生物产品分析与检验实验指导.docx
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生物产品分析与检验实验指导
实验一、乳酸菌饮料中乳酸菌的微生物检验
一、实验目的
1.了解酸乳中乳酸菌分离原理
2. 学习并掌握乳酸菌饮料中乳酸菌菌数的检测方法。
二、实验 原理
活性酸奶需要控制各种乳酸菌的比例，有些国家将乳酸菌的活菌数含量作为区分产品品种和质量的依据。
由于乳酸菌对营养有复杂的要求，生长需要碳水化合物、氨基酸、肽类、脂肪酸、酯类、核酸衍生物、维生素和矿物质等，一般的肉汤培养基难以满足其要求。
测定乳酸菌时必须尽量将试样中所有活的乳酸菌检测出来。
要提高检出率，关键是选用特定良好的培养基。
采用稀释平板菌落计数法，检测酸奶中的各种乳酸菌可获得满意的结果。
三、实验材料
1.培养基
改良MC培养基（ModifiedChalmers培养基）
2.仪器和器具
无菌移液管（25ml,1ml），无菌水（225ml带玻璃珠三角瓶，9ml试管），无菌培养皿，旋涡均匀器。
恒温培养箱。
四、实验方法
流程：
酸奶→稀释→制平板→培养→检查计数
1.样品稀释
先将酸奶样品搅拌均匀，用无菌移液管吸取样品25ml加入盛有225ml无菌水的三角瓶中，在旋涡均匀器上充分振摇，务必使样品均匀分散，即为10-1的样品稀释液，然后根据对样品含菌量的估计，将样品稀释至适当的稀释度。
2.制平板
选用2~3个适合的稀释度，培养皿贴上相应的标签，分别吸取不同稀释度的稀释液1ml置于平皿内，每个稀释度作2个重复。
然后用溶化冷却至46℃左右的 改良MC培养基倒平皿，迅速转动平皿使之混合均匀，冷却成平板。
3.培养和计数
将平皿倒置于40℃恒温箱内培养24~48h，观察长出的细小菌落，计菌落数目，按常规方法选择30~300个菌落平皿进行计算。
五、结果
1.指示剂显色反应
乳酸菌的菌落很小，1~3mm，园形隆起，表面光滑或稍粗糙，呈乳白色、灰白色或暗黄色。
由于产酸菌落周围能使CaCO3产生溶解圈，酸碱指示剂呈酸性显色反应。
2.镜检形态
必要时，可挑取不同形态菌落制片镜检确定是乳杆菌或乳链球菌。
保加利亚乳杆菌呈杆状，成单杆、或双杆菌或长丝状。
嗜热链球菌，呈球状，成对、或短链、或长链状。
3.计数结果
公式：
平均菌落数×稀释倍数
稀释度
重复
1
2
1
2
1
2
菌落数
平均数
报告
八、思考
1.为什么乳酸菌的检测关键是选用特定良好的培养基？
2.培养基中为什么要加CaCO3？
实验二、发酵制品中大肠菌群的测定
一、实验目的
1、学习食品中大肠菌群检测程序、方法；
2、掌握食品中大肠菌群检测结果的报告方式。
二、实验原理
大肠菌群系指一群能发酵乳糖、产酸产气、需氧和兼性厌氧的革兰氏阴性无芽胞杆菌。
该菌主要来源于人畜粪便，故以此作为粪便污染指标来评价食品的卫生质量，推断食品中有否污染肠道致病菌的可能。
三、实验材料
1、设备和材料
温箱、水浴锅、天平、显微镜、均质器或乳钵、温度计、平皿、试管、发酵管、吸管、载玻片、接种针
2、培养基及试剂
乳糖—胆盐发酵管、乳糖发酵管、蛋白胨水、靛基质试剂、麦康凯、伊红美蓝琼脂（EMB）、远腾氏琼脂、革兰氏染色液
3、样品
发酵香肠
四、实验方法与步骤
1、采样及稀释
