金耳晶等检验规程Word下载.docx
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4.3.2大肠菌群按照《大肠菌群检验标准操作规程》规定的方法检验大肠菌群应≤40MPN/100g
4.3.3霉菌按照《霉菌、酵母检验标准操作规程》规定的方法检验
霉菌应≤50cfu/g
4.3.4致病菌(沙门氏菌、志贺菌、金黄色葡萄球菌)
不得检出。
润味宝(猴头菇制品)
检验标准操作规程
建立润味宝(猴头菇制品)原料、中间产品和成品的检验标准操作规程
2.范围:
润味宝(猴头菇制品)原料、中间产品和成品检验的标准操作
3.责任人:
检验人员
4.1性状:
棕色或红棕色颗粒,具有该产品固有的滋味及气味,无异味,无肉眼可见杂质。
4.2理化检验
4.2.1净含量:
按照《颗粒制品净含量检验标准操作规程》规定的方法检验。
润味宝净含量为5g.限度为4.7g~5.5g
表1:
颗粒制品净含量表
7.5%
0.30g或0.30g以上
限>6.0%;
4.2.2粗多糖:
按照《粗多糖检验标准操作规程》标准检验。
粗多糖(以葡萄糖计)≥15.0%
4.2.3水分:
按照《水分检验标准操作规程》规定的方法检验。
水分≤5%
4.2.4灰分:
按照《灰分检验标准操作规程》规定的方法检验。
灰分≤8%
4.2.5砷:
按照《总砷检验标准操作规程》规定的方法检验。
砷(以As计)≤0.5mg/Kg
4.2.6铅:
按照《铅检验标准操作规程》规定的方法检验。
铅(以Pb计)≤1.0mg/Kg
4.2.7铜:
按照《铜检验标准操作规程》规定的方法检验。
铜(以Cu计)≤5.0mg/Kg
4.3微生物检验:
4.3.1菌落总数:
按照《菌落总数检验标准操作规程》规定的方法检验。
菌落总数≤1000cfu/g
4.3.2大肠菌群:
按照《大肠菌群检验标准操作规程》规定的方法检验。
大肠菌群≤40MPN/100g
4.3.3霉菌:
按照《霉菌、酵母菌检验标准操作规程》规定的方法检验。
霉菌≤50cfu/g
4.3.4致病菌(沙门氏菌、志贺菌、金黄色葡萄球菌)
不得检出。
胶囊净含量
1.目的:
建立胶囊净含量检验标准操作规程
胶囊净含量检验的标准操作
4.1取试样20粒,分别精密称定质量后,倾出内容物,囊壳内用脱脂棉拭净,再分别称定囊壳质量,求出每粒内容物的净含量与平均净含量。
每粒的净含量与平均净含相比较,超出限度的胶囊不得多于2粒,并不得有1粒超出限度1倍。
参考标准:
JJF1070—2005定量包装商品净含量计量检验规则
润伉宝(姬松茸)
1.目的:
建立润伉宝(姬松茸)原料、中间产品和成品的检验标准操作规程
2.范围:
润伉宝(姬松茸)原料、中间产品和成品检验的标准操作
3.责任人:
4.内容
4.1性状:
原料为棕色或棕褐色颗粒;
中间产品和成品的胶囊应完整,无破损,无瘪囊。
内容物为棕色或棕褐色颗粒,都具有该产品固有的滋味及气味,无异味,无肉眼可见杂质。
4.2理化检验
4.2.1净含量按照《胶囊净含量检验标准操作规程》规定的方法检验.
金耳晶净含量为0.30g.
