细 胞 生 物 学 实验课程教案1资料Word格式.docx

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以无菌方法抽取鸡血注射器中抽取3.8%柠檬酸钠1ml抽取鸡静脉血液2ml，用生理盐水洗5次，每次2000r/min，离心5min，最后按压积红细胞体积用生理盐水配成2%红细胞液。

3.细胞的观察与讨论（50分钟）：

淋巴细胞、白细胞、中性粒细胞、碱性粒细胞和酸性粒细胞

4、实验小结（15分钟）：

总结实验过程中学生的操作是否规范；

实验是否成功，如果不成功，问题出在哪里；

哪些实验作得比较好。

提醒预习下节课实验内容，提问。

共150分钟。

实验作业

1.绘制各种不同类型的血细胞,并说明它们的主要作用？

2.任选20个红细胞，测量其直径，并计算出平均值.。

参考资料

（含参考文献、期刊、杂志等）

实验总结

对于涂片的厚度一定要掌握，不然太厚不方便观察细胞，对于各种白细胞的染色一定要把握好，适度的染色可容易的区分开五种白细胞，并进行大小的测量和绘图。

细胞生物学实验课程教案

（2）

细胞化学实验

熟悉细胞脂类的显示技术，了解其在细胞中的分布；

学习区别定位细胞DNA、RNA的显示方法

（1）苏木精为碱性染料染细胞核，苏丹红为偶氮脂溶性染料，可显示细胞中的脂类的分布及量；

（2）甲基绿与DNA双螺旋外侧的磷酸根基团结合力强，结合后阻止派洛宁从碱基之间插入。

甲基绿与DNA的结合产物为绿色。

派洛宁与RNA的结合力强，RNA结构较松散，派洛宁可以插入，从而中和磷酸基团，阻止甲基绿染色，派洛宁与RNA的结合物呈红色，根据颜色的部位可以判断DNA和RNA的定位并且判断两种核酸的相对含量。

