沙门氏菌检测的基准方法065718.docx
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沙门氏菌检测的基准方法065718
沙门氏菌检测的基准方法
内容
1范围
2参考标准
3定义
4原理
4.1概要
4.2前增菌——非选择性液体培养基
4.3增菌——选择性液体培养基
4.4划平板和鉴定
4.5确认
5培养基、试剂和血清
5.1概要
5.2培养基和试剂
5.3血清
6设备和玻璃器皿
7采样
8检验样品的制备
9程序
9.1试验样品和原始悬浮液
9.2非选择性前增菌
9.3选择性增菌
9.4划平板和鉴定
9.5确认
10结果表示
11检验报告
12质量保证附录A（标准化）程序图表
附录B（标准化）培养基和试剂的成份及准备附录C（非标准化）实验室间试验结果参考书目
、尸、-
前言
ISO（国际标准化组织）是国际标准化团体的全世界同盟。
通常由ISO技术委员会来执行国际标准的制订工作（ISO成员体）。
通常由ISO技术委员会来完成国际标准的准备工作。
在委员会中，若对建立的技术委员会有兴趣的话，每个成员体有权作为代表。
国际组织、政府或非政府组织，通过ISO联系，也可以参加这项工作。
在所有电工标准方面，ISO与国际电工委员会（IEC）紧密合作。
国际标准按照ISO/IEC指南第三章所列的规则草拟。
技术委员会的主要任务是准备国际标准。
被技术委员会采用的国际标准草案以投票方式在成员体内运行。
至少要75%成员体的投票赞成，才能作为一个国际标准发布。
要引起注意的可能性是:
本国际标准的一些要素可能是专利权主体。
ISO不应承担鉴定部分或全部的这种专利权。
ISO6579是由食品ISO/TC34技术委员会、微生物SC9分委员会所准备的。
第四版删除或更换了第三版（ISO6579:
1993）,并已作了技术性修订。
附录A和附录B形成了本国际标准的标准化部分。
附录C仅为资料。
介绍
因为有大量的不同种类的食品和饲料产品，本基准方法可能对某些产品并不完全适用,而另一些产品可能得用到其他方法。
既然这样，如果为论证技术上的原因而绝对需要时，那么就可使用这些产品指定的不同方法。
不过，应尽可能地使用本基准方法。
在下一次审查这个国际标准时，我们会考虑所有有用关于这些指标所涉及的范围内以及个别产品不遵照这些指标的原因的信息。
（产品的）检测方法无法在短时间内达到统一,而且,对于某些产品,可能已经有与本基准方法不符的国际标准/或国家标准存在。
但是我们希望,在以后审查这些标准时能进行修改,使其同本国际标准保持一致,以保证除了因技术原因确实需要外不会发生背离本基准方法的情况.
微生物学——检测沙门氏菌方法的通用指南
警告——为了保护实验室工作人员的身体健康，在适当装备的实验室、在熟练的微生物学家的控制下检测沙门氏菌、特别是伤寒沙门氏菌、副伤寒沙门氏菌，这是非常关键的。
另外最要关注的是所有培养物的处置。
1范围
本国际标准详述了沙门氏菌的基准方法，包括伤寒沙门氏菌和副伤寒沙门氏
菌。
在绪论中受讨论的局限性，本国际标准适用于
——供人类消费或动物饲养所使用的产品。
——在食物生产和处理范围内的环境样品。
警告——本方法并不包括所有的伤寒沙门氏菌和副伤寒沙门氏菌。
2标准的参考资料
通过本文中的参考目录，下列标准化文件包含组成本国际标规定的条款。
对后来更正或修订的陈旧参考资料，这些条款并不适用。
然而，鼓励那些基于赞同本国际标准的成员，去调查下面提到的大多数新版标准化文件应用的可能性。
对更新的参考资料，最新版的标准化文件作了参考应用。