①以无菌操作将检样25g放于含有225ml灭菌生理盐水，用均质器，以8000～10000r/min的速度处理1min，做成1∶10的均匀稀释液。
②用1ml灭菌吸管吸取1：
10稀释液1ml，注入含有9ml灭菌生理盐水或其他稀释液的试管内，振摇混匀，做成1：
100的稀释液，换用1支1ml灭菌吸管，按上述操作依次作10倍递增稀释液
③根据食品卫生要求或对检验样品污染情况估计，选择三个稀释度，每个稀释度接种3管。
也可直接用样品接种。
2.乳糖初发酵试验
即通常所说的假定试验。
其目的在于检查样品中有无发酵乳糖产生气体的细菌。
将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内，接种量在1ml以上者，用双料乳糖胆盐发酵管；1ml及1ml以下者，用单料乳糖发酵管。
每一个稀释度接种3管，置（36±1）0C温箱内，培养（24±2）h，如所有乳糖胆盐发酵管都不产气，则可报告为大肠菌群阴性，如有产生者，则按下列程续进行
3.分离培养
将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂板或麦康凯琼脂平板上，置（36±1）0C温箱内，培养18h~24h，然后取出，观察菌落形态并作革兰氏染色镜检和复发酵试验。
4.乳糖复发酵试验
即通常所说的证实试验，其目的在于证明从乳糖初酵管试验呈阳性反应的试管内分离到的革兰氏阴性无芽胞杆菌，确能发酵乳糖产生气体。
在上述的选择性培养基上，挑取可疑大肠菌群1~2个进行革兰氏染色，同时接种乳糖发酵管，置（36±1）0C的温箱内培养（24±2）h，观察产气情况。
凡乳糖发酵管产气，革兰氏染色为阴性无芽胞杆菌，即报告为大肠杆菌阳性；凡乳糖发酵管不产气或革兰氏染色为阳性，则报告为大肠杆菌为阴性。
5.报告
根据证实为大肠菌群阳性的管数，查MPN检索表，报告每100ml（g）食品中大肠菌群的最可能数。
试管编号
稀释度
初发酵
分离实验
形态
复发酵
试验结果
1
2
3
4
5
6
7
8
9
报告
实验三伤寒疫菌免疫力实验
一、实验目的
学习如何进行伤寒疫菌免疫力测定.
二、实验原理
伤寒是一种由伤寒杆菌感染所致的、使人衰弱并威胁生命的肠道传染病。
伤寒患者会有持续发热、疲倦、食欲不振、严重头痛、脾脏胀大、便秘或腹泻的情况出现。
副伤寒的病征与伤寒相似，但程度一般较轻，它是由另一类的沙门氏菌所引起的。
伤寒及副伤寒的传播途径是经由一些受到病者或带菌者的粪便或尿液所沾染的饮食而传播。
带菌者是一些经感染后而康复的人士，但在体内仍存着病菌。
若食物及饮品曾由一些不断排放病菌的人员处理、或饮用和冲洗食物的水受到污水所污染，便有机会传播伤寒及副伤寒病。
该疾病在缺少充分的排污系统和环境卫生设施的发展中国家比较多见。
据美国疾病控制和预防中心报道，全世界每年约有1600万人发生伤寒，其中大约60万人死于该疾病。
三、实验材料
小鼠毒菌伤寒疫苗
四、实验步骤
将经56℃30分钟加温杀菌（或用其他方法杀菌），不加防腐剂的菌液稀释为每1ml含伤寒菌2.5×108。
用该菌液免疫体重为14~16g小鼠至少30只，每只皮下注射0.5ml，注射2次，间隔7天，末次免疫后9~11天进行毒菌攻击。
