琼脂糖凝胶电泳1.docx

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琼脂糖凝胶电泳1

DNA琼脂糖凝胶电泳

跑胶即走电泳，是DNA和protein最大体的定性定量方式。

一样是琼脂糖胶或page胶，琼脂糖胶一样是检测DNA的，能够查验一下你到底提到dna没过确信你提dna分子量的大小：

page胶一样是检测蛋白特性的，通过page胶里marker的分子量大小来确信你需要的目的蛋白分子量大小，若是有杂带那就能够够判定那条带是你需要的目的条带，若是想明白蛋白浓度，还能够在page胶里带上一条定量marker，通过条带粗细，来判定你需要蛋白的浓度。

二者原理一致，小分子量用大浓度的胶，大分子量用小浓度的胶，专门小的DNA用丙烯酰胺凝胶。

一、大体原理

当把一个带净电荷（q）的颗粒放入电场，便有一个电场力（F）作用于其上。

F的大小取决于颗粒静电荷量及其所处的电场强度（E），它们之间的关系能够表示成：

F=E×q。

由于F的作用，使带电颗粒在电场中向必然方向泳动。

此颗粒在泳动的进程中还受到一个相反方向的摩擦力（f*v）阻挡。

当这两种力相等时，颗粒那么以速度（v）向前泳动：

v=F/f,其中f为摩擦系数。

依照Stoke公式，阻力大小取决于带电颗粒的大小、形状和所处介质的粘度，即f=6πγη,γ为颗粒半径，η为介质粘度。

该公式指球形颗粒所受的阻力。

代入F＝E×q取得:

v=E×q/6πγη.从那个公式能够看出，带电颗粒在电场中泳动的速度与电场强度和带电颗粒的净电荷量成正比，与颗粒半径和介质粘度成反比。

带电颗粒在电场中泳动的速度经常使用泳动度（m）或迁移率以以下公式表示：

m＝μ/E=d*l/V*t

d为带电颗粒泳动的距离（cm），l为支持物的有效长度（cm），t为通电时刻（s），V为加在支持物两头的电压。

在必然条件下，任何带电颗粒都具有自己特定的泳动度。

它是胶体颗粒的一个物理常数，可用其鉴定蛋白质、核酸等物质的纯度，还能够用其来研究蛋白质、核酸等物质的一些理化性质。

阻碍泳动度的因子有颗粒的性质、电场强度、溶液的性质等。

二、琼脂糖凝胶电泳

通常情形下，核酸类物质的分离、鉴定是采纳琼脂糖凝胶（做支持物）电泳法进行的。

用琼脂糖分离线性DNA时，其迁移率与该物质分子质量的关系紧密，而与结构和碱基组成无关。

这也是采纳凝胶电泳法测定核酸分子质量的依据所在。

此方式除能够分离线性DNA外，还能够分离、分析细菌质粒的闭环DNA和开环DNA，和分子质量不等的RNA片段。

一样实验室采纳的琼脂糖凝胶的浓度为%——2%。

不同的凝胶浓度，能够分离不同长度的DNA片段。

具体见表格：

琼脂糖凝胶/%m/V

分离线性DNA片段的范围/kb

50---60

1----20

琼脂糖凝胶电泳经常使用的缓冲液：

缓冲液

pH

L

Tris-NaH2PO4-1--5mmol/LEDTA

Na2HPO4-1--5mmol/LEDTA

乙酸-1--5mmol/LEDTA

乙酸钠-乙酸-1--5mmol/LEDTA

EDTA

琼脂糖凝胶电泳经常使用的样品缓冲液（示踪染料）：

%溴酚蓝%二甲苯青FF-30%甘油水溶液，而且这两种指示剂在琼脂糖凝胶中的迁移率不同，能够指示必然片段长度的DNA迁移率（具体见下表）。

琼脂糖凝胶浓度

溴酚蓝

二甲苯青

%

1kb

/

%

2kb

%

%

/

核酸分子量标准（Marker）：

DNA电泳必然要用DNAMarker或是已知大小的正对照DNA来估量片段的大小。

应该选择在目标片段大小周围Ladder较密的Marker，如此关于目标片段大小的估量才比较准确。

核酸电泳染色剂：

核酸电泳以后，需要通过染色才能显现带型，最经常使用的染色剂是溴化乙锭（EB），第二是银染法。

1、溴化乙锭（ethidiumbromide）:

一种荧光染料，能够嵌入核酸的双链碱基对之间，在紫外光线的激发下，发出红色荧光。

2、银染法：

染色液中的银离子可与核酸形成稳固的复合物，然后用还原剂如甲醛使银离子还原成银颗粒，能够将核酸带染成黑色。

灵敏度比EB高，可是DNA不易回收。

的操作步骤如下：

1.制备1%琼脂糖凝胶（大胶用70ml,小胶用50ml）:

称取0.7g（0.5g）琼脂糖置于锥形瓶中,加入70ml（50ml）1×TAE,瓶口倒扣小烧杯.微波炉加热煮沸3次至琼脂糖全数融化,摇匀,即成%琼脂糖凝胶液.

2.胶板制备:

取电泳槽内的有机玻璃内槽（制胶槽）洗干净,晾干,放入制胶玻璃板.取透明胶带将玻璃板与内槽两端边缘封好,形成模子.将内槽置于水平位置,并在固定位置放好梳子.将冷却到65℃左右的琼脂糖凝胶液混匀警惕地倒入内槽玻璃板上,使胶液缓慢展开,直到整个玻璃板表面形成均匀胶层.室温下静置直至凝胶完全凝固,垂直轻拔梳子,取下胶带,将凝胶及内槽放入电泳槽中.添加

1×TAE电泳缓冲液至没过胶板为止.

3.加样:

在点样板或parafilm上混合DNA样品和上样缓冲液,上样缓冲液的最终稀释倍数应不小于1X.用10ul微量移液器别离将样品加入胶板的样品小槽内,每加完一个样品,应改换一个加样头,以防污染,加样时勿碰坏样品孔周围的凝胶面.（注意:

加样前要先记下加样的顺序）.

4.电泳:

加样后的凝胶板立即通电进行电泳,电压60-100V,样品由负极（黑色）向正极（红色）方向移动.电压升高,琼脂糖凝胶的有效分离范围降低.当溴酚蓝移动到距离胶板下沿约1cm处时,停止电泳.

（5）电泳完毕后,取出凝胶,用含有ug/ml的溴化乙锭1×TAE溶液染色约20min,再用清水漂洗10min.

（6）观察照相:

在紫外灯下观察,DNA存在则显示出红色荧光条带,采用凝胶成像系统拍照保存.

琼脂糖凝胶电泳

一,实验原理

琼脂糖凝胶电泳是分离和纯化DNA片段的常用技术.把DNA样品加入到一块包含电解质的多孔支持介质（琼脂糖凝胶）的样品孔中,并置于静电场上.由于DNA分子的双螺旋骨架两侧带有含负电荷的磷酸根残基,因此在电场中向正极移动.在一定的电场强度下,DNA分子的迁移速度取决于分子筛效应.具有不同的相对分子质量的DNA片段泳动速度不一样,因而可依据DNA分子的大小来使其分离.凝胶电泳不仅可分离不同分子质量的DNA,也可以分离相对分子质量相同,而构型不同的DNA分子.在电泳过程中可以通过示踪染料或相对分子质量标准参照物和样品一起进行电泳而得到检测.相对分子质量标准参照物相对可以提供一个用于确定DNA片段大小的标准.在凝胶中加入少量溴化乙锭（ethidiumbromide,EB）,其分子可插入DNA的碱基之间,形成一种络合物,在254～365nm波长紫外光照射下,呈桔红色荧光,因此也可对分离的DNA进行检测.