ISO和IEC的成员保持对现行有效国际标准的注册。
ISO6887-1，食品和动物饲料的微生物学一一微生物检验中测试样品、原始
悬浮液及十倍稀释液的制备——第一章：
原始悬浮液和十倍稀释液制备的通用规则
ISO7218：
1996，食品和动物饲料的微生物学——微生物检验的通用规则
ISO8261，牛奶及奶制品——微生物检验中测试样品、原始悬浮液及十倍稀释液制备的通用指南
3术语和定义
应用下列定义来表达本国际标准的用途。
3.1沙门氏菌：
在选择性培养基上形成典型或少典型的菌落，当依照本国际标准进行试验时，它们表现出特有的生化反应和血清学特征的微生物。
3.2沙门氏菌检测：
当依照本国际标准进行试验时，在一定重量或体积的产品中，测定这些沙门氏菌的存在与否。
4原理
4.1概要沙门氏菌检测需四个连续阶段（也可以见附录A）
注沙门氏菌可能少量存在，并经常伴随着相当数量的其它肠杆菌属或其它菌属。
因此，选择性增菌是必需的；此外，为尽可能地检测到受伤沙门氏菌，经常需要进行前增菌。
4.2前增菌——非选择性液体培养基
将试验部分接种于缓冲蛋白胨水，在37C±仁C培养18h±2h。
对于某些食品，则需利用其它的前增菌程序，见9.1.2。
数量比较庞大时，在接种测试样品前应将缓冲蛋白胨水加热到37C±1C。
4.3增菌——选择性液体培养基
将4.2得到的培养物接种到RVS肉汤和MKTTr肉汤。
RVS肉汤在41.5C±1C孵育24h±3h,MKTTr肉汤在37C±1C孵育24h±3h
4.4划平板和鉴别
从4.3中获得的培养物接种于两种选择性固体培养基上。
――木糖赖氨酸脱氧胆盐琼脂（XLD琼脂）
――对XLD琼脂的任何其它补充性的选择性培养基，特别是适合于分离乳糖阳性的沙门氏菌、伤寒沙门氏菌和副伤寒沙门氏菌的培养基，实验室可以选择使用。
XLD琼脂在37C±「C孵育，在24h±3h后检查结果。
第二种选择性琼脂按照厂家说明书进行孵育。
注作为资料，亮绿琼脂、亚硫酸铋琼脂等，可用作第二种平板划线培养基。
4.5确认
挑选可疑沙门氏菌的菌落进行次培养，再按4.4所描述的划线分离，通过适当的生化试验和血清学试验加以证实。
5培养基、试剂和血清
5.1概要供常规实验室使用，见ISO7218。
5.2培养基和试剂
注由于培养基和试剂的数量庞大，为了表述清晰，我们认为将它们的组成和配制在附录B中列出更适当。
5.2.1非选择性前增菌液：
缓冲蛋白胨水
见B.1
522第一种选择性增菌液：
RVS肉汤
见B.2
5.2.3第二种选择性增菌液：
MKTTr肉汤
见B.3
5.2.4固体选择性平板培养基
5.2.4.1第一种培养基：
木糖赖氨酸去氧胆酸盐琼脂（XLD琼脂）
见B.4
5.2.4.2第二种培养基
第二种培养基的选择是留给检测实验室自定。
在它的准备使用时应准备按厂家说明书准确执行。
5.2.5营养琼脂见B.5
5.2.6三糖/铁琼脂（TSI琼脂）
见B.6
5.2.7尿素琼脂（Christensen）
见B.7
5.2.8L-赖氨酸脱羧酶培养基
见B.8
5.2.9B-半乳糖苷酶检测试剂（或依照厂商说明书使用的比色盘）
见B.9
5.2.10V-P反应试剂
见B.10
5.2.11吲哚反应试剂
见B.11
5.2.11.1半固体营养琼脂
见B.12
5.2.13生理盐水溶液
见B.13
5.3血清
含有一种或多种0抗原的多价血清型可由商品化获得，也就是包含一个或更多个0群抗血清（称单价或多价抗0血清），抗Vi血清和含有一个或多个H因子的抗血清（称单价或多价抗菌素H血清）。
应确保所用的抗血清足以检测所有的沙门氏菌血清型。
