药品质量标准分析方法验证指导原则Word格式.docx

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在同一个实验室，不同时间由不同分析人员用不同设备测定结果之间的精密度，称为中间精密度；

在不同实验室由不同分析人员测定结果之间的精密度，称为重现性。

含量测定和杂质的定量测定应考虑方法的精密度。

1．重复性在规定范围内，至少用9个测定结果进行评价，例如，设计3个不同浓度，每个浓度各分别制备3份供试溶液，进行测定。

或将相当于100%浓度水平的供试品溶液，用至少测定6次的结果进行评价。

2．中间精密度为考察随机变动因素对精密度的影响，应设计方案进行中间精密度试验。

变动因素为不同日期、不同分析人员、不同设备。

3．重现性当分析方法将被法定标准采用时，应进行重现性试验，例如，建立药典分析方法时，通过协同检验得出重现性结果。

协同检验的目的、过程和重现性结果均应记载在起草说明中。

应注意重现性试验用的样品本身的质量均匀性和贮存运输中的环境影响因素，以免影响重现性结果。

4．数据要求均应报告标准偏差、相对标准偏差和可信限。

三、专属性

专属性系指在其他成分（如杂质、降解产物、辅料等）可能存在下，采用的方法能正确测定出被测物的特性。

鉴别反应、杂质检查和含量测定方法，均应考察其专属性。

如方法不够专属，应采用多个方法予以补充。

1．鉴别反应应能与可能共存的物质或结构相似化合物区分。

不含被测成分的样品，以及结构相似或组分中的有关化合物，应均呈负反应。

2．含量测定和杂质测定色谱法和其他分离方法，应附代表性图谱，以说明方法的专属性，并应标明诸成分在图中的位置。

色谱法中的分离度应符合要求。

在杂质可获得的情况下，对于含量测定，试样中可加入杂质或辅料，考察测定结果是否受干扰，并可与未加杂质或辅料的试样比较测定结果。

对于杂质测定，也可向试样中加入一定量的杂质，考察杂质能否得到分离。

在杂质或降解产物不能获得的情况下，可将含有杂质或降解产物的试样进行测定，与另一个经验证了的或药典方法比较结果。

用强光照射，高温，高湿，酸（碱）水解或氧化的方法进行加速破坏，以研究可能的降解产物和降解途径。

含量测定方法应比对二法的结果，杂质检查应比对检出的杂质个数，必要时可采用二极管阵列检测和质谱检测，进行峰纯度检查。

四、检测限

检测限系指试样中被测物能被检测出的最低量。

药品的鉴别试验和杂质检查方法，均应通过测试确定方法的检测限。

常用的方法如下。

1．非仪器分析目视法用已知浓度的被测物，试验出能被可靠地检测出的最低浓度或量。

2．信噪比法用于能显示基线噪声的分析方法，即把已知低浓度试样测出的信号与空白样品测出的信号进行比较，算出能被可靠地检测出的最低浓度或量。

一般以信噪比为3∶1或2∶1时相应浓度或注入仪器的量确定检测限。

3．数据要求应附测试图谱，说明测试过程和检测限结果。

五、定量限

定量限系指样品中被测物能被定量测定的最低量，其测定结果应具一定准确度和精密度。

杂质和降解产物用定量测定方法研究时，应确定方法的定量限。

常用信噪比法确定定量限。

一般以信噪比为10∶1时相应浓度或注入仪器的量确定定量限。

六、线性

线性系指在设计的范围内，测试结果与试样中被测物浓度直接呈正比关系的程度。

应在规定的范围内测定线性关系。

可用一贮备液经精密稀释，或分别精密称样，制备一系列供试样品的方法进行测定，至少制备5份供试样品。

以测得的响应信号作为被测物浓度的函数作图，观察是否呈线性，再用最小二乘法进行线性回归。

必要时，响应信号可经数学转换，再进行线性回归计算。

数据要求：

应列出回归方程、相关系数和线性图。

七、范围

范围系指能达到一定精密度、准确度和线性，测试方法适用的高低限浓度或量的区间。

范围应根据分析方法的具体应用和线性、准确度、精密度结果和要求确定。

原料药和制剂含量测定，范围应为测试浓度的80%～120%；

制剂含量均匀度检查，范围应为测试浓度的70%～130%，根据剂型特点，如气雾剂和喷雾剂，范围可适当放宽；

溶出度或释放度中的溶出量测定，范围应为限度的±

20%，如规定了限度范围，则应为下限的-20%至上限的＋20%；

杂质测定，范围应根据初步实测，拟订为规定限度的±

20%.如果含量测定与杂质检查同时进行，用百分归一化法，则线性范围应为杂质规定限度的-20%至含量限度（或上限）的＋20%.