一样琼脂糖凝胶电泳适用于大小在～50kb范围内的DNA片段.本实验介绍琼脂糖凝胶的制备和琼脂糖凝胶电泳在DNA片段分离中的应用方式.

琼脂糖凝胶浓度（%）

线状DNA分子分离范围（kb）

5--60

1--20

琼脂糖凝胶电泳是用于分离纯化和鉴定核酸的方式，依照琼脂糖的溶解温度，把琼脂糖分为一样琼脂糖和低熔点琼脂糖。

低熔点琼脂糖的熔点为62--65,溶解后在37下维持液体状态约数小时,要紧用于DNA片断的回收、质粒与外源性DNA的快速连接等。

DNA在琼脂糖凝胶中的迁移速度与琼脂糖浓度、DNA分子量及其构象、电泳缓冲液、电场强度等因素有关，一样说来，DNA片断越大或琼脂糖浓度越大，其迁移速度越大；而电场强度越高，其迁移速度越大。

不同浓度琼脂糖凝胶DNA分离范围见上图表。

二,仪器及试剂

1.仪器及耗材:

水平电泳槽,电泳仪,凝胶成像分析系统,微波炉,微量移液器,透亮胶带,点样或parafilm,100ml或250ml锥形瓶,量筒,吸头等.

2.试剂及配制:

50×TAE缓冲液的配制:

2mol/LTris-乙酸,mol/LEDTA（pH

配制1000ml

Tris242g

冰乙酸ml

mol/LEDTA100ml

加入600ml去离子水后搅拌溶解,将溶液定容至1L后.高温高压灭菌,室温保留.

1×TAE缓冲液的配制:

称量20ml的50×TAE缓冲液,再加入980ml的去离子水.

溴化乙啶贮存液:

10mg/ml溴化乙啶

配制:

100ml

称取1g溴化乙啶,置于100ml烧杯中,加入80ml去离子水后搅拌溶解.将溶液定容至100ml后,转移到棕色瓶中.室温保留.

6×上样缓冲液:

%溴酚蓝,%二甲苯青FF,30%甘油.

配制:

10ml

溴酚蓝25mg

二甲苯青FF25mg

甘油3ml

用6×TAE缓冲液定溶至10ml,分装成1ml/管.-20℃保留.

其它试剂:

DNA样品,DNALadder,琼脂糖,

三,操作步骤

1.制备1%琼脂糖凝胶（大胶用70ml,小胶用50ml）:

称取0.7g（0.5g）琼脂糖置于锥形瓶中,加入70ml（50ml）1×TAE,瓶口倒扣小烧杯.微波炉加热煮沸3次至琼脂糖全数融化,摇匀,即成%琼脂糖凝胶液.

2.胶板制备:

取电泳槽内的有机玻璃内槽（制胶槽）洗干净,晾干,放入制胶玻璃板.取透亮胶带将玻璃板与内槽两头边缘封好,形成模型.将内槽置于水平位置,并在固定位置放好梳子.将冷却到65℃左右的琼脂糖凝胶液混匀警惕地倒入内槽玻璃板上,使胶液缓慢展开,直到整个玻璃板表面形成均匀胶层.室温下静置直至凝胶完全凝固,垂直轻拔梳子,取下胶带,将凝胶及内槽放入电泳槽中.添加

1×TAE电泳缓冲液至没过胶板为止.

3.加样:

在点样板或parafilm上混合DNA样品和上样缓冲液,上样缓冲液的最终稀释倍数应不小于1X.用10ul微量移液器别离将样品加入胶板的样品小槽内,每加完一个样品,应改换一个加样头,以防污染,加样时勿碰坏样品孔周围的凝胶面.（注意:

加样前要先记下加样的顺序）.

4.电泳:

加样后的凝胶板当即通电进行电泳,电压60-100V,样品由负极（黑色）向正极（红色）方向移动.电压升高,琼脂糖凝胶的有效分离范围降低.当溴酚蓝移动到距离胶板下沿约1cm处时,停止电泳.