6设备和玻璃器皿
如果操作规范，对于可重复使用的玻璃器皿，重复使用是可以接受的。
通常或特殊情况下微生物实验室设备（见IS07218）如下：
6.1干灭菌（烘箱）或湿灭菌（高压灭菌器）设备
见IS07218
6.2干燥柜或烘箱，通过对流通风，能在37C±「C和55C±1C之间调节温度。
6.3培养箱，能调节温度至35C±1C或37C±1C。
6.4水浴，能调节温度至41.5C±1C,或孵育，能调节温度至41.5C±1C。
6.5水浴，能在44C-47C间调节温度。
6.6水浴，能调节温度至37C±1C。
由于沙门氏菌的低传染性，推荐使用含有抗菌剂的水浴锅（6.4、6.5和6.6）。
6.7灭菌环，直径约为3mn或10卩I的灭菌吸管。
6.8pH计，要求在20C-25C时精确校准到土0.1单位。
6.9适当容量的试管或烧瓶
可以使用带无毒金属或塑料螺旋帽的试管或烧瓶
6.10分别以0.5ml和0.1mI间隔标示，容量为10ml和1ml的刻度吸管或自动吸管。
6.11小规格（直径为90mm-100n）和/或大规格（直径为140mrh的皮氏培养皿。
7制样
实验室收到具有代表性的，且在运输或贮存过程中没有损坏或改变的样品是非常重要的。
制样不是本国际标准指定方法的一部分。
可参见处理相关产品的特定国际标准。
如果没有特定国际标准，可推荐这一方面已被公认的相关部分。
8测试样品的制备
根据处理相关产品的特定国际标准来制备测试样品。
如果没有特定国际标准，可推荐这一方面已被公认的相关部分。
9程序（见图附录A）
9.1测试样品和原始悬浮液
9.1.1概要
特定的国际标准处理相关的产品，见IS06887-1。
牛奶及奶制品见ISO8261。
准备原始悬浮液，通常用5.2.1和4.2（缓冲蛋白胨水）指定的前增菌培养基作为稀释液。
如果指定测试样品的重量超过25g,则需用一定量的前增菌液做约1:
10稀释。
为减少检测工作量，当检测指定食品中超过25g样品时，或有证据表明混合物（将测试样品堆聚）不会影响到特殊食品的检测结果时,则样品可以混合测定。
例如，如果要测定10份25g的样品，则各取10份样品混合形成一个250g混合测试样品，加入2250ml前增菌肉汤。
另外，还可从10份单独测试样品（931）的前增菌液中取0.1ml（10mlRVS肉汤）和1ml（10mlMKTTr肉汤）混合加入到100ml选择性增菌液中进行增菌培养。
9.1.2某些产品原始悬浮液的特殊制备
注下列特殊的制备仅涉及沙门氏菌的情况。
在ISO6887-2、ISO6887-3、ISO
6887-4和ISO8261中描述了适用于其它病原微生物检测的特殊制备。
9.2非选择性前增菌液
将原始悬浮液（9.1）于37C±1C孵育18h±2h。
9.3选择性增菌液
9.3.1将9.2获得的培养物0.1ml接种到含有10mlRVS肉汤（5.2.2）的试管中；另取9.2获得的培养液1ml接种到含有10mlMKTTr肉汤（5.2.3）试管中。
9.3.2接种的RVS肉汤（9.3.1）于41.5C±1C孵育24h±3h;接种的MKTTn肉汤于37C±1C孵育24h±3h。
引起注意的是不得超过最高允许的孵育温度
（42.5C）
9.4划线和鉴定
9.4.1在孵育24h±2h后，取RVS肉汤（9.3.2）培养物一环（6.7）接种于含有第一种选择性平板培养基（XLD平板，见5.2.4.1）的大规格皮氏培养皿表面，以便获得好的单个菌落。
若缺少大的培养皿，则可采用两个小的培养皿，用相同的接种环一个接着一个地划平板。
用消毒过的接种环和皮氏培养皿象上面一样按相同的步骤接种于第二种选择性平板培养基（5.2.4.2）。
