第七章实验动物的基本技术和方法.ppt
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第七章第七章动物实验基本技术动物实验基本技术及方法及方法第一节第一节动物实验前的准备动物实验前的准备第二节实验动物的分组和标记第二节实验动物的分组和标记第三节第三节实验动物的抓取与固定实验动物的抓取与固定第四节第四节实验动物麻醉方法实验动物麻醉方法第五节第五节实验动物的给药、采血方法实验动物的给药、采血方法第一节第一节动物实验前的准备动物实验前的准备动物实验前要进行一系列的准备工作，包括理论准动物实验前要进行一系列的准备工作，包括理论准备、条件准备、预备实验。
备、条件准备、预备实验。
理论准备主要指了解动物实验的基础理论知识，选理论准备主要指了解动物实验的基础理论知识，选题立项和设定假设、研究计划和方案的制定、实验题立项和设定假设、研究计划和方案的制定、实验方法及实验动物的选择、参考文献的查阅等。
方法及实验动物的选择、参考文献的查阅等。
条件准备指仪器设备的备置和校准、药品的配制、条件准备指仪器设备的备置和校准、药品的配制、器械的准备、实验动物的购入、实验场所消毒与器器械的准备、实验动物的购入、实验场所消毒与器具配套等。
具配套等。
预备实验是正式实验的预演。
预备实验是正式实验的预演。
动物实验前的理论准备动物实验前的理论准备有关理论知识的学习有关理论知识的学习查找有关动物实验的基础知识查找有关动物实验的基础知识常用实验动物的生物学特点及其应用常用实验动物的生物学特点及其应用实验动物的选择原则实验动物的选择原则动物实验前的条件准备动物实验前的条件准备动物饲养室、动物实验室及饲养器具的动物饲养室、动物实验室及饲养器具的准备准备应检查动物笼器具的数量、饲养室卫生应检查动物笼器具的数量、饲养室卫生及消毒情况。
及消毒情况。
环境控制：
理化因素、居住因素、营养环境控制：
理化因素、居住因素、营养因素、生物因素。
因素、生物因素。
动物实验室及相关设施动物实验室及相关设施动物实验设施是指以研究、试验、教学、生物制品和药动物实验设施是指以研究、试验、教学、生物制品和药品生产等为目的，进行实验动物饲养、试验的建筑物、设品生产等为目的，进行实验动物饲养、试验的建筑物、设备以及运营管理在内的总和，包括：
一般动物实验环境设备以及运营管理在内的总和，包括：
一般动物实验环境设施、特殊动物实验设施、实验仪器设备。
施、特殊动物实验设施、实验仪器设备。
用于一般动物实验的环境根据对饲养动物的微生物控制程用于一般动物实验的环境根据对饲养动物的微生物控制程度和空气净化程度，分为：
度和空气净化程度，分为：
普通环境（普通环境（ConventionalconditionConventionalcondition）普通级动物实验普通级动物实验屏障环境（屏障环境（BarrierConditionBarrierCondition）SPFSPF级动物实验级动物实验隔离环境（隔离环境（Isolationcondition）Isolationcondition）悉生和无菌动物实验悉生和无菌动物实验
（一）普通动物实验观察室环境设施