八、耐用性

耐用性系指在测定条件有小的变动时，测定结果不受影响的承受程度，为把方法用于常规检验提供依据。

开始研究分析方法时，就应考虑其耐用性。

如果测试条件要求苛刻，则应在方法中写明。

典型的变动因素有：

被测溶液的稳定性、样品的提取次数、时间等。

液相色谱法中典型的变动因素有：

流动相的组成和pH值、不同厂牌或不同批号的同类型色谱柱、柱温、流速等。

气相色谱法变动因素有：

不同厂牌或批号的色谱柱、固定相、不同类型的担体、柱温、进样口和检测器温度等。

经试验，应说明小的变动能否通过设计的系统适用性试验，以确保方法有效。

附表4检验项目和验证内容

内容项目

鉴别

杂质测定

含量测定及溶出量测定

定量

限度

准确度

－

＋

精密度

重复性

中间精密度

＋①

专属性②

检测限

－③

定量限

线性

范围

耐用性

①已有重现性验证，不需验证中间精密度。

②如一种方法不够专属，可用其他分析方法予以补充。

③视具体情况予以验证。

附录三药物制剂人体生物利用度和生物等效性试验指导原则

生物利用度是指剂型中的药物被吸进入血液的速率和程度。

生物等效性是指一种药物的不同制剂在相同的试验条件下，给以相同的剂量，反映其吸收速率和程度的主要动力学参数没有明显的统计学差异。

口服或其他非脉管内给药的制剂，其活性成分的吸收受多种因素的影响，包括制剂工艺、药物粒径、晶型或多晶型，处方中的赋形剂、黏合剂、崩解剂、润滑剂、包衣材料、溶剂、助悬剂等。

生物利用度是保证药品内在质量的重要指标，而生物等效性则是保证含同一药物的不同制剂质量一致性的主要依据。

生物利用度与生物等效性概念虽不完全相同，但试验方法基本一致。

为了控制药品质量，保证药品的有效性和安全性，特制定本指导原则。

何种药物制剂需要进行生物等效性或生物利用度试验，可根据有关部门颁布的法规要求进行。

进行药物制剂人体生物利用度和生物等效性试验的临床实验室和分析实验室，应提供机构名称以及医学、科学或分析负责人的姓名、职称和简历。

一、生物样品分析方法的基本要求

生物样品中药物及其代谢产物定量分析方法的专属性和灵敏度，是生物利用度和生物等效性试验成功的关键。

首选色谱法，如HPLC、GC以及GC-MS、LC-MS、LC-MS-MS联用技术，一般应采用内标法定量。

必要时也可采用生物学方法或生物化学方法。

由于生物样品取样量少、药物浓度低、内源性物质（如无机盐、脂质、蛋白质、代谢物）及个体差异等多种因素影响生物样品测定，所以必须根据待测物的结构、生物介质和预期的浓度范围，建立适宜的生物样品分析方法，并对方法进行验证。

1．专属性必须证明所测定的物质是原形药物或特定的活性代谢物，内源性物质和相应的代谢物不得干扰样品的测定。

对于色谱法至少要提供空白生物样品色谱图、空白生物样品外加对照物质色谱图（注明浓度）及用药后的生物样品色谱图。

对于复方制剂应特别加强专属性研究，以排除可能的干扰。

对于LC-MS和LC-MS-MS方法，应着重考察基质效应。

2．标准曲线与线性范围根据所测定物质的浓度与响应的相关性，用回归分析方法获得标准曲线。

标准曲线高低浓度范围为线性范围，在线性范围内浓度测定结果应达到试验要求的精密度和准确度。

必须用至少6个浓度建立标准曲线，应使用与待测样品相同的生物介质，线性范围要能覆盖全部待测浓度，不允许将线性范围外推求算未知样品的浓度。

标准曲线不包括零点。

3．精密度与准确度要求选择3个浓度的质控样品同时进行方法的精密度和准确度考察。

低浓度选择接近定量下限（LLOQ），在LLOQ的3倍以内；

高浓度接近于标准曲线的上限；

中间选一个浓度。

每一浓度至少测定5个样品。

精密度用质控样品的日内和日间相对标准差（RSD）表示，RSD一般应小于15%，在LLOQ附近RSD应小于20%。

准确度是指用特定方法测得的生物样品浓度与真实浓度的接近程度，一般应在85%～115%范围内，在LLOQ附近应在80%～120%范围内。

4．定量下限定量下限是标准曲线上的最低浓度点，要求至少能满足测定3～5个半衰期时样品中的药物浓度，或cmax的1/10～1/20时的药物浓度，其准确度应在真实浓度的80%～120%范围内，RSD应小于20%，信噪比应大于5.