9.4.2在孵育24h±3h后，用MKTTr肉汤（9.3.2）培养物，重复9.4.1描述的步骤接种于两种选择性平板培养基上。
9.4.3倒置培养皿（9.4.1和9.4.2）使底部在最上面，将第一种选择性培养基（5.2.1）放在设定为37C的培养箱内。
第二种选择性培养基（5.2.4）则按照
生产厂家的说明书执行。
9.4.4在孵育24h±3h后，检查平板（9.4.3）上存在的沙门氏菌的典型菌落或可能是沙门氏菌非典型菌落（见注）。
在培养皿的底部标示它们的位置。
在XLD平板生长的沙门氏菌典型菌落是中心一个黑点，周围由于指示剂颜色的改
变而出现淡红色的轻微透明带。
注H2S阴性的变种沙门氏菌在XLD平板上长成粉红色菌落，中间是暗红色。
在适当的温度下培养第二种选择性平板培养基，经过适当的时间，通过它们的特征，检查并核对被认为可疑沙门氏菌菌落的存在。
9.5确认
9.5.1概要
如果显示是可靠的，那么，可以使用商业化的可供沙门氏菌生化试验用的鉴别试剂盒。
鉴别试剂盒的使用关系到菌落的生化确认。
这些试剂盒应在生产厂商的说明书指导下使用。
注辨认沙门氏菌菌落，在很大程度上依靠经验，它们外表各有不同，不仅是种与种之间，每批培养基之间也有不同。
9.5.2确认菌落的选择为了确认，从每个选择性培养基的第个培养皿上挑取至少一个被认为典型的中可疑的菌落，如果第一种选择培养基为阴性，则需挑选4个菌落以上。
在流行病学研究的情况下，建议至少有五个菌落需被鉴别。
如果一个培养皿上少于五个典型的或可疑的菌落，则取所有典型的或可疑的菌落做确认。
用一种便于好的单个菌落形成的方式在预先干燥的营养琼脂平板表面上划
经挑选的菌落。
将接种的平板（943）在37C±1C孵育24h±3h。
用纯培养物进行生化试验和血清学确认。
9.5.3生化确认
9.5.3.1概要
用接种针，将9.5.2所选菌落的每个培养物接种于9.5.3.2至9.5.3.7指定培养基。
9.5.3.2TSI琼脂（（5.2.6）
先在TSL琼脂斜面上划线，再于底层穿刺。
在37C±1C孵育24h±3h。
在培养基上颜色变化的解释如下：
a）底部
——黄色葡萄糖阳性（葡萄糖被利用）
——红色或未变葡萄糖阴性（葡萄糖未被利用）
——黑色硫化氢形成
——气泡或裂缝葡萄糖产气
b）斜面
——黄色乳糖和/或蔗糖阳性（乳糖和/或蔗糖被利用）
——红色或不变色乳糖和/或蔗糖阴性（乳糖和蔗糖均不被利用）
典型的沙门氏菌培养物显示碱性（红色）斜面和酸性（黄色）底部，伴随着产气（气泡）和（约90%情况下）硫化氢产生（琼脂变黑）（9.5.3.8）。
当分离到乳糖阳性的沙门氏菌时，TSI的斜面是黄色的。
因此，沙门氏菌培养物的初步确认并不能仅仅根据TSI琼脂试验的结果。
9.5.3.3尿素琼脂（5.2.7）
在琼脂斜面上划线。
在37C±1C孵育24h±3h，间隔一定时间检查。
如果反应是阳性，尿素裂解释放氨，其颜色由酚红变成玫瑰红，最后变成深樱红色。
反应通常在2h-4h后可见。
9.5.3.4L-赖氨酸脱羧酶培养基（5.2.8）
接种于液体培养基表面以下，在37C±1C孵育24h±3h。
培养后出现混浊及出现紫色表明为阳性反应。
黄色表明阴性反应。
9.535B-牛乳糖试验
取满环可疑菌落放于含有0.25ml生理盐水的试管中。
加1滴甲笨并摇匀。
把试管放入37C水浴（6.6）,保持几分钟（约5分钟）。
加0.25ml检测B-牛乳糖的试剂，混匀。
再将试管放入37C水浴，保持24h±3h,间隔一定时间检查试管。
黄色表明为阳性反应。