水浴锅、冰冻切片机、载玻片等；

猪肝、花生子叶

1.脂类显示（65分钟）：

用猪肝切片和花生的超薄切片，学习掌握使用冰冻切片机的操作技术，获得理想的切片；

2.细胞中DNA和RNA的显示（70分钟）：

材料选用猪肝印片，学习如何制备肝印片的片子，而后进行固定、浸洗、染色等即可显示二者在细胞中的分布。

3、实验小结（15分钟）：

凝集素是一类含糖、并能与糖专一结合的蛋白质,被认为与糖的运输、储存物质的积累、细胞间的互作以及细胞分裂的调控有关。

细胞中脂类和核酸显示的原理是什么？

植物材料两种化学成分的显示结果都比较好，但是猪肝的效果较差，这可能与切片的厚度有很大的关系，猪肝组织柔软不像花生子叶好切。

细胞生物学实验课程教案（3）

细胞凝集反应

1.学习制备土豆凝集素

2.掌握细胞凝集反应的实验方法及细胞凝聚的原理。

3.观察凝集的现象

①细胞质膜外表面的一层黏性多糖物质构成的细胞全委会被在细胞间的联系和识别、细胞的生长分化、免疫反应及肿瘤发生等过程中发挥着重要作用。

　②动物细胞表面的糖蛋白、糖脂中的糖链伸向膜表面，它们是细胞识别、细胞免疫及细胞接触抑制现象的必要组分。

　　③凝集素是一类含糖的（少数例外）并能与糖专一性结合的蛋白质，它具有凝集细胞和刺激细胞分裂的作用。

凝集使细胞凝集是由于它与细胞表面的糖分子连接，在细胞间形成“桥”的结果。

　　④凝集素与糖分子结合有一定的专一性和结合价，并与细胞膜上受体的分布有关。

显微镜、粗天平、载玻片、滴管、离心管、离心机等

土豆块茎、鸡血细胞

1.凝集素粗提液制备（50分钟）：

2.鸡红细胞悬液制备（35分钟）：

3.细胞凝集反应现象的观察与讨论（50分钟）：

用滴管吸取土豆凝集素和2%红细胞液各一滴，置载玻片上，充分混匀，静置20min后于低倍显微镜下观察血球凝集现象。

本实验过程很简单，只需要将植物凝集素与红细胞混合后用低倍显微镜观察现象即可。

具体如下：

实验组

凝集素1滴

红细胞悬液1滴

对照组

PBS液1滴

1.细胞间凝集的原理是什么？

2.简图表示血细胞凝集原理。

1.为什么对照组有PBS液作对照呢？

没什么巧，因为凝集素中本身含PBS缓冲液，当含本身凝集素是不含PBS的，只是因为本实验中凝集素的提取时用到了PBS.

2.那么红细胞悬液是怎么制备的呢？

其实也不难，无菌抽取动物静脉血液，当然血液抽出来后肯定要先加抗凝剂了，然后再加生理盐水。

那么怎么从血液中将红细胞分离出来呢？

想想，血液中有血清、红细胞、白细胞和血小板，按道理来讲红细胞应该最重吧（有待查证），用离心机在2000r/min下离心5min，去掉上清液，得到的应该就是红细胞了，再加适量生理盐水洗涤几次后，加一定量是（按压积红细胞体积算）生理盐水即可配成相应浓度的红细胞悬液了。