免疫组小鼠每只腹腔注射1MLD的毒菌（含于0.5ml中），同时应用同批饲养或体重与免疫组相同的小鼠3组（每组至少5只）作对照，分别于腹腔注射2、1及1/2MLD的毒菌（各含于0.5ml中）。
观察3天，对照组小鼠感染2MLD及1MLD者应全部死亡，感染1/2MLD者要有部分死亡。
免疫组至少保护70%小鼠活存。
五、实验结果：
实验四光化学荧光分析法测定氨苄青霉素
一实验目的
学会氨苄青霉素的测定方法
二、实验原理
氨苄青霉素（Ampicillin）为临床上常用控制细菌感染的一类重要的青霉素类抗生素,属广谱抗菌素，对大多数G+菌的抗菌作用不及青霉素G,对阴性杆菌的作用超过青霉素。
作用机制同青霉素。
但肠球菌对氨苄青霉素较为敏感,对G-杆菌作用较卡那霉素,庆大霉素弱,与四环素相仿,对伤寒杆菌,大肠杆菌的抗菌作用较强,绿脓杆菌和金葡菌对本品耐药.主要用于治疗敏感细菌所致的败血症、尿路感染、肺部感染、胆道感染等；治疗伤寒、副伤寒疗效与氯霉素相仿。
本品在脑膜炎症时，脑脊液浓度较高，也适用于治疗由肺炎球菌、脑膜炎双球菌及流感杆菌引起的脑膜炎。
与其他半合成青霉素类、氨基糖甙类及氯霉素等合用可增强疗效。
鉴于其特殊的药理作用,其质量控制就显得更为重要。
目前国内外主要通过高效液相色谱法来测定氨苄青霉素的含量,本实验采用光化学荧光分析法来测定其粉针剂中氨苄青霉素的含量。
三、实验材料
氨苄青霉素药物（市售）
RF-5000型荧光分光光度计
YE-1型荧光分光光度计
125W高压汞灯（破除玻璃外壳）
TOA型Ph计
2%甲醛溶液
四、实验步骤：
将药物样品稀释，制定溶液，移取一定量的药物溶液于25ml干燥烧杯中，加入2.0ml,Ph=5.6缓冲溶液，加入至20.0ml混匀，移取2.00ml于10ml容量瓶中，加入1.00ml2%甲醛，用2mol/LNaOH溶液定容至刻度，摇匀，避光放置40min,后于426nm处测量荧光相对强度。
五、实验结果：
测量该药物中氨苄青霉素含量为
实验一动物细胞培养
细胞培养是用无菌操作的方法将动物体内的组织（或器官）取出，模拟动物体内的生理条件，在体外进行培养．使其不断地生长、繁殖，人们借以观察细胞的生长、繁殖、细胞分化以及细胞衰老等过程的生命现象。
细胞培养的突出优点，一是便于研究各种物理、化学等外界因素对细胞生长发育和分化等的影响；二是细胞培养便于人们对细胞内结构（如细胞骨架等）、细胞生长及发育等过程的观察。
因而细胞培养是探索和指示细胞生命活动规律的—种简便易行的实验技术，同时我们也不可忽略的另一个因素，那就是它脱离乐生物机体后的—些变化。
细胞培养技术目前已广泛地被应用于生物学的各个领域。
如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿痛学及病毒学等
为此有必要使学生在细胞培养方面得到一些初步的感性知识，了解动物细胞培养的基本操作过程，观察体外培养细胞的生长特征，对原代细胞与传代细胞有一个基本概念。
本实验分两次进行．即清洗与消毒和传代细胞的培养与观察。
Ⅰ清洗与灭菌
一、实验目的
能独立地进行用于细胞培养的各种器皿的清洗与消毒，掌握干热灭菌法、湿热灭菌法和滤过除菌法的操作，了解化学消毒法的使用方法。
二、实验原理
清洗与消毒是组织培养实验的第一步，是组织培养中工作量最大，也是最基本的步骤。