（5）电泳完毕后,掏出凝胶,用含有ug/ml的溴化乙锭1×TAE溶液染色约20min,再用清水漂洗10min.

（6）观看照相:

在紫外灯下观看,DNA存在那么显示出红色荧光条带,采纳凝胶成像系统拍照保留.

四,常见问题及注意事项

1.配琼脂糖时应使其完全熔化后方可制胶.

2.琼脂糖凝胶易于破碎,操作时要轻缓.

3.电泳时应注意电源线路,预防触电.

4.溴化乙淀具有致癌作用,配制及利历时应带乳胶或一次性塑料手套.并在专门的实验室内利用.

5.紫外线对人体有损伤作用,开灯时刻不宜太长,注意防护.

带形状模糊:

DNA加样过量;电压太高;凝胶中有气泡.

7.质粒DNA的存在形式有3种,①共价闭环DNA（cccDNA）,常以超螺旋形式存在;②开环DNA（ocDNA）,此种质粒DNA的两条链中有一条发生一处或多处断裂,因此能够自由旋转从而排除张力,形成松弛的环状分子;③线状DNA,因质粒DNA的两条链在同一处断裂而造成.因此质粒DNA电泳的结果中有可能显现三条泳带,它们的泳动速度为:

cccDNA>线状DNA>ocDNA.

添加来自TIANGEN的资料:

1,琼脂糖:

不同厂家＼不同批号的琼脂糖，其杂质含量不同,阻碍DNA的迁移及其荧光背景的强度,应有选择的利用.

2,凝胶的制备:

凝胶中所加的缓冲液应该与电泳槽中的相一致,溶化的凝胶应该及时倒入板中,幸免倒入之前凝固结块,倒入板中的凝胶应该幸免显现气泡,以避免阻碍电泳结果.

3,电泳缓冲液:

为维持电泳所需的离子强度和PH,应常常更新电泳缓冲液.

4,样品加入量:

一样情形下,0.5CM宽的梳子可加微克的DNA量,加样量的多少依据加样孔的大小及DNA中片断的数量和大小而定.当加样孔大时,样品上样量应相应加大,不然会造成条带浅乃至识别不清楚;反之,那么应该适当减少加样量,可是上样量过量会造成加样孔超载,从而致使拖尾或扩散,关于较大的DNA此现象更明显.

5,DNA样品中盐浓度会阻碍DNA的迁移率,平行对照样品中应该利用一样的缓冲条件以排除这种阻碍.

6,DNA迁移率取决于琼脂糖的浓度,迁移分子的形状及其大小.采纳不同浓度的凝胶有可能分辨范围普遍的DNA分子,制备琼脂糖凝胶可依照DNA分子的范围来决定凝胶的浓度.小片断DNA的检测应采纳聚丙烯酰胺凝胶电泳,以提高分辨率.

什么是琼脂糖电泳的？

其大体知识及操作方式是什么？

不同形态的DNA在琼脂糖凝胶中迁移速度的大小如何散布或改变？

什么是琼脂糖电泳的？

其大体知识及操作方式是什么？

不同形态的DNA在琼脂糖凝胶中迁移速度的大小如何散布或改变？

以琼脂糖凝胶作为支持介质的电泳称为琼脂糖凝胶电泳。

二、琼脂糖凝胶电泳的准备和操作方法

1、制备琼脂糖凝胶时注意避免产生气泡

凝胶电泳分为垂直型和水平型，一般垂直型分离效果好于水平型。

但水平型可制备低浓度琼脂糖，制胶和加样比较方便，且电泳槽制作简单、价格低廉。

　　用缓冲液配制所需浓度的琼脂糖凝胶，水浴或微波炉中加热使琼脂糖完全融化，将溶液冷至55℃，用少量琼脂糖凝胶将玻璃板或有机玻璃板封边，放置样品梳（梳齿下端离玻璃板-1.0mm）。