5．样品稳定性根据具体情况，对含药生物样品在室温、冰冻和冻融条件下以及不同存放时间进行稳定性考察，以确定生物样品的存放条件和时间。

6．提取回收率应考察高、中、低3个浓度的提取回收率，其结果应一致、精密和可重现。

7．质控样品质控样品系将已知量的待测药物加入到生物介质中配制的样品，用于质量控制。

8．质量控制应在生物样品分析方法验证完成之后开始测试未知样品。

每个未知样品一般测定一次，必要时可进行复测。

生物样品每天测定时应建立新的标准曲线，并随行测定高、中、低3个浓度的质控样品，每个浓度多重样本。

每个分析批质控样数不得少于未知样品数的5%，且不得少于6个。

质控样品测定结果的偏差一般应小于15%，低浓度点偏差一般应小于20%，最多允许33%的质控样品结果超限。

且不得均在同一浓度。

如不合格，则该分析批样品测试结果作废。

9．测试结果应详细描述所用的分析方法，引用已有的参考文献，提供每天的标准曲线、质控样品及未知样品的结果计算过程。

还应提供全部未知样品分析的色谱图，包括全部相关的标准曲线和质控样品的色谱图，以供审查。

二、普通制剂

（—）受试者的选择

对参加生物利用度和生物等效性研究的受试者有一些特殊的要求。

1．受试者条件一般情况选健康男性，特殊情况说明原因，如妇科用药。

儿童用药应在成人中进行。

具体要求如下。

（1）性别为男性。

（2）年龄一般要求18～40岁；

同一批试验年龄不宜相差10岁或以上。

（3）体重与标准体重相差±

10%，同一批试验受试者体重应相近，体重单位以千克（kg）计。

（4）身体健康，无心、肝、肾、消化道、代谢异常、神经系统疾病及代谢异常等病史，并进行健康体检（如检查心电图、血压、心率、肝功能、肾功能、肺功能和血常规等），应无异常。

特殊药物还需要检查相应的其他指标，如降血糖药物应检查血糖水平。

（5）无过敏史，无体位性低血压史。

（6）两周前至试验期间不服用其他任何药物，试验期间禁烟、酒及含咖啡因的饮料。

（7）试验单位应与志愿受试者签署知情同意书。

2．受试者的例数受试者必须具有足够的例数，按有关规定要求18～24例，必要时可增加受试者人数。

（二）参比制剂

生物利用度和生物等效性研究，必须有参比制剂作对照。

参比制剂的安全性和有效性应该合格，参比制剂选择的原则为：

进行绝对生物利用度研究时选用上市的静脉注射剂为参比制剂；

进行相对生物利用度或生物等效性研究时，应选择国内外同类上市主导产品作为参比制剂。

（三）受试制剂

受试制剂应为符合临床应用质量标准的放大试验产品，应提供受试制剂和参比制剂的体外溶出度比较（n≥12）数据，以及稳定性、含量或效价等数据。

个别药物尚需提供多晶型及光学异构体资料。

（四）试验设计

对于两个制剂，即一个为受试制剂，另一个为参比制剂，通常采用双周期两制剂交叉试验设计，以抵消试验周期和个体差异对试验结果的影响。

即将受试者随机分成两组，一组先服用受试制剂，后服用参比制剂；

另一组先服用参比制剂，后服用受试制剂。

两个试验周期之间为洗净期，洗净期应不少于药物的10个半衰期，通常为1周或2周。

对于3个制剂，即两个受试制剂和一个参比制剂，此时宜采用3制剂、3周期的二重3×

3拉丁方式试验设计。

每个周期之间的洗净期通常为1周或2周。

取样点对试验的可靠性起着重要作用。

服药前取空白血样。

一个完整的血药浓度-时间曲线应包括吸收相、分布相和消除相。

总采样（不包括空白）不少于12个点。

取样—般持续到3～5个半衰期或血药浓度为cmax的1/10～1/20.