体外培养细胞所使用的各种玻璃或塑料器皿对清洁和无菌的要求程度很高。
细胞养不好与清洗不彻底有很大关系。
清洗后的玻璃器皿，不仅要求干净透明，无油迹，而且不能残留任何物质。
如有毒的化学物质，哪怕残留0．1个，也可能影响细胞生长。
灭菌手段的选择十分重要，对不同的物品需采用不同的灭菌方法。
假如选用的方法不对，即使达到了无菌却使被灭菌药品丧失了营养价值、生物学特性或其他使用价值也不行。
以下在每种灭菌步骤中都介绍其使用范围。
三、实验材料、用品
材料：
无臭氧型紫外灯，微孔滤膜（直径25）：
孔径为0．22μm，微孔滤膜（直径90）：
孔径为0．22μm，过滤器（直径25）。
药品：
70％或75％酒精，0．1％新洁尔灭，煤酚皂溶液（来苏儿水），0．5％过氧乙酸，乳酸，37％甲醛，高锰酸钾，NaOH，盐酸，重铬酸钾，浓硫酸（工业），DEPC水[体积分数0．1％的焦炭酸二乙酯（diethylpyroearbonate）]。
仪器：
超净台，干燥箱，高压锅，过滤器，过滤泵。
四、实验步骤
（一）清洗
1．新玻璃器皿的清洗先用自来水刷洗，再浸泡5％稀盐酸以中和玻璃表面的碱性物质和其他有害物质。
2．使用过的玻璃器皿的清洗
（1）使用过的培养用品应立即浸入清水，避免干涸难洗。
（2）用洗涤剂清洗玻璃器皿，自来水清洗数遍，倒置自然干燥。
（3）浸酸性洗液过夜。
（4）从酸性洗液捞出后自来水冲洗10．15次去除残余酸液，蒸馏水涮洗3次，倒置烘干。
（5）包装（牛皮纸或一般纸）。
（6）高压（15磅20min）或干热（170℃2h）灭菌。
（7）贮存备用。
3．胶塞的处理
（1）新胶塞应先用清水清洗之后再用0．2％NaOH煮沸lO-20min。
（2）自来水清洗10次。
（3）再用1％稀盐酸浸泡30min。
（4）自来水清洗10次，蒸馏水涮洗3次。
晾干，高压灭菌（见
（二）消毒与灭菌）。
旧胶塞不必用酸碱处理可直接用洗涤剂煮沸和清洗数次，过蒸馏水，晾干，包装并高压灭菌后，便可使用。
（二）消毒
1．物理消毒法
（1）紫外线消毒用于消毒空气、操作台面和一些不能用干热、湿热灭菌的培养器皿，如塑料培养皿、培养板等。
这是常使用的消毒方法之一。
（2）干热灭菌主要用于玻璃器皿的灭菌。
将用于细胞培养的器皿放人干燥箱内，加热至160℃，保温90－120min。
用于RNA提取实验的用品则需180℃，保温5－8h。
（3）湿热灭菌此方法也称为高压蒸汽灭菌，是最有效的一种灭菌方法。
主要应用范围是布类、橡胶制品（如胶塞）、金属器械、玻璃器皿、某些塑料制品以及加热后不发生沉淀的无机溶液（如Hanks液、PBS、20×SSC等）。
手动高压灭菌锅操作如下：
①首先查看高压锅内的水是否充足，放人物品盖好盖。
②加热高压锅。
将放气阀打开，放气5—10min，以排除锅内的冷空气。
③待锅内水沸腾后，落下放气阀继续升温升压，玻璃器皿等用15磅（121℃）30min，胶塞、塑料制品、溶液等可用10磅（115℃）20min。
调节火力大小保持该压力。
④停止加热，待压力自然下降至0再打开放气阀排汽，开盖，取出高压灭菌的物品烘干。
电热自动灭菌锅使用说明（型号：
SANYOAutoclaveMLS-3020）：
①放气筒加水至LOW水平线处，将与高压锅相连的导气管插入放气筒里，然后将放气筒归于原位。