除了土豆中有凝集素外，还有韭菜叶片也有。

凝集素使细胞凝集是因为它与细胞表面的糖分子连接,在细胞间形成“桥”的结果,加入与凝集素互补的糖可以抑制细胞发生凝集。

大多数凝集素存在于储藏器官中,作为一种氮源；

对某些植物而言,受到危害时,凝集素作为一种防御蛋白发挥作用。

细胞生物学实验课程教案（4）

细胞膜的渗透性

了解细胞膜的渗透性及各类物质进入细胞的速度。

细胞膜为一种半透膜，对物质的通透具有选择性。

当红细胞放入低渗溶液中时，细胞吸水膨胀而发生溶血。

当红细胞放入含不同溶质的等渗溶液中时，由于细胞膜对不同溶质的透性不同，细胞发生溶血的时间也会不同，故发生溶血现象时间长短可作为测量物质进入红细胞速度的一种指标。

离心机、移液枪、试管、试管架

鸡血

1.鸡血细胞悬液的制备：

一份鸡血+10份0.17mol/L氯化钠，形成一种不透明的红色液体，此即稀释的鸡血。

2.低渗溶液：

一支试管中，加入10ml蒸馏水+1ml稀释的鸡血，观察溶液颜色的变化？

3.鸡红细胞的渗透性观察：

在10种等渗溶液中观察细胞溶血现象及时间。

将观察到的现象列入下表，对实验结果进行比较和分析。

附表：

不同低渗溶液下的溶血现象。

试管编号

是否溶血

时间

结果分析

1.10ml氯化钠+1ml稀释羊血

2.10ml氯化铵+1ml稀释羊血

3.10ml醋酸铵+1ml稀释羊血

4.10ml硝酸钠+1ml稀释羊血

5.10ml草酸铵+1ml稀释羊血

6.10ml硫酸钠+1ml稀释羊血

7.10ml葡萄糖+1ml稀释羊血

8.10ml甘油+1ml稀释羊血

9.10ml乙醇+1ml稀释羊血

10.10ml丙酮+1ml稀释羊血

溶血时间及现象的观察比较困难，可采用离心辅助的方法来判别鸡血在哪些等渗液中最易溶血，哪些较慢，做一些定性的分析。

经过离心之后，若上清液无色，证明在这个时间段血细胞没发生溶血，若上清液略红，证明有溶血发生。

当然这个方法不很精确，但却快速、便于观察。

细胞生物学实验课程教案（5）

线粒体和液泡系的超活染色与观察

1观察动、植物活细胞内线粒体和液泡系的形态、数量及分布；

2掌握细胞超活染色技术及原理；

3学习一些细胞器的超活染色技术。

①活体染色：

应用无毒或毒性较小的染色剂真实地显示活细胞内某些细胞结构而又很少影响细胞生命活动的染色方法。

②詹纳斯绿B：

詹纳斯绿B能专一的对线粒体进行活体染色。

线粒体中细胞色素氧化酶使染料保持氧化状态，即有色状态，呈蓝绿色，而在周围的细胞质中染料被还原，成为无色状态

③中性红：

中性红对高尔基体、液泡系的染色具有专一性。

只将活细胞中的液泡系当成红色，细胞核与细胞质完全不着色（这可能与液泡系中某些蛋白质有关。

显微镜、恒温水浴锅、解剖盘、剪刀、镊子、双面刀片、解剖盘．载玻片、凹面载玻片、盖玻片、表面皿、吸管、牙签、吸水纸。

人口腔上皮细胞、洋葱、小麦种子或黄豆幼根根尖

1.人口腔粘膜上皮细胞线粒体的超活染色与观察

清洁载玻片放在37℃恒温水浴锅的金属板上

↓

滴2滴1/5000詹纳斯绿B染液

↓

用牙签口腔颊粘膜处稍用力刮取上皮细胞

刮下的粘液状物放大载玻片的染液滴中

染色10-l5min（注意不可使染液干燥，必要时可再加滴染液）

盖上盖玻片,显微镜下观察

2.植物细胞液泡系的超活染色与观察

取小麦种子发芽的根尖用刀片纵切根尖放入中性红染液滴中，染色5～10min。

吸去染液，滴一滴Ringer液盖上盖玻片进行镜检（镊子轻轻地下压盖玻片，使根尖压扁，利于观察）

实验结果：

在高倍镜下，先观察根尖部分的生长点的细胞，可见细胞质中散在很多大小不等的染成玫瑰红色的圆形小泡，这是初生的幼小液泡。

然后，由生长点向延长区观察，在一些已分化长大的细胞内，液泡的染色较浅，体积增大，数目变少。

在成熟区细胞中，一般只有一个淡红色的巨大液泡，占据细胞的绝大部分，将细胞核挤到细胞一侧贴近细胞壁处。

（1）绘口腔上皮细胞示线粒体的形态与分布

（2）绘小麦根尖细胞示液泡的形态与分布

人口腔上皮细胞的线粒体的超活染色与观察效果很好，但是洋葱表皮细胞和小麦根尖细胞的染色效果不是很理想。

细胞生物学实验课程教案（6）