反应通常在20分钟后可见。
如果用准备好的纸片（529）,则按照生产厂商的说明书操作。
9.536V-P反应培养基
取满环可疑菌落放于含有3mlVP培养基的灭菌试管中。
在37°C±「C孵育24h±3h。
孵育后，加入2滴肌氨酸溶液，3滴1-萘酚-乙醇液，随后加入2滴氢氧化钾溶液；每种试剂加完后要摇匀。
15分钟内颜色由粉红变为鲜红表明阳性反应。
9.5.3.7吲哚反应培养基
将可疑菌落接种于含有5ml的胰蛋白胨/色氨酸培养基的试管中。
在37C±1C孵育24h±3h。
孵育后，加1mlKovacs试剂。
出现红色环表明阳性反应。
黄褐色环表明阴性反应。
9.5.3.8生化试验的解释
常见沙门氏菌出现的反应结果见表1。
9.5.4血清学确认和血清型
9.5.4.1概要
在消除自凝现象后，用适当的血清通过玻片凝集试验对纯菌落（9.5.2）检测沙
门氏菌0抗原、Vi抗原和H抗原的存在。
如果与以下描述有差异的话，则按照产品说明书使用抗血清。
9.5.4.2自凝现象的消除
放一滴生理盐水（5.2.13）于仔细清洁过的玻片上。
用接种环挑取部分被测菌落并将水滴打散，以获得均一混浊的悬浮液。
注将部分被测菌在一滴水打散，然后用一滴生理盐水（5.2.13）与它混匀，这
也是可能的。
轻轻摇动玻片30s-60s。
在暗背景下观察结果，用放大镜更好。
如果细菌凝集成或多或少的明显块状，则可认为是自凝集，那么按照下列方法进
行沙门氏菌的抗原测定是不可行的。
9.5.4.3O-抗原测定
用一个无自凝集的纯菌落，用一滴抗O血清（5.3）代替生理盐水（5.2.13），按
9.5.4.2步骤操作。
如果出现凝集，则认为该反应为阳性。
用多价和单位血清接连凝集。
9.5.4.4Vi-抗原测定
按9.5.4.2步骤操作，但用一滴抗Vi血清代替生理盐水。
如果出现凝集，则认为该反应为阳性。
试验a
（9.5.3.2-9.5.7）
沙门氏菌属
伤寒沙门氏菌
A型副伤寒沙门氏菌
B型副伤寒沙门氏菌
C型副伤寒沙门氏菌
其它菌属
反应
%
反应
%b
反应
%
反应
%c
反应
%b
TSI葡萄糖产酸
+
100
+
100
+
+
+
100
TSI葡萄糖产气
d
0
+
100
+
+
+
92
TSI乳糖产酸
-
2
-
100
-
-
-
1
TSI庶糖产酸
-
0
-
0
-
-
-
1
TSI硫化氢产生
+
97
-
10
+
+
+
92
尿素水解
-
0
-
0
-
-
-
1
赖氨酸脱羧酶
+
98
-
0
+
+
+
95
3-牛乳糖反应
-
0
-
0
-
-
-
2e
V-P反应
-
0
-
0
-
-
-
0
吲哚反应
-
0
-
0
-
-
-
1
a来源于参考资料[5]
b这些百分率表明并不是所有分离到的沙门氏菌血清型都会显示岀+或-的反应结果。
在食物中毒不同部位
间或食物中毒里面所分离岀的沙门氏菌血清型，其百分率是可以变化的。
c这些百分率不能从现有的文献中获得。
d伤寒沙门氏菌不产气。
e亚利桑那亚型肠炎沙门氏菌为乳糖阳性或阴性反应，但通常3-牛乳糖为阳性反应。
为便于这些菌属的
研究，执行补充试验可能很有用处。
表1生化试验的解释
9.545H-抗原测定
将纯的无自凝集的菌落接种于半固体营养琼脂。
在37C±「C孵育24h±3h。
用此培养物来检测H-抗原，按9.5.4.2步骤操作，但用一滴抗H血清代替生理盐水。
如果出现凝集，则认为该反应为阳性。
9.5.5生化和血清学反应的解释
表2给出的是所用菌落（9.5.2）完成确认试验（9.5.3和9.5.4）的解释。
表2—确认试验的解释
生化反应
自凝集