（一）普通动物实验观察室环境设施条件要求条件要求11环境特点环境特点普通环境设施符合动物饲养的基本要求，不普通环境设施符合动物饲养的基本要求，不能完全控制传染因子；能完全控制传染因子；没有进行严格的环境没有进行严格的环境控制和微生物控制，但也应达到普通动物环境控制和微生物控制，但也应达到普通动物环境条件的基本要求；条件的基本要求；普通环境室内空气与外界普通环境室内空气与外界直接相通；直接相通；适用于普通动物实验的饲养观察适用于普通动物实验的饲养观察22饲养观察室内需要的基本设备饲养观察室内需要的基本设备
（二）清洁动物实验观察室环境设施条件要求
（二）清洁动物实验观察室环境设施条件要求11、清清洁洁级级动动物物实实验验要要求求饲饲养养在在温温湿湿度度恒恒定定的的（半半）屏障系统中。
屏障系统中。
其特点是其特点是：
与外界隔离，有缓冲间。
与外界隔离，有缓冲间。
物品经灭菌处理后进入屏障系统中。
物品经灭菌处理后进入屏障系统中。
实验人员进出要严格按屏障系统操作规程操作实验人员进出要严格按屏障系统操作规程操作22、屏障系统饲养观察室内的基本设备、屏障系统饲养观察室内的基本设备必需设备：
超净工作台必需设备：
超净工作台（三）三）SPFSPF级以上动物实验观察室环境设施级以上动物实验观察室环境设施条件要求条件要求1.SPF1.SPF级级以以上上的的动动物物观观察察饲饲养养在在屏屏障障系系统统或或隔隔离离系系统统中中其特点是其特点是：
空气、饲料、水、垫料和实验器具均应无菌空气、饲料、水、垫料和实验器具均应无菌.实验人员要严格按隔离系统操作规程操作。
实验人员要严格按隔离系统操作规程操作。
22隔离环境观察室内的基本设备隔离环境观察室内的基本设备必需设备：
超净工作台必需设备：
超净工作台空气层流架的操作规程空气层流架的操作规程使用前，使用前，清洁层流架的内环境，消毒，灭清洁层流架的内环境，消毒，灭菌。
菌。
进入层流架的一切物品必须经过灭菌处理。
进入层流架的一切物品必须经过灭菌处理。
打开层流架门之前，应加大层流架内的送风打开层流架门之前，应加大层流架内的送风量，以避免架内环境污染。
量，以避免架内环境污染。
实验操作时，须在超净工作台内进行。
实验操作时，须在超净工作台内进行。
IVCIVC系统的操作规程系统的操作规程11、IVCIVC系统的安装和消毒系统的安装和消毒22、IVCIVC系统上的动物饲养盒必须在超系统上的动物饲养盒必须在超净工作台净工作台内打开，无菌内打开，无菌操操作。
作。
33、实验完毕，动物饲养盒必须在超净、实验完毕，动物饲养盒必须在超净工作台内盖工作台内盖好上盖好上盖后，方能离开超净工作台，放在后，方能离开超净工作台，放在IVCIVC系统系统上。
上。
44、检查进气孔和排气孔是否成功对接、检查进气孔和排气孔是否成功对接二二.实验药品、试剂的准备实验药品、试剂的准备三三.实验器械的准备实验器械的准备实实验验器器械械准准备备得得充充分分、适适当当，有有助助于于实实验验的的顺顺利完成。
利完成。
不不同同类类型型、部部位位的的实实验验使使用用的的实实验验器器械械种种类类、数数量不尽一致。
量不尽一致。
实实验验器器械械包包括括完完成成实实验验所所需需要要的的检检测测仪仪器器、实实验验时动物的固定器械、动物外科手术器械。
时动物的固定器械、动物外科手术器械。
（一一）常用动物外科手术器械常用动物外科手术器械
（二）手术器械的消毒二）手术器械的消毒手手术术器器械械常常用用的的消消毒毒方方法法有有：
煮煮沸沸灭灭菌菌法法、高压蒸气灭菌法和化学药品灭菌法。
高压蒸气灭菌法和化学药品灭菌法。