叶绿体的分离与荧光观察

1.通过植物细胞叶绿体的分离，了解细胞器分离的一般原理和方法；

2.观察叶绿体的自发荧光和次生荧光，并熟悉荧光显微镜的使用方法。

组织匀浆后悬浮在等渗介质中进行差速离心，是分离细胞器的常用方法。

一个颗粒在离心场中的沉降速率取决于颗粒的大小、形状和密度，也同离心力以及悬浮介质的粘度有关。

在一给定的离心场中，同一时间内，密度和大小不同的颗粒其沉降速率不同。

依次增加离心力和离心时间，就能够使非均一悬浮液中的颗粒按其大小、密度先后分批沉降在离心管底部，分批收集即可获得各种亚细胞组分。

普通离心机、组织捣碎机、粗天平、荧光显微镜。

烧杯2个,250ml量筒1个,滴管20支,10ml刻度离心管20支,试管架5个，纱布若干，无荧光载片和盖片各4片。

实验试剂

0.35mol/L氯化钠溶液，0.01%吖啶橙（acridineorange）。

新鲜菠菜

（一）叶绿体的分离与观察

1.选取新鲜的嫩菠菜叶，洗净擦干后去除叶梗脉，称30g于150ml0.35mol/LNaCl溶液中，装入组织捣碎机。

2.利用组织捣碎机低速（5000r/min）匀桨3-5min。

3.将匀浆用6层纱布过滤于500ml烧杯中。

4.取滤液4ml在1000r/min下离心2min，弃去沉淀。

5.将上清液在3000r/min下离心5min。

弃去上清液，沉淀即是叶绿体（混有部分细胞核）。

6.将沉淀用0.35mol/LNaCl溶液悬浮。

7.取叶绿体悬液一滴滴于载玻片上，加盖玻片后即可在显微镜下观察。

①在普通光镜下观察。

②在荧光显微镜下观察。

③取叶绿体悬液一滴滴在无荧光载片上，再滴加一滴0.01%丫啶橙荧光染料，在荧光显微镜下观察。

（二）实验结果：

①普通光镜下，可看到叶绿体为绿色橄榄形，在高倍镜下可看到叶绿体内部含有较深的绿色小颗粒，即基粒。

②在选用B（blue）激发滤片的条件下，叶绿体发出火红色荧光。

③加入丫啶橙后，叶绿体可发出橘红色荧光，其中混有的细胞核则发绿色荧光。

1.在倒置显微镜相连的电脑软件支配下，测量一下叶绿体的长轴和短轴，分别测量5~10个叶绿体，求其平均值。

2.在分离叶绿体时应注意些什么问题？

实验结果非常理想，提醒学生们在使用荧光显微镜时应注意保护眼睛，避免紫外线的伤害。

细胞生物学实验课程教案（7）

细胞器的分离与观察

细胞由细胞膜、细胞核和细胞质组成，细胞质中含有若干细胞器和细胞骨架等，这些也称作亚细胞组分。

对于细胞的结构和功能的研究，是细胞生物学的基本课题，其重要的研究手段之一是分离纯的亚细胞组分，观察它们的结构或进行生化分析。

分离亚细胞组分的方法主要有差速离心和密度梯度离心。

差速离心（differentialcentrifugation）

在密度均一的介质中由低速到高速逐级离心，用于分离不同大小的细胞和细胞器。

速度逐渐提高，样品按大小先后沉淀在差速离心中细胞器沉降的顺序依次为：

核、线粒体、溶酶体与过氧化物酶体、内质网与高基体、最后为核蛋白体。

由于各种细胞器在大小和密度上相互重叠，而且某些慢沉降颗粒常常被快沉降颗粒裹到沉淀块中，一般重复2～3次效果会好一些。

差速离心只用于分离密度和大小悬殊的细胞，更多用于分离细胞器。

对于精细的分离，则是密度梯度离心效果更好。

密度梯度离心（densitygradientcentrifugation）

用一定的介质在离心管内形成一连续或不连续的密度梯度，将细胞混悬液或匀浆置于介质的顶部，通过重力或离心力场的作用使细胞分层、分离。

这类分离又可分为速度沉降和等密度沉降平衡两种。

0.35mol/L氯化钠溶液

植物原生质体的分离与培养

6

原生质体是除去细胞壁的裸露细胞。

在适宜的条件下，分离的原生质体能够再生细胞壁，进行细胞分裂，并再生完整植株。

通过实验，掌握原生质体分离和培养的基本方法，并对培养结果进行观察和分析。

植物原生质体是除去细胞壁后为原生质所包围的“裸露细胞”，是开展基础研究的理想材料。

其中酶解法分离原生质体是一个常用的技术，其原理是植物细胞壁主要由纤维素、半纤维素和果胶质组成，因而使用纤维素酶、半纤维素酶和果胶酶能降解细胞壁成分，除去细胞壁而使原生质体释放出来。