血清学反应
解释
典型的
无
O-，Vi-或H-抗原阳性
考虑是沙门氏菌
典型的
无
所有反应为阴性
典型的
有
未做（见9.5.4.2）
可能是沙门氏菌
不典型反应
无/有
O-，Vi-或H-抗原阳性
不典型反应
无/有
所有反应为阴性
排除沙门氏菌
9.5.6最后确认
被考虑为沙门氏菌，或可能是沙门氏菌（见表2）的菌落，应送公认的沙门氏菌参比中心做最后的血清型确认。
送确认时应同时附上关于此菌的所有尽可能多的信息，以及是一次爆发流行还是
在食物中。
10结果表达
与解释的结果相一致，揭示xg或xml测试样品中是否存在沙门氏菌。
11测试报告
测试报告应详细说明：
――制样方法，如果知道的话；
――试验过程中任何增菌液或孵育条件的偏离；
――所有非本国际标准指定的操作条件，或者被认为可选择的、和可能影响结果的任何事件的细节；
――得到的结果；
测试报告也应该声明得到的阳性结果是仅用了划线培养基（524）而不是本国
际标准指定的方法。
12质量保证
为检查实验室用本国际标准描述的方法和培养基来检测沙门氏菌的能力，提出参
考样品加入含前增菌液的质控瓶中。
对质控瓶的检测过程与测试样品培养相一致。
附录A
（标准化）
检测程序图
前增菌
室温下缓冲蛋白胨水
37C±1C孵育（9.2）18h±2h
在温度下的蛋白胨水缓冲溶液
划平板
生化确认（9.5.3）
XLD培养基和选择第二种琼脂
（9.4.1）37C±1C孵育24h±3h
从每块平板上检测一个特征菌落，如果阴性，检测所有明显的
菌落（9.5.2）
营养琼脂，37C±1C孵育
24h±3h（9.5.2）
血清学确认（9.5.4）
结果表示（条款10）
（标准化）
培养基和试剂的组织和制备
B.1缓冲蛋白胨水
B.1.1成份
酷蛋白消化酶
10.0g
NaCI
Na2HPQ?
12H2O
5.0g
9.0g
KH2PO4
水
1.5g
1000ml
B.1.2制备
将上述成分溶解于水，如需要可以加热。
如需要，调节pH值，以便在消毒后25C下pH值为7.0土0.2。
分装培养基于适当容量的烧瓶中，以便满足实验的需要。
置于高压灭菌锅中121C灭菌15分钟。
B.2RVS肉汤
B.2.1溶齐UA
B.2.1.1成份
大豆消化酶
5.0g
NaCI
8.0g
KH2PO4
1.4g
K2HPO4
0.2g
水
1000ml
B.2.1.2制备
将上述成分溶解于水，如需要可以加热到70C左右。
溶液在完全RVS培养基制备时应已经准备就绪。
B.2.2溶剂B
B.2.2.1成份
MgCI2?
12H2O400.0g
水1000ml
B.2.2.2制备
将氯化镁溶于水中。
由于氯化镁容易吸湿，依据相关公式，可取整个的MgCI.6H2O溶解于新开的容器内。
例如，
250gMgCI.6H2O加入625ml的水，得到一个总体积为788ml的溶液，MgCI.6H2O的重量浓
度约为31.7g/100ml。
孔雀绿草酸盐
0.4g
水
100ml
B.2.3溶剂C
B.2.3.1成份
B.2.3.2制备
将孔雀绿草酸盐溶于水中。
溶液置于棕色瓶中，室温保存至少8个月。
B.2.4完全培养基
B.2.4.1成份
溶液A（B.2.1）
1000ml
溶液B（B.2.2）
100ml
溶液C（B.2.3）
10ml
B.2.4.2制备
加入1000ml溶液A、100ml溶液B、10ml溶液C。
如需要，调节pH，以便在灭菌后pH值为5.2±0.2。
使用前，用10ml量分装
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