（三三）敷敷料料、手手术术巾巾、手手术术衣衣、帽帽、口口罩罩的的消消毒毒.四四.手术人员的准备手术人员的准备为为了了保保证证无无菌菌手手术术的的进进行行,手手术术人人员员应应作作一一系系列列的的无无菌菌的的准准备备。
虽虽然然实实验验动动物物有有不不同同的的微微生生物物控控制制等等级级，但但手手术术人人员员不不管管做做什什么么等等级级动动物物的的手手术术，都都应应该该遵遵循循无无菌菌手手术术的的基基本本原原则则。
因因此此手手术术人员在术前应作下列准备人员在术前应作下列准备。
（一）手术所需人数
（一）手术所需人数
（二）
（二）更衣更衣（三）（三）手、臂的清洁和消毒手、臂的清洁和消毒特殊实验动物设施包括三类：
特殊实验动物设施包括三类：
感染（生物感染（生物危害）实验设施、化学污染动物实验设施、危害）实验设施、化学污染动物实验设施、放射性污染设施。
放射性污染设施。
生物危害特殊动物实验设施是指用病原体生物危害特殊动物实验设施是指用病原体对动物进行实验感染的一种特殊屏障设施。
对动物进行实验感染的一种特殊屏障设施。
目前，国内外根据病原微生物对人和动物目前，国内外根据病原微生物对人和动物的危害程度把感染动物实验设施分：
的危害程度把感染动物实验设施分：
BSL1（P1）BSL1（P1）、BSL2（P2）BSL2（P2）、BSL3（P3）BSL3（P3）、BSL4（P4）BSL4（P4）级。
级。
动物设施的防护水平：
实验操作和安全设备汇总动物设施的防护水平：
实验操作和安全设备汇总危险度等级危险度等级防护水平防护水平实验操作和安全设备实验操作和安全设备11级级ABSL-1ABSL-1限制出入，穿戴防护服和手套限制出入，穿戴防护服和手套22级级ABSL-2ABSL-1ABSL-2ABSL-1的操作加：
危险警告标志。
的操作加：
危险警告标志。
可产生气溶胶的操作应使用可产生气溶胶的操作应使用级或级或级级BSCBSC。
废物和饲养笼舍在清洗前先废物和饲养笼舍在清洗前先清除污染。
清除污染。
33级级ABSL-3ABSL-2ABSL-3ABSL-2的操作加：
准入控制。
所有的操作加：
准入控制。
所有操作均在操作均在BSCBSC内进行，并穿着特殊防内进行，并穿着特殊防护服。
护服。
44级级ABSL-4ABSL-3ABSL-4ABSL-3的操作加：
严格限制出入。
进的操作加：
严格限制出入。
进入前更衣。
配备入前更衣。
配备级级BSCBSC或正压服所或正压服所有废物在清除设施前需先清除污染。
有废物在清除设施前需先清除污染。
ABSL：
动物生物安全水平；动物生物安全水平；BSC：
生物安全柜。
生物安全柜。
动物的引进动物的引进在在动动物物实实验验的的各各项项准准备备工工作作中中，动动物物的的引引进进是是一一个个重重要要的的环环节节。
在在引引进进动动物物前前，应应确确定定引引进进动动物物的的种种类类、品品系系、规规格格、数数量量及及动动物物微微生生物物控控制制等等级级等等。
引引进进动动物物前前，应应检检查查各各项项准准备备工工作作是是否否就就绪绪，如如饲饲养养动动物物的的器器具具、器器材材是是否否准准备备好好，饲饲养养室室的的卫卫生生和和消消毒毒情情况况；此此外外，还还应应检检查查动动物物的的笼笼卡卡、实实验验记记录录本、垫料、饲料、秤等实验必须品是否准备好。
本、垫料、饲料、秤等实验必须品是否准备好。
购入动物时应注意以下几个方面的问题购入动物时应注意以下几个方面的问题:
1.1.购买动物时应向供应部门索取动物的相关资料，购买动物时应向供应部门索取动物的相关资料，如动物的遗传背景和微生物资料（动物质量合格证）如动物的遗传背景和微生物资料（动物质量合格证），以及动物品系、年龄、体重、胎次等。
，以及动物品系、年龄、体重、胎次等。
2.2.购买动物时应仔细观察动物的状态，对动物进行购买动物时应仔细观察动物的状态，对动物进行外观的健康检查：
皮毛是否有光泽、眼有没有眼屎、外观的健康检查：
皮毛是否有光泽、眼有没有眼屎、四肢有无肿胀溃烂、肛门周围有无脏物等。
同时要四肢有无肿胀溃烂、肛门周围有无脏物等。
同时要核对动物的数量等是否符合实验要求。
核对动物的数量等是否符合实验要求。
3.3.根据试验观察时间长短的需要，同时购入或领取根据试验观察时间长短的需要，同时购入或领取相应数量的饲料和垫料。
相应数量的饲料和垫料。
动物的运输动物的运输若是从外地购入动物若是从外地购入动物购入动物时，无论运输距离购入动物时，无论运输距离的远近，都应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以的远近，都应考虑运输环境的温度、湿度、饮食以及途中污染和窒息死亡等问题。
及途中污染和窒息死亡等问题。
需若是购入或领取清洁级以上的实验动物，需若是购入或领取清洁级以上的实验动物，应注应注意运输工具。
意运输工具。
应采取带有空气过滤膜的无菌运输罐应采取带有空气过滤膜的无菌运输罐或带过滤帽的笼盒运输，严格检查其密封状况。
或带过滤帽的笼盒运输，严格检查其密封状况。
新购进的动物最好不要立刻进行动物实验，应将动新购进的动物最好不要立刻进行动物实验，应将动物雌雄分开，并分笼在隔离区饲养一段时间，以便物雌雄分开，并分笼在隔离区饲养一段时间，以便动物得以恢复体能并适应新的环境。
动物得以恢复体能并适应新的环境。
第二节实验动物的分组和标记第二节实验动物的分组和标记在在实验前对动物进行随机分组和编号标记。
实验前对动物进行随机分组和编号标记。
分分组组方方法法随机化分组方法随机化分组方法单纯随机抽样单纯随机抽样均衡随机抽样均衡随机抽样随机化方法随机化方法抽签法：
用带数字的卡片（如纸牌）随机抽取。
抽签法：
用带数字的卡片（如纸牌）随机抽取。
若分两组，可用奇偶数为代表；若分四组，可用若分两组，可用奇偶数为代表；若分四组，可用44种花色为代表随机分组种花色为代表随机分组抽卡片法随机分组抽卡片法随机分组动物编号动物编号随随机机分分组组112233445566778899101011111212131314141515抽抽卡卡数数字字88664477101013137777662211114422121299除除以以33的的余余数数220011111122111100222211220000初初步步分分组组ccaabbbbbbccbbbbaaccccbbccaaaa表表中中bb组组为为66只只，aa组组为为44只只，需需再再调调整整。
再再重重新新抽抽一一卡卡片片，将将其其数数字字除除以以66得得余余数数为为几几即即挑挑第第几几只只放放入入第第三组。
三组。
随机数字表法：
基本同上随机数字表法：
基本同上动物的标记动物的标记良好的标记方法应保证号码清楚，简便易认、耐久适用，对良好的标记方法应保证号码清楚，简便易认、耐久适用，对动物无毒性，操作简便且长时间能够识别。
动物无毒性，操作简便且长时间能够识别。
染色法：
大、小鼠、豚鼠常用染色法：
