者准备

一般采血前24小时要素食,避免高脂食物。

情绪稳定,避免剧烈运动。

注意患者是否应用肝素、口服抗凝剂等对结果有影响的药物,是否有肝病。

12.8.2标本采集

用蓝头管采集静脉血2ml,抽血要顺利,且避免溶血。

12.8.3标本运送

标本采集后应立即送检。

12.8.4标本处理与存储

3000r/min离心10分钟,分离乏血小板血浆。

标本采集后应立即检测,室温下应在2小时内检测完毕。

12.8.5标本拒收

溶血、黄疸、脂血、标本量过多或过少、有凝块的标本拒收。

12.9血流变检测

12.9.1患者准备

采血前避免过度活动和高脂饮食,避免情绪激动。

12.9.2标本采集

早晨空腹采血,采血时止血带不宜扎得过紧,采血体位对结果有影响,立位高于坐位,坐位高于卧位。

分别用绿头管(标本量5ml)、黑头管(标本量1.6ml)、紫头管(标本量2ml)三支试管同时采集标本。

12.9.3标本运送

取血后应立即送检。

12.9.4标本处理与存储

取血后静置20分钟后进行试验。

最好在4小时内完成。

血样不能在0℃以下冰冻保存,室温条件下应在0.5~4小时内完成检测,4℃条件下,在12小时内完成。

12.9.5标本拒收

标本量少,有溶血、凝块的标本拒收。

13临床生化检验标本的采集

13.1常规生化项目

13.1.1患者准备

(1)避免剧烈运动:

剧烈肌肉运动明显影响体内代谢,引起血中某些成分浓度的改变,如乳酸、肌酸激酶、天门冬氨酸转移酶、乳酸脱氢酶、碱性磷酸酶、葡萄糖、等的升高,故一般主张抽血前24小时不做剧烈运动,清晨取血,住院病人可在起床前抽血,匆忙赶到门诊的人应至少休息15分钟后取血。

(2)注意合理饮食:

除了急诊或其它特殊原因外,一般主张在禁食12小时后空腹取血,延长空腹时间(饥饿)或餐后血液的化学成分都会变化。

如讥饿时血糖及蛋白质降低、胆红素升高;餐后血糖、血钾、碱性磷酸酶及甘油三酯通常升高,无机磷升高,血清可呈浑浊。

另外饮食量及质对检验结果也有影响,如高蛋白饮食可使血清尿素、血氨、尿酸升高;高脂肪饮食引起乳糜微粒血症,导致血清浑浊;饮水过多或过少可使血液稀释或浓缩。

血液中成分受饮食影响,变动幅度较大的成分有钾离子、葡萄糖、总胆固醇、甘油三酯、无机磷等。

(3)采血前避免饮酒:

采血前饮酒可使血乳酸、尿酸等迅速增加,连续饮酒可使天门冬氨酸转移酶、丙氨酸氨基转移酶、γ-谷氨酰基转移酶升高,而γ-谷氨酰基转移酶上升最明显。

长期饮酒者往往有甘油三酯血症,γ-谷氨酰基转移酶也会长期不正常。

(4)避免紧张与情绪激动,否则可以影响神经内分泌功能,影响呼吸,使乳酸等升高。

(5)药物的影响:

很多药物进入人体后可使某些检测项目结果增高或降低。

如咖啡因可使血糖和胆固醇增高;治疗冠心病的某些药物可使甘油三酯和乳酸脱氢酶减低;维生素C可使乳酸脱氢酶减低;血和尿中维生素C能影响测定过程中的化学反应;维生素B2可使尿呈现黄色;口腹避孕药可影响脂质代谢,可是转氨酶升高等。

故病人在检验前应尽可能停服对试验有干扰的药物。

(6)体位的影响:

体位(站立、坐位、卧位)改变可以引起某些检验指标的显著改变,故建议取血时以坐位5分钟后取血为宜。

13.1.2标本采集

采集标本的容器和必需的添加品:

(1)不需要抗凝剂的真空采血管(红头管)的项目:

TP、ALB、TBIL、DBIL、ALT、AST、ALP、r-GT、GLU、BUN、Cr、CK、LDH、α-HBDH、CK-MB、TBA、HBAIC、K、NA、CL、CA、P、MG、CO2、UA、CK、HBDH、AMY、TG、CHOL、HDL、LDL、APO-A、APO-B

(2)需加肝素抗凝的真空采血管(绿头管)的项目:

AMON。

采集标本的类型和量:

(1)血液:

一般为静脉血,非抗凝血作生化项目需4ml,抗凝血应视抗凝剂的量而定。

(2)尿液:

应清楚记录24小时尿量,混匀后取10ml送检,尿淀粉酶取随机尿。

静脉血标本采集时应注意的问题:

(1)一侧手臂输液时应从对侧手臂采血,禁止在输液同侧手臂采血,以免影响检测结果。

(2)压脉带使用时间应少于1分钟,以免引起血液淤滞,超成血管内溶血或血液某些成分的改变,特别是测定乳酸时不可使用压脉带,否则结果偏高。

(3)避免溶血,溶血会使血钾、胆红素以及一些酶(如LDH)等指标的结果出现明显偏差。

13.1.3标本运送

标本采集后应及时送检。

送检过程中应避免日光直接照射,且注意不要剧烈震荡。

13.1.4标本处理和存储

标本应及时分离血清,尽快检验。

由于血细胞的代谢、气体交换及物质转移使细胞内外多种成分发生变化,导致分析结果出现误差,如血氨、二氧化碳测定的标本放置时间过长,氨和二氧化碳会挥发,影响检测结果。

血液中的酶在室温下放置,活性会逐渐降低。

血液放置时间过长,葡萄糖会减低,血钾会升高。

实验室温度应保持在15℃~25℃,防止标本水分蒸发,标本浓缩。

如不能及时检测,可将血清于4℃冰箱放置2~3天,但大多数酶类不管在什么温度下保存,其活性都会有一定损失。

13.1.5标本拒收

展开阅读全文
相关资源
猜你喜欢
相关搜索
资源标签

当前位置:首页 > 农林牧渔

copyright@ 2008-2023 冰点文库 网站版权所有

经营许可证编号:鄂ICP备19020893号-2