在不能用血药浓度测定时，可采用其他生物样品进行测定，如尿液，但试验药品与试验方案应符合生物利用度测定要求。

（五）服药剂量确定

进行生物利用度与生物等效性研究时，药物剂量一般应与临床用药剂量一致。

受试制剂和参比制剂最好应用等剂量。

如需使用不相等剂量时，应说明原因，若药物在此剂量范围内符合线性动力学规律，则计算生物利用度时应以剂量校正。

（六）研究过程

受试者禁食过夜（10小时以上），于次日早晨空腹服用受试制剂或参比制剂，用250ml温开水送服。

服药后2小时后方可饮水，4小时后进统一标准餐。

受试者于服药后，按要求在不同时间取静脉血。

根据需要取血样（血浆、血清或全血），并冷冻贮存，备测。

受试者服药后避免剧烈活动。

取血样在临床监护室中进行。

如受试者有不良反应时应有应急措施，必要时应停止试验。

生物等效性首选在禁食状态下进行，但对于空腹给药生物利用度非常低或者出现胃肠道功能紊乱等强烈副作用药物，可改为餐后给药进行生物等效性试验。

（七）药物动力学分析

将所得的各受试者不同时间样品的血药浓度数据及平均值与标准差列表并作图，然后分别对各受试者进行有关药物动力学参数求算，并求出参数的平均值和标准差。

主要的药物动力学参数为消除半衰期（t1/2）、峰浓度（cmax）、峰时间（tmax）和血药浓度-时间曲线下面积AUC，cmax、tmax用实测值表示，不得内推。

AUC0→tn（零到t时间的血药浓度-时间曲线下面积）用梯形法或对数梯形法计算，tn是最后一次可测浓度的取样时间。

AUC0→∞（零到无限大时间的血药浓度-时间曲线下面积）按下式计算，AUC0→∞=AUC0→tn+Ctn/λz.Ctn是最后一点的血药浓度，λz是末端消除速度常数。

λz用对数血药浓度-时间曲线线末端直线部分的斜率求得。

t1/2λz.求出。

对于人体生物利用度试验，要求从零时间至最终采血点（AUC0→tn/AUC0→∞）×

100%＞80%。

（八）生物利用度计算

1．单次给药生物利用度F应用各个受试者的AUC0→tn和AUC0→∞分别计算，并求其均值与标准差。

受试制剂（T）和参比制剂（R）剂量相同时

F=（AUC0→tn）T/（AUC0→tn）R×

100%

F=（AUC0→∞）T/（AUC0→∞）R×

若受试药物具有线性药物动力学特征时，受试制剂和参比制剂也可采用不同剂量，并按下式予以校正：

F=（AUC0→tn）T×

DR/[（AUC0→tn）R×

DT]×

F=（AUC0→∞）T×

DR/[（AUC0→∞）R×

式中，DR为参比制剂的给药剂量；

DT为受试制剂的给药剂量。

受试制剂和参比制剂中药物的剂量，应按实测含量计算。

代谢产物数据：

对于前体药物，或由于药物在体内代谢极快，无法测定血中原形药物，此时可采用相应的活性代谢物进行生物利用度研究。

生物利用度的计算以AUC0→tn为主，参考AUC0→∞。

2．多次给药在下列情况下，可考虑多次给药达稳态后，用稳态血药浓度估算生物利用度：

（1）药物吸收程度相差不大，但吸收速度有较大差异；

（2）生物利用度个体差异大；

（3）缓释、控释制剂；

（4）当单次给药后原药或代谢产物浓度很低，不能用相应的分析方法准确测得。

多次给药，经等间隔（τ）给药至稳态后，在某一给药间隔时间内，多次采集样品，分析药物浓度，计算在稳态剂量间隔期间从0～τ时间的血药浓度-时间曲线下的面积（AUCSS）。

当受试制剂和参比制剂剂量相等时，即可用下式求得相对生物利用度

式中，

和

分别代表受试制剂与参比制剂稳态条件下的AUC.

（九）生物等效性评价（药物动力学数据统计分析）

应对药物动力学主要参数（如AUC、cmax）进行统计分析，作出生物等效性评价。

统计分析先将AUC和cmax数据进行对数转换，然后进行方差分析与双单侧t检验处理，若受试制剂和参比制剂参数AUC的90%可信限落在参比制剂80%～125%范围内，且cmax几何均值比的90%置信区间在75%～133%范围内，则判定受试制剂与参比制剂生物等效。

tmax可用非参数法进行检验。

为了便于生物等效性比较，每一受试者服用不同制剂的药物动力学参数（AUC和cmax）应平行列表，还要列出受试制剂（T）和参比制剂（R）参数之间的比值（T/R）和比值的对数。