大、小鼠、豚鼠常用3.5-53.5-5苦味酸溶液涂成黄色；苦味酸溶液涂成黄色；兔、猫、犬用兔、猫、犬用22硝酸银溶液涂成咖啡色。
硝酸银溶液涂成咖啡色。
烙印法：
大、中型动物烙印法：
大、中型动物针刺法：
兔针刺法：
兔号牌法：
犬、猴、猫等大动物号牌法：
犬、猴、猫等大动物穿耳孔法（耳缘剪孔）：
小鼠穿耳孔法（耳缘剪孔）：
小鼠断趾编号：
小鼠断趾编号：
小鼠剪尾编号：
大、小鼠，仅限与两组动物区分剪尾编号：
大、小鼠，仅限与两组动物区分被毛剪号：
大动物被毛剪号：
大动物笼子标号：
笼子标号：
小鼠的标记小鼠的标记213456789102030407050806090动物的管理动物的管理q经经常常性性管管理理：
保保证证动动物物正正常常饲饲养养所所必必须须的的一一切切条条件件。
每每天天观观察察动动物物的的状状态态并并认认真真做做好好记记录录，搞搞好好动动物物的的饮饮食食卫卫生生（每每日日添添加加新新鲜鲜的的饲饲料料和和饮饮水水，每每周周更更换换两两次次干干净净的的垫垫料料，做做好好常常规规消消毒毒工工作作），防止动物的非正常死亡或意外损伤。
防止动物的非正常死亡或意外损伤。
q特殊管理：
在给动物施加一定的实验因素时，如特殊管理：
在给动物施加一定的实验因素时，如麻醉、手术等，要对动物进行特殊管理。
麻醉、手术等，要对动物进行特殊管理。
“三分三分治，七分养治，七分养”，对动物也一样。
防止动物窒息，对动物也一样。
防止动物窒息，控制伤口感染，消毒实验环境，麻醉过程中实施控制伤口感染，消毒实验环境，麻醉过程中实施保温等措施在不同的情况下都需要进行保温等措施在不同的情况下都需要进行。
动物的性别判定动物的性别判定判断方法判断方法根据动物的生殖器与肛门之间的距离远近进行根据动物的生殖器与肛门之间的距离远近进行判断，距离长的是雄性，短的为雌性。
判断，距离长的是雄性，短的为雌性。
雄雌小鼠的性别判定第三节第三节实验动物的抓取与固定实验动物的抓取与固定注意自我防护注意自我防护动物在保定过程中如果逃逸，要及时抓捕。
动物在保定过程中如果逃逸，要及时抓捕。
避免损伤动物。
避免损伤动物。
小鼠的抓取与固定小鼠的抓取与固定手固定手固定-灌胃、腹腔给药、取血等灌胃、腹腔给药、取血等固定器固定固定器固定-静脉给药、尾静脉取血静脉给药、尾静脉取血固定板固定固定板固定-外科手术等外科手术等小鼠的抓取小鼠的固定大鼠的固定家兔的抓取与固定家兔的抓取与固定1.1.手固定手固定2.2.固定器固定固定器固定3.3.手术固定台固定手术固定台固定兔的抓取兔的固定豚鼠的抓取与固定豚鼠的抓取与固定豚鼠的抓取犬的抓取与固定犬的抓取与固定犬的捉拿保定方法较多。
未经训练和调教的犬性情凶恶，犬的捉拿保定方法较多。
未经训练和调教的犬性情凶恶，为防止在保定时被其咬伤，应对其头部进行保定。
捉拿犬为防止在保定时被其咬伤，应对其头部进行保定。
捉拿犬时可用铁钳固定犬的颈部，用长一米左右的绷带，打一个时可用铁钳固定犬的颈部，用长一米左右的绷带，打一个猪蹄扣套在鼻面部，使绷带两端位于下颌处并向后引至颈猪蹄扣套在鼻面部，使绷带两端位于下颌处并向后引至颈部打结固定。
还有一种使用网口的方法也较简单，即用皮部打结固定。
还有一种使用网口的方法也较简单，即用皮革、金属丝或棉麻制成的口网，套在犬口部，并将其附带革、金属丝或棉麻制成的口网，套在犬口部，并将其附带结于耳后颈部防止脱落。
结于耳后颈部防止脱落。