②打开高压锅盖，加入蒸馏水至高压锅底的水位线，水位线位于V型凹槽的1／3－2／3处。
③打开电源。
④设定高压温度及时间，高压锅的温度范围为105－121℃，高压灭菌一般采用121℃20—30min。
⑤把待高压的物品置于高压锅内，顺时针方向将exhaust钮旋至close位置。
⑥关闭高压锅盖，旋至显示屏上左上角的红亮点刚出现为止。
⑦按start钮，开始高压，在温度达80℃时显示器开始显示温度，当温度达到所需的设定温度时，在显示屏的左下角有一长形的指示灯闪亮，直到高压时间结束后指示灯灭，此时蜂鸣器报警一声。
当压力降至0MPa时，蜂鸣器再报警一声。
温度降至80℃时，蜂鸣器报警10次。
显示屏温度指示消失，此时才可打开锅盖。
⑧关电源，开高压锅盖，取出已灭菌的物品，烘干。
（4）滤过除菌用于培养用液和各种不能高压灭菌的溶液的灭菌。
采用金属滤器和小型的塑料滤器，配上可以更换的微孔滤膜，极大地方便了操作。
滤器型号按直径大小划分。
如过滤量大的培养用液常用较大型号的金属滤器（直径90mm、100mm、142mm……等），配以过滤泵使用。
过滤量较小的液体常用注射器推动的塑料小滤器（直径20mm、25mm等）。
滤膜孔径有0．60μm、0．45μm、0．35μm、0．22μm、0．10μm等，以0．22μm除菌最为保险，但对于较粘稠难滤过的液体，仍需选用孔径较大的滤膜。
①在过滤器上装上微孔滤膜，孔径为0．22μm。
②用布包好，湿热灭菌后使用。
2．化学消毒法
常用的消毒液有如下几种：
（1）70％（或75％）酒精：
超净台里常备70％酒精棉球（卫生级酒精），用于手和一些金属器械或工作台面的消毒。
（2）0．1％新洁尔灭：
主要用于手和前臂的清洗以及工作后超净台面的清洁。
超净台旁应常备盛有0．1％新洁尔灭溶液的容器及纱布。
（3）来苏儿水（煤酚皂溶液）：
主要用于无菌室桌椅、墙壁、地面的消毒和清洗，以及空气喷撒消毒，特别是污染细胞的消毒处理。
使用浓度请按瓶上说明。
（4）0．5％过氧乙酸：
是强效消毒剂，10min即可将芽孢菌杀死。
用于各种物品的表面消毒，用喷撒和擦拭方式进行。
（5）乳酸蒸气：
将乳酸放入坩锅内用酒精灯或电炉加热至沸腾为止。
将门窗紧闭1—3d。
可将空气中漂浮的微生物杀死。
（6）37％甲醛加高锰酸钾：
使用前先紧闭门窗。
将37％甲醛用酒精灯或电炉加热至沸腾后断电或灭火。
用一张纸盛好适量的高锰酸钾，迅速放人已加热好的甲醛中形成蒸气。
1—3d后方可达到消毒空气的目的。
3．煮沸消毒急性消毒可用煮沸法，器械等煮沸15min后使用。
五、注意事项
1．清洗玻璃制品时，浸酸之后一定要用自来水冲洗10—15次。
因为残存的洗液对细胞粘附有很大影响。
清洗塑料制品时要用棉花或柔软纱布擦洗。
千万不要用硬毛刷，否则损害塑料表面后细胞不易贴壁。
Tip和Tube一定要用超声清洗处理后逐个清洗。
如没有洗净会影响下一次使用的效果。
2．干热灭菌时，应在白天使用烤箱，并不断观察，以免发生意外。
当温度超过100℃时，不能再打开烤箱门。
器皿烤完后，待温度降至100℃之下才能开烤箱门。
金属器械和橡胶、塑料制品不能使用干热灭菌方法。
．
3．高压灭菌后器皿务必晾干或烘干，以防包装纸潮湿发霉。