接着将融化的琼脂糖凝胶溶液不中断地倒在玻璃板上或有机玻璃板模型中（厚度依样品浓度而定，须注意幸免气泡混入）,室温下自然凝固。

待完全凝固后警惕掏出加样器，在电泳槽中加入适量电泳缓冲液，使胶板浸没在电泳缓冲液下约1mm处。

2、样品制备与加样

所加样品应有适当浓度与较小体积，用微量注射器缓慢加入样品，点样时电源必须处于关闭状态。

为了指示电泳的距离，避免样品在电泳槽缓冲液中飘浮，常在制备好的样品中加入含有蔗糖或甘油以及指示剂（溴酚蓝、二甲苯青等）的上样缓冲液。

另外，样品中含盐量不能太高，否则电泳中会出现区带消失、前沿不齐等现象。

样品中DNA含量以每条区带的DNA不少于μg为宜，DNA浓度过高会使电泳区带变宽，泳动距离异常。

样品的用量由加样孔的体积决定，通常为10-50μg。

3、电泳

电泳温度视需要而定。

对于大分子的分离，宜低温，电压应低（一般不超过5V/cm）。

普通电泳可在室温进行，电泳的电压为5-15V/cm。

4、染色－以DNA电泳为例

常用荧光染料溴化乙锭（EB）进行染色以观察在琼脂糖凝胶中的DNA条带。

EB能插入DNA分子中碱基对之间，使EB与DNA结合（超螺旋DNA与EB结合能力小于双链闭环，而双链闭环的DNA与EB结合能力小于线状双链DNA）。

将以染色的凝胶浸泡在1mmol/lMgSO4溶液中1小时，可以降低未结合的EB所引起的背景荧光，以提高检测的灵敏度。

琼脂糖凝胶电泳对核酸的分离作用主要是依据它们的相对分子量质量及分子构型，同时与凝胶的浓度也有密切关系。

1、核酸分子大小与琼脂糖浓度的关系

（1）DNA分子的大小在凝胶中，DNA片段迁移距离（迁移率）与碱基对的对数成反比，因此通过已知大小的标准物移动的距离与未知片段的移动距离时行比较，便可测出未知片段的大小。

但是当DNA分子大小超过20kb时，普通琼脂糖凝胶就很难将它们分开。

此时电泳的迁移率不再依赖于分子大小，因此，就用琼脂糖凝胶电泳分离DNA时，分子大小不宜超过此值。

（2）琼脂脂糖的浓度如下表所示，不同大小的DNA需要用不同浓度的琼脂糖凝胶进行电泳分离。

表琼脂糖浓度与DNA分离范围

琼脂糖浓度/%

线状DNA大小/kb60-520-1

二、核酸构型与琼脂糖凝胶电泳分离的关系

不同构型DNA的移动速度次序为：

供价闭环DNA（covalentlyclosedcircular，cccDNA）>直线DNA>开环的双链环状DNA。

当琼脂糖浓度太高时，环状DNA（一般为球形）不能进入胶中，相对迁移率为0（Rm=0），而同等大小的直线双链DNA（刚性棒状）则可以长轴方向前进（Rm>0），由此可见，这三种构型的相对迁移率主要取决于凝胶浓度，但同时，也受到电流强度、缓冲液离子强度等的影响。