原生质体分离纯化或融合后，在适当的培养基上应用合适的培养方法，能够再生细胞壁，并启动细胞持续分裂，直至形成细胞团，长成愈伤组织或胚状体，再分化发育成苗。

其中，选择合适的培养基及培养方法是原生质体培养中最基础也是最关键的环节。

三角瓶、离心管、烧杯、200目不锈钢滤网、解剖刀、长、短镊子、培养皿、滤纸、0.2μm滤膜、滤器、培养瓶（注：

以上用品要进行高压灭菌）、台式离心机、高压灭菌锅、倒置显微镜、超静工作台

烟草幼苗的叶片、新鲜菠菜的叶

1、实验原理的讲解；

（15分钟）

2、液体培养基的配制；

（实验前由教师完成）

3、酶液的制备：

（20分钟）

1％纤维素酶、1％果胶酶、0.6mol/L甘露醇、0.1%MES、0.05mol/LCaCl2·

2H2O、pH6.8—7.0

3、植物原生质体的分离和培养：

（课内完成，150分钟）

取充分展开的嫩叶，用自来水冲洗干净；

将叶片在0.1%升汞溶液中浸泡灭菌10min，然后用无菌蒸馏水漂洗5次；

用镊子撕去叶的下表皮，然后将叶放有酶液的培养皿或带盖三角瓶，每10ml酶液放2g叶片；

在25～28℃黑暗条件下，酶解2～3h,用200目网过滤除去未完全消化的残渣。

在1000rpm条件下离心5分钟，弃上清。

加入3～4ml0.2mol/LCaCl2·

2H2O洗液，用注射器向离心管底部缓缓注入20％蔗糖溶液6ml，在1000rpm条件下离心5—10分钟，由于密度梯度离心的作用，生活力强状态好的原生质体漂浮在20％的蔗糖与0.2mol/LCaCl2·

2H2O之间，破碎的细胞残渣沉入管底。

用200μl移液器轻轻将状态好的原生质体吸出（注意尽可能不要吸入下层的蔗糖溶液），放入另一干净的离心管中．加4ml0.2mol/LCaCl2·

2H2O悬浮，1000rpm离心2～5分钟，弃上清．

将收集的原生质体悬浮在适量的DPD培养基中，用血球计数板调整原生质体密度为5×

104/ml（请参考细胞计数）之间。

用带皮头的移液管将原生质体悬液分装在培养皿中，每皿放5ml。

用石蜡膜带封口。

置26℃左右条件下进行暗培养。

4、培养结果的观察（活力检查，细胞壁再生的观察，细胞分裂的观察）。

（在课外由教师指导学生进行）

5、实验小结：

总结实验过程中学生的操作是否规范。

（10分钟）

共195分钟

教学重点、难点

重点：

①无菌操作；

②原生质体的分离和培养。

难点：

酶解去壁，原生质体培养方法的选择

实验的意义：

植物原生质体融合和培养在理论和实践上都有很大的意义，在植物遗传工程和育种研究上具有广阔的应用前景。

它是植物同源、异源多倍体获得的途径之一，它不仅能克服远缘杂交有性不亲和障碍，也可克眼传统的通过有性杂交诱导多倍体植株的麻烦，最终将野生种的远缘基因导入栽培种中，原生质体融合技术可望成为作物改良的有力工具之一。

植物原生质体培养方法起源于植物单细胞的培养方法。

1954年，植物单细胞培养才获得成功。

Mllir培养的万寿菊及烟草悬浮细胞植入到长有愈伤组织的培养基上得到了它们的单细胞克隆，并建立了看护培养的方法；

1960年Jones等建立了微室培养法。

同年，Cocking应用酶法分离原生质获得成功，从而在实验条件下很容易获得大量的原生质体。

随着多种适用于原生质体分离的商品酶的出现，原生质体的培养方法也得到了不断地改进，现在常用的原生质体培养方法有：

液体浅层培养法、双层培养法、琼脂糖包埋法、琼脂岛培养法以及使用条件培养基或饲喂培养等。

1．酶解液及原生质体起始培养基中，为何要保持较高渗透压？

2.如何判断分离原生质体的活力和新壁再生？

将原生质体培养分化过程进行显微摄影，并分析结果。

以植物根、茎、

叶、叶柄作为原生质体的分离材料,经过分离收集在一定条件下才能培

养获得完整的原生质体,原生质体培养基的渗透压应与酶液的渗透压相等.

细胞生物学实验课程教案（8）

动物血细胞的电融合技术

动物的游离细胞以及植物成微生物去壁后的原