除了计算它们的算术均值外，还应该计算几何均值，都应该包括在报告中。

（十）临床报告、副作用和不良反应

受试者病史、身体检查和化验结果，以及与研究相关的可能副作用和不良反应，均应报告。

三、缓释、控释制剂

缓释、控释制剂的生物利用度与生物等效性试验应在单次给药与多次给药两种条件下进行。

进行该类制剂生物等效性试验的前提是应进行至少3种溶出介质的两者体外溶出行为同等性研究。

（一）单次给药双周期交叉试验

本试验目的是在受试者空腹条件下，比较受试制剂与参比制剂的吸收速率和吸收程度，确认受试缓释、控释制剂与参比制剂是否为生物等效，并具有缓释、控释特征。

1．受试者要求与选择标准同普通制剂。

2．参比制剂一般应选用国内外同类缓释、控释制剂主导产品为参比制剂。

若系创新的缓释、控释制剂，则应选择国内外上市的同类普通制剂主导产品为参比制剂。

3．试验过程同普通制剂单次给药。

4．提供数据

（1）列出各受试者的血药浓度-时间数据、血药浓度平均值与标准差，列表并作图。

（2）计算各受试者药物动力学参数并求平均值与标准差。

cmax、tmax、AUC0→tn、AUC0→∞和F；

尽可能提供其他参数如平均滞留时间（MRT）等。

（3）临床报告、副作用和不良反应与普通制剂的要求相同。

5．生物等效性评价若受试缓释、控释制剂与参比缓释、控释制剂比较，AUC、cmax符合生物等效性要求，tmax统计上应无显著差异，则认为两种制剂生物等效。

若受试缓释、控释制剂与普通制剂比较，AUC符合生物等效性要求（同普通制剂AUC生物等效性评价）则认为吸收程度生物等效；

若cmax有所降低，tmax有所延长，并按“二、普通制剂（九）”进行统计分析，其结果至少有一项指标不符合生物等效时，则表明受试制剂有缓释或控释特征。

（二）多次给药双周期交叉试验

本试验目的是研究受试缓释、控释制剂与参比制剂多次给药达稳态的速率与程度以及稳态血药浓度的波动情况。

1．受试者要求及选择标准同单剂量项下，可继续用单剂量的受试者。

受试者至少为18～24例，必要时可以适当增加。

参比制剂同单次给药。

2．试验设计及过程采用随机交叉试验设计方法，多次服用受试制剂与参比制剂。

对于受试制剂，用拟定的用药剂量和方案。

每日1次用药的制剂，受试者应在空腹10小时以后晨间服药，服药后继续禁食2～4小时；

每日2次的制剂，首剂应空腹10小时以后服药，服药后继续禁食2～4小时，第二次应在餐前或餐后2小时服药，服药后继续禁食2小时。

每次用250ml温开水送服，一般要求服药1～2小时后，方可再饮水。

以普通制剂为参比制剂时，按常规用药剂量与方法，但应与缓释、控释受试制剂每日总剂量相等。

3．取样点的设计连续服药时间至少经过7个消除半衰期后，连续测定3天的谷浓度（cmin），以确定血药浓度是否达稳态。

取样点最好安排在不同天的同一时间（一般清晨），以抵消时辰对药物动力学的影响，且便于比较。

达稳态后，在最后一剂量间隔内，参照单次给药采样时间点设计，采取足够血样点，测定该间隔内稳态血药浓度-时间数据，计算有关的药物动力学参数如峰浓度、峰时间、稳态平均血药浓度（cav）和

等。

4．药物动力学数据处理

（2）求出各受试者的cmax、cmin、tmax、cav、

及各参数的平均值与标准差。

cmax、tmax按实测值，cmin一般按最后一剂量间隔服药前与τ时间实测谷浓度的平均值计算，

按梯形法计算。

稳态平均血药浓度可用下式求出

cav=

是在稳态剂量间隔期间从0～τ时间的血药浓度-时间曲线下的面积；

τ是服药间隔时间。

（3）计算稳态时的生物利用度

F=（

）T/（

）R×

）T×

DR/（

DT×

（4）血药浓度的波动度DF（%）可用下式计算

DF=（cmax-cmin）/cav×

式中，cmax是稳态给药期间最后一个给药剂量的实测药物峰浓度值；

cmin是稳态给药期间最后一个给药剂量实测的谷浓度。

当参比制剂亦为缓释制剂时，则受试制剂的DF/τ值为不大于参比制剂DF/τ值的143%，当参比制剂为普通制剂时，受试制剂的DF/τ值应显著小于普通制剂。

（5）统计学分析和生物等效性评价

与缓释、控释制剂单次给药的方法和要求相同。

（6）临床报告、副作用和不良反应

与普通制剂的要求相同。

附录四原料药与药物制剂稳定性试验指导原则

稳定性试验的目的是考察原料药或药物制剂在温度、湿度、光线的影响下随时间变化的规律，为药品的生产、包装、贮存、运输条件提供科学依据