 >> λDNA/HindⅢMarker（单切Marker）

λDNA/HindⅢMarker*概述：

λDNA/HindⅢMarker是由λDNA经HindⅢ完全酶切并经灭活处置制成，浓度为 μg/μL。

已含有1xLoadingBuffer,能够直接电泳。

由8条片断组成：

125bp、564bp、2027bp、2322bp、4361bp、6557bp、9416bp和23130bp。

上样量～1μg。

*贮存：

－20℃保留一年以上，4℃保留2～3个

Glycerol       5％

溴酚兰        ％

二甲苯腈蓝    %

1×LoadingBuffer说明：

1×loadingBuffer中含有溴酚兰（BromophenolBlue）、二甲苯腈蓝FF

（XyleneCyanolFF）两种色素，用以判定DNA片断的电泳情形。

溴酚蓝在琼脂糖凝胶中迁移速度是二甲苯腈蓝FF的倍，这一特性与琼脂糖浓度无关。

在琼脂糖凝胶电泳中溴酚蓝迁移速度约与长300bp的线状双链DNA相同，而二甲苯腈蓝FF约与长4000bp的DNA相同。

上述关系在浓度范围

％～％的琼脂糖凝胶中大体不受浓度转变的阻碍。

*注意事项

1．  电泳时电压不该超过20V/cm，电压太高，会致使电泳缓冲液发烧从而阻碍DNA电泳成效。

另外，DNA分子泳动过快，小片段DNA分子可能会跑出凝胶，而致使DNA片段丢失。

2．  关于λDNAcos位点，该位点退火以后，λDNA/HindⅢMarker的4361bp片段和λDNA/HindⅢ＋EcoRⅠMarker的3530bp片段可能全数或部份消失，为幸免由于片段退火而产生DNA代带型的转变，应在点样前放在65℃水浴中加热10min，然后在冰浴中冷却5min。

3．  一样情形下，0.5cm宽的梳子加样量为μg的DNA量，即本产品点样量

5μl左右。

当加样孔大时，样品上样量应相应加大，不然会造成条带浅乃至识别不清楚，反之那么应当减少加样量，可是上样过量会造成片段脱尾或弥散，专门是关于较大DNA片段尤其明显。

4．DNAMarker中的小片段可能会在长时刻电泳以后条带变得很弱，应选择适合电泳时刻，或加大EB浓度。

5．在DNAMarker的贮存或利用进程中应幸免反复冻融，长期冷冻保留进程中，可能会形成DNA浓度梯度，利历时应在解冻后进行振荡混归并进行短暂离心。

琼脂糖凝胶电泳实验技术

来源：

时刻：

2020-5-19

摘要：

琼脂糖凝胶电泳是核酸分析经常使用的实验技术。

尽管很多参考书上均有该方式的介绍El’，但实际操作中的一些技术是无法从书本上取得的，本文介绍r琼脂糖凝胶电泳的实验技术，这些体会源自连年的研究生教学实践，对初涉分子生物学实验者有必然的指导意义。

关键词：

琼脂糖凝胶；电泳；技巧

有效预防医学2006年8月第13卷第4期PracticalPreventiveMedicine，Aug．2006，Vol13，No4

核酸分子是两性解离分子，在高于其等电点的电泳缓冲液中，其碱基不解离，而磷酸基团全数解离，核酸分子因此带负电荷，电泳时向正极迁移。

琼脂糖要紧从海洋植物琼脂中提取而来并经糖基化修饰，为一种聚合链线性分子，利用琼脂糖凝胶作为电泳支持介质，发挥分子筛功能，使得大小和构象不同的核酸分子的迁移率显现较大不同，从而达到分离的目的。

琼脂糖凝胶电泳操作简单、快速，通过调整其利用浓度，使得分辨率达到大多数实验的要求，因此成为分离、鉴定、纯化核酸分子的经常使用方式。

但操作进程中仍有很多要注意的问题。

1凝胶制作

1．1凝胶浓度配制凝胶的浓度据实验需要而变，一样在0．8％～2．0％之间，若是一次配制凝胶100ml，没用完的凝胶能够再次融化，但随着融化次数的增加，水分丢失也越多，凝胶浓度那么会愈来愈高，致使实验结果不稳固，补水方法：