如实验需要麻醉时，可麻醉后去除铁钳仰卧于如实验需要麻醉时，可麻醉后去除铁钳仰卧于VV型犬实验型犬实验台上，拉出犬舌，最好用一塑料棒闩于犬上下臼齿之间并台上，拉出犬舌，最好用一塑料棒闩于犬上下臼齿之间并用绷带固定好。
拉出的犬舌上应放一块沾有生理盐水的纱用绷带固定好。
拉出的犬舌上应放一块沾有生理盐水的纱布，以免损伤犬舌。
头部和四肢的保定与兔相似，可根据布，以免损伤犬舌。
头部和四肢的保定与兔相似，可根据具体实验条件而定。
具体实验条件而定。
猕猴的抓取与固定猕猴的抓取与固定其它动物的抓取与固定其它动物的抓取与固定羊的羊的固定固定两栖类动物的抓取与固定两栖类动物的抓取与固定AB鸟类的抓取与固定鸟类的抓取与固定第四节第四节实验动物麻醉方法实验动物麻醉方法恰恰当当的的麻麻醉醉方方法法对对保保证证动动物物试试验验的的顺顺利利进进行行和和获获得得满满意意的的试试验验结结果果有有着着非非常常重重要要的的作作用用。
有有全全身身麻麻醉醉和和局局部部麻麻醉醉，局局麻麻仅仅适适用用大大、小小鼠鼠，沙沙鼠鼠，且且对对豚豚鼠鼠和和兔兔也也很很少少使用，在这里就不述。
使用，在这里就不述。
全全身身麻麻醉醉分分为为药药物物麻麻醉醉和和气气体体吸吸入入麻麻醉醉两两种种。
药药物物麻麻醉醉虽虽可可以以长长时时间间保保持持深深麻麻醉醉期期，但但如如不不精精确确的的考考虑虑动动物物的的种种类类、品品系系、年年龄龄、性性别别以以及及健健康康状状况况而而给给药药，就就会会导导致致动动物物的的死死亡亡；吸吸入入麻麻醉醉保保持持深深麻麻醉醉期期较较短短，还还必必须须辅以其它辅助麻醉方法，比较繁杂。
辅以其它辅助麻醉方法，比较繁杂。
麻醉前的准备麻醉前的准备在麻醉前几天要注意观察动物的采食情况。
对猫、在麻醉前几天要注意观察动物的采食情况。
对猫、犬、猪或非人灵长类大动物，在麻醉前犬、猪或非人灵长类大动物，在麻醉前8-12h8-12h应应禁食，以免麻醉或手术过程中发生呕吐，家兔和禁食，以免麻醉或手术过程中发生呕吐，家兔和啮齿类动物无呕吐反射，术前无需禁食。
动物在啮齿类动物无呕吐反射，术前无需禁食。
动物在麻醉前给予一定量的饮水。
麻醉前给予一定量的饮水。
大动物实验前要给予一定量的安定剂和阿脱品类大动物实验前要给予一定量的安定剂和阿脱品类药物，减轻动物的过度紧张和减少唾液分泌以利药物，减轻动物的过度紧张和减少唾液分泌以利于气管插管操作。
于气管插管操作。
根据实验部位和种类，给予动物脱毛等根据实验部位和种类，给予动物脱毛等。
常用麻醉药物常用麻醉药物全身麻醉药：
全身麻醉药：
乙醚乙醚戊巴比妥钠戊巴比妥钠水合氯醛水合氯醛氯安酮氯安酮局部麻醉剂：
局部麻醉剂：
普鲁卡因普鲁卡因/利多卡因利多卡因麻醉方法麻醉方法全身麻醉：
全身麻醉：
吸入麻醉吸入麻醉腹腔或静脉麻醉腹腔或静脉麻醉局部麻醉局部麻醉注意事项注意事项乙醚为易燃物品，要注意防火；乙醚为易燃物品，要注意防火；准确计算麻醉剂量，避免麻醉过量致使动物中毒死准确计算麻醉剂量，避免麻醉过量致使动物中毒死亡，有些动物存在个体差异，应具体对待。
亡，有些动物存在个体差异，应具体对待。
注射时，一般要求缓慢，随时观察动物的反应，适注射时，一般要求缓慢，随时观察动物的反应，适可而止，当动物肌肉松弛，角膜反射消失，足爪紧可而止，当动物肌肉松弛，角膜反射消失，足爪紧张性下降时，应慢速或停止注射药物。
张性下降时，应慢速或停止注射药物。
麻醉时需注意保温。
麻醉时需注意保温。
作慢性实验时，在寒冷季节，要将麻醉剂加温至动作慢性实验时，在寒冷季节，要将麻醉剂加温至动物体温水平。