4．牛血清、大部分培养基、胰酶和一些生物制剂是有机溶液，均不能高压（如TdR，秋水仙素，谷氨酰胺，异硫氰酸胍，MOPS等）。
5．滤过除菌时，滤器在使用前先装好滤膜（有时可在上面加一层定性滤纸），包好，经高压灭菌后才能使用。
滤过酶类制剂时应待滤器温度降至室温下再进行。
过滤时压力不宜过大，压力数字以2为宜。
压力太大时微孔滤膜可能破裂，或使某些微生物变形而通过滤膜。
装滤膜时位置要准确。
另外滤器包装时，螺钉不要拧得太紧，以防高压蒸汽不能进入，待高压灭菌之后，再拧紧使用。
6．使用化学消毒法时，配制75％酒精应用卫生级，不要用化学纯、分析纯和优质纯酒精。
来苏儿水不能用于皮肤消毒，它对皮肤有刺激性。
空气消毒时，所有的物品要事先准备齐全并使消毒者有较方便的退出途径。
因为甲醛或乳酸加热后放出的蒸气对人的角膜和呼吸道上皮有严重的刺激和伤害作用。
六、思考题
1．哪些物品适合于高压灭菌，并说明理由。
2．紫外线消毒的适用范围和目的是什么?
II、传代细胞培养与观察
一、实验目的
了解传代细胞的传代方法及操作过程，学习观察体外培养细胞的形态及生长状况
二、实验原理
传代培养是指细胞从一个培养瓶以1：
2或1：
2以上的比例转移，接种到另一培养瓶的培养。
这种培养，第一步也是制备细胞悬液，当细胞长成致密单层时，它很容易被蛋白水解酶和EDTA）所破坏。
所以—般采用胰蛋白酶和EDTA（乙二胺四乙酸盐）的混合物，做为消化液。
细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。
要使细胞能在体外长期生长，必须满足两个基本要求：
一是供给细胞存活所必需的条件，如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度，注意外环境酸碱度和渗透压的调节。
二是严格控制无菌条件。
三、实验用品
1、器材
解剖剪、解剖镊、眼科剪（尖头、弯头）、眼科镊（尖头、弯头）、培养皿、量筒、试管、锥形瓶、吸管、橡皮头、培养瓶（小方瓶或中方瓶）等。
上述器材均须彻底清洗、烤干、包装好，9．9xl04Pa（15磅）灭菌30min备用。
此外，还有显微镜、血细胞计数器、血细胞计数板、酒精灯、酒精棉球、碘酒棉球、试管架、标记笔、解剖板等。
2、试剂
L磷酸盐缓冲液（PBs）
无钙、镁溶液
细胞消化液：
o．5％胰蛋白酶和o．4%EDTA
EMEM液
3%谷氨酰胺
o．5％台盘蓝染液等
3、材料
喉癌细胞
四、实验方法
在做传代细胞培养之前，首先将培养瓶置于显微镜下，观察培养瓶中细胞是否已长成致密单层，如已长成单层，即可进行细胞的传代培养。
1.营养液配制:
EMEM液 90%
犊牛血清 10%
双抗（1万单位／m1） 加至约100单位／m1
3％谷氛酞胺 1m1
7．4％NaHCO3 调pH至6．8—7．0
2．换液:
在酒精灯旁打开瓶塞，倒去瓶中的细胞营养液。
3.消化与分装
在上述瓶中加入1mlEDTA溶液，轻轻摇动，将溶液倒出。
重复上述动作。
加入适量消化液（0.02%EDTA或0.04％EDTA1ml十o．5％胰蛋白酶液0.2ml）以盖满细胞为宜，置于室温，停留1—2min后，翻转培养瓶，肉眼观察细胞单层是否出现缝隙（针孔大小的空隙），如出现缝隙，即可倒去消化液；如末出现缝隙，则可将瓶翻回，继续进行消化，直到出现缝隙为让。