一是在容器上标记煮胶前的刻度，煮胶后补充相应的水分至原刻度；二是在煮胶前称重，煮胶后补充水至原重量。

粗略一点的方式是通过量次较恒定的煮胶条件得出一个体会补水值。

以保证凝胶浓度大体维持在原浓度。

核酸染色剂溴化乙锭（ethidiumbromide）可加在融化的琼脂糖中，终浓度为0．5t*g／ml；也可在电泳终止后染色。

一、2梳板的选用一样每一个制胶模具均配有多个齿型不同的梳板，梳齿宽厚，形成的点样孑L容积较大，用于DNA片段回收实验等；相反，梳齿窄而薄，形成的点样孑L容积就较小，用于PCR产物、酶切产物鉴定等。

梳板的选择主若是看上样量的多少而定，一样来讲，上样量小时尽可能选择薄的梳板制胶，现在电泳条带致密清楚，便于结果分析。

另外，每次制胶时都要注意梳齿与底板的距离至少要1mm，不然，拔梳板时易损坏凝胶孑L底层，致使点样后样品渗漏。

固然，点样孑L的破坏还与拔梳板的时刻和方式有关，一样凝胶需冷却30min以上方可拔梳板，应急的情形下能够将成型的凝胶块放4℃冰箱中冷却15min左右，拔梳板的方式是将制胶槽放置在电泳槽中的电泳缓冲液中，然后垂直向上慢慢使劲，因为有液体的润滑作用，梳板易拔出且不易损坏点样孑L。

2点样

点样需加上样缓冲液，因为上样缓冲液中加了甘油或蔗糖增加密度，使样品沉入孑L底；指示样品的迁移过程，上样缓冲液中一般加了两种指示剂，溴酚兰和二甲苯青（值得注意的是指示剂并非染色剂，DNA染色剂是溴化乙锭，而且要在紫外光的激发下才能看见桔红色荧光）。

上样缓冲液储存液一般为6×（10×），表示其浓度为工作浓度的六倍。

使用时上样缓冲液应稀释到一倍浓度。

点样方法是将移液器基本垂直点样孑L，用另一只手帮助固定移液器下端，移液器枪头（Tip）尖端进入点样孑L即可将样品注入孑L内，千万不可将Tip尖插至孑L底，并点上适合的DNA分子量标准，所谓适合是指样品DNA分子量大小应基本在DNA分子量标准范围之内。

3电泳

将电泳仪的正极与电泳槽的正极相连，负极与负极相连，核酸带负电荷，从负极向正极移动。

电泳槽中电泳缓冲液与制胶用电泳缓冲液应相同，电泳缓冲液刚好没过凝胶1mm为宜，电泳缓冲液太多那么电流加大，凝胶发烧。

电泳时凝胶上所加电压一样不超过5v／cm（指的是正负电极之间的距离，而不是凝胶的长度），电泳时刻一样为3O～60min，依如实验需要也可作适当调整，电压增高，电泳时刻缩短，核酸条带相对来讲不够整齐，不够清楚；相反，电压降低，电泳时刻较长，核酸条带整齐清楚。

另外，若是电泳后样品泳动很慢或没泳动，请检查胶模两头的封口胶条是不是已去掉。

4结果分析

较成功的电泳结果是分子量标准条带整齐清晰，样品条带也整齐清晰，如果条带模糊暗淡，单从琼脂糖凝胶电泳角度来说，可能的原因：

溴化乙锭的质和量怎样?

溴化乙锭见光易分解，母液配制时间过长或保存不当（一般4℃避光保留一年内有效），或终浓度没达到0．5vg／ml；电泳槽中缓冲液利用次数过量，缓冲能力下降。

专门是TAE缓冲液，一样用2～3次就要改换，TBE缓冲液那么可利用10次左右。

实际工作中经常发现DNA分子量标准小片段模糊不清，那足因为琼脂糖凝胶浓度一般不会超过20％，较小的核酸片段在它的分辨范围之内，并且EB带正电荷，电泳时会向负傲移动，如果将凝胶置含EB（0．5#g／m1）的水溶液中30min，