物体温水平。
麻醉过量时应采取立即抢救措施麻醉过量时应采取立即抢救措施。
注意人员安全注意人员安全实验动物的除毛方法实验动物的除毛方法拔毛法：
拔毛法：
剪毛法：
急性实验常用剪毛法：
急性实验常用剃毛法：
剃毛法：
脱毛法：
脱毛液脱毛法：
脱毛液8%8%硫化钠水溶液硫化钠水溶液第五节第五节实验动物的给药、采血方法实验动物的给药、采血方法实验动物的给药方法有：
摄入法实验动物的给药方法有：
摄入法（用于消（用于消化道）、注射法、涂布法（用于皮肤）、化道）、注射法、涂布法（用于皮肤）、吸入法（用于呼吸道）等。
吸入法（用于呼吸道）等。
摄入法给摄入法给药药自动口服给药自动口服给药-将药物放入饲料或饮水中使动将药物放入饲料或饮水中使动物自由饮食。
物自由饮食。
强制灌胃法强制灌胃法-大小鼠：
用灌胃针头直接灌入胃大小鼠：
用灌胃针头直接灌入胃中中，小鼠，小鼠0.21ml0.21ml，大鼠大鼠14ml14ml，豚鼠豚鼠15ml15ml。
犬、兔、猫：
动物被固定后使用开口器固定在动犬、兔、猫：
动物被固定后使用开口器固定在动物口中，再用灌胃管插入胃中，推入药液即可。
物口中，再用灌胃管插入胃中，推入药液即可。
实验过程中要注意别将灌胃管误入气管实验过程中要注意别将灌胃管误入气管。
小鼠胃内小鼠胃内给药给药家兔胃管给家兔胃管给药药犬的犬的胃管给胃管给药药猪的猪的胃管给胃管给药药注射法给药注射法给药皮下注射：
一般选择在动物的背部进行皮下注射：
一般选择在动物的背部进行皮内注射：
局部脱毛消毒后用结核菌素注射器皮内注射：
局部脱毛消毒后用结核菌素注射器注射注射肌肉注射：
一般选择肌肉发达、无大血管的部肌肉注射：
一般选择肌肉发达、无大血管的部位，多选臀部位，多选臀部腹腔注射：
腹腔注射：
静脉注射：
大、小鼠常采用尾静脉注射静脉注射：
大、小鼠常采用尾静脉注射豚鼠采用前肢皮下头静脉或后肢股静脉豚鼠采用前肢皮下头静脉或后肢股静脉兔兔-耳缘静脉耳缘静脉犬犬-前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉小鼠尾静脉给小鼠尾静脉给药药小鼠皮下注射小鼠腹腔注射小鼠腹腔注射兔的静脉给药其他给药途径其他给药途径呼吸道给药：
粉尘、气体、蒸汽或雾状药呼吸道给药：
粉尘、气体、蒸汽或雾状药物、毒气等需要呼吸道给药。
物、毒气等需要呼吸道给药。
皮肤给药：
外用药物、致敏试验、局部毒皮肤给药：
外用药物、致敏试验、局部毒性等实验需进行皮肤给药。
性等实验需进行皮肤给药。
脑内给药：
微生物学实验脑内给药：
微生物学实验动物实验中药物剂量的换算动物实验中药物剂量的换算动物实验所用的药物剂量一般按毫克动物实验所用的药物剂量一般按毫克/千克体千克体重计算。
若无相关资料，一般先用小鼠半数致死重计算。
若无相关资料，一般先用小鼠半数致死量的量的1/101/101/51/5进行尝试，也可参考其他动物或进行尝试，也可参考其他动物或人的剂量用体表面积之比来换算。
一般说来，动人的剂量用体表面积之比来换算。
一般说来，动物的耐受性比人大，因此单位体重的用药量比人物的耐受性比人大，因此单位体重的用药量比人要大，可按以下比例换算：
如人的用药量为要大，可按以下比例换算：
如人的用药量为11，小鼠、大鼠为小鼠、大鼠为2525505
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