此时，可倒去消化液，加入新配制的营养液20m1。
然后用吸管吸取培养瓶中的营养液，反复吹打瓶壁上的细胞层至瓶壁细胞全部脱落下来为止。
此时，可继续轻轻地吹打细胞悬液，以使细胞散开。
随之进行分装。
4．培养
分装好的细胞瓶上，做好标志，注明细胞代号、日期。
置于培养架上，轻摇使细胞均匀分布，以免堆积成团。
然后置于37℃培养。
5.观察
（1）观察体外培养细胞的几个问题；
细胞培养24h后，即可进行观察，观察的重点如下：
A.首先要观察培养细胞是否污染。
主要观察培养液颜色的变化及混浊度
B.观察培养姬颜色变化及细胞是否生长。
C.如细胞已生长，则要观察细胞的形态特征并判断其所处的生长阶段。
观察时可参照
（2）的描述进行。
D．观察完毕，可用台盘蓝染液对细胞进行染色。
以确定死、活细胞的比例。
（2）细胞的生长阶段及其形态特征
传代培养的细胞需逐日进行观察，注意细胞有无污染，培养液颜色的变化及细胞生长的情况。
—般中层培养的细胞，从培养开始，经过生长、繁殖、衰老及死亡的全过程。
它是一个连续的生长过程，但为了观察及描述，人为地将具分为5个时期，但各期间无明显绝对界限。
现分别描述如下：
A．游离期：
当细胞经消化分散成单个细胞后，由于细胞原生质的收缩相表面张力以及细胞膜的弹性。
所以，此时细胞多为圆形，折光率高，此期可延续数h。
B．吸附期（贴壁）：
由于细胞的附壁持性，细胞悬液静置培养一段时间（约7—8h）后，便附着在瓶壁上（此期不同细胞所需时间不同）。
在显微镜下观察时可见瓶壁上有各种形态的细胞，如圆形、扁形、短菱形。
细胞的特点，大多立体感强，细胞内颗粒少，透明。
C.繁殖期：
培养l2h以后直到72h，细胞进入繁殖期，加速了细胞生长和分裂。
此期包括由几个细胞形成的细胞岛（即由少数细胞紧密聚集而呈现的孤立细胞群，常散在地分布在瓶壁上），到细胞铺满整个瓶壁（即所谓形成细胞单层）的过程。
此期细胞形态为多角形（呈现上皮样细胞的特征）。
细胞特点：
透明，颗粒较少，细胞间界限清楚，并可隐约见到细胞核。
根据细胞所占瓶壁有效面积的百分率，又可将其生长状况分为四级。
以“十”的多少表示如下：
十：
细胞占瓶壁有效面积（也就是细胞能生长的瓶壁面积）的25％以内有新生细胞。
一般要观察3—5个视野内的细胞生长状况，然后加以综合分析判断。
十十：
细胞占瓶壁有效面积的25—75％以内具新生细胞。
十十十：
细胞占瓶壁有效面积的75—95％具新生细胞。
细胞排列致密。
但仍有空隙。
十十十十：
细胞占瓶壁95％以上，细胞已长满或接近长满单层，细胞致密，透明度好。
从十十一十十十十为细胞的对数增长期（或称为指数增长期）。
D．维持期：
当细胞形成良好单层后，细胞的生长与分裂都减缓，并逐渐停止生长，这种现象被称为细胞生长的接触抑制。
此时细胞界限逐渐模糊，细胞内颗粒逐渐增多，且透明度降低，立体感较差。
由于代谢产物的不断积累，维持液逐渐变酸。
此时营养液已变为橙黄色或黄色。
E．衰退期：
由于溶液中营养的减少和日龄的增长，以及代谢产物的累积等因素，此时细胞间可出现空隙，细胞中颗粒进一步增多，透明度更低，立体感很差。
若将细胞经固定染
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