胶囊净含量限度表
平均重
4.2.2水份按照《水分检验标准操作规程》规定的方法检验
水分应≤7.0%
4.2.3灰份按照《灰分检验标准操作规程》规定的方法检验
灰分应≤6.0%
4.2.4粗多糖按照《粗多糖检验标准操作规程》规定的方法检验
粗多糖(以葡萄糖计)应≥15.0%
4.2.5总砷按照《总砷检验标准操作规程》规定的方法检验
总砷(以As计)应≤1.0mg/kg
4.2.6铅按照《铅检验标准操作规程》规定的方法检验
铅(以Pb计)应≤1.5mg/kg
4.2.7汞按照《汞检验标准操作规程》规定的方法检验
汞(以Hg计)应≤0.3mg/kg
4.3微生物检验
4.3.1菌落总数按照《菌落总数检验标准操作规程》规定的方法检验
4.3.2大肠菌群按照《大肠菌群检验标准操作规程》规定的方法检验大肠菌群应≤40MPN/100g
4.3.3霉菌、酵母按照《霉菌、酵母检验标准操作规程》规定的方法检验
霉菌、酵母应≤25cfu/g
4.3.4致病菌(指肠道致病菌及致病性球菌)
颗粒制品净含量检验标准操作规程
建立颗粒制品净含量检验标准操作规程
颗粒制品净含量检验的标准操作
4.1取试样10袋,分别精密称定质量后,倾出内容物,用软纸擦拭干净包装袋内壁后,再分别称定包装袋质量,求出每袋内容物的净含量与平均净含量。
每袋的净含量与平均净含相比较,超出限度的不得多于1袋。
粗多糖检验标准操作规程
建立粗多糖检验标准操作规程
粗多糖检验的标准操作
4.1样品的预处理
4.1.1准确称取试样0.5g于250ml碘量瓶中,加水100ml,在沸水浴中提取2小时,离心,保留上清液,沉淀物加水50ml重复提取一次,离心,其上清液与第一次的合并,加入2倍体积的95%乙醇沉淀多糖,用热水溶解多糖,溶解后,将多糖溶液移1000ml容量瓶中定容(使试样液含糖量在0.75mg/ml之间),作为样品液备用待测。
4.2葡萄糖标准曲线制作
4.2.1准确吸取葡萄糖标准溶液(0.1mg/ml临用新制)0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0ml于10ml具塞比色管中,加水至1.0ml,加入蒽酮试剂5ml,充分混匀,在沸水浴中加热10分钟,取出在流水中冷却20分钟后,在620nm波长下进行比色,以蒽酮试剂为空白调零,测定各管的吸光度值。
以葡萄糖标准液浓度为横坐标,吸光度值(OD)为纵坐标,制作葡萄糖标准曲线,具体操作步骤按表1进行:
表1葡萄糖标准曲线绘制步骤表
单位
0(空白)
1
2
3
4
5
6
7(样品)
标准溶液
ml
0.1
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
蒸馏水
0.9
0.2
样品液
蒽酮试液
沸水浴中煮沸腾10分钟,自来水冷却20分钟后,进行比色
吸光度
4.3样品测定
4.3.1准确吸取样品待测液1.0ml(含糖量75µ
g),按标准曲线绘制步骤操作,于620nm波长测定吸光度值,根据吸光度值从标准曲线上查得样品液含糖量。
4.4计算
4.4.1粗多糖按公式计算
m1×
n
粗多糖(﹪)=————×
100%
m×
100
式中:
m1——由标准曲线查得样品液含量,mg/ml;
n——样品稀释倍数;
m——样品的质量,g。
Q/320125RZ008—2007润伉宝(姬松茸)胶囊附录A
砷检验标准操作规程
建立砷检验标准操作规程
砷检验的标准操作
4.1试样消解
称取试样2.0g。
(精确至小数点后第二位)于50ml坩埚中,同时做两份试剂空白。
加150g/L硝酸镁10ml混匀,低热蒸干,将氧化镁1g仔细覆盖在干渣上,于电炉上炭化至无黑烟,移入550℃高温炉灰化4小时。
取出放冷,小心加入(1+1)盐酸10ml以中和氧化镁并溶解灰分,转入25ml容量瓶中,向容量瓶中加入50g/L硫脲2.5ml,补加水至刻度,混匀备测。
4.2标准制备
取25ml容量瓶6只,依次准确加入1µ
g/ml砷使用标准液0,0.05,0.2,0.5,2.0,5.0ml(各相当于砷浓度0、2.0、8.0、20.0、
80.0、200.0ng/ml)各加(1+9)硫酸12.5ml,50g/L硫脲2.5ml,
补加水至刻度,混匀备测。
4.3测定
4.3.1仪器参考条件:
光电倍增管电压:
400v;
砷空心阴极灯电流:
35mA;
原子化器:
温度820℃~850℃;
高度7mm;
载气流速:
600mL/min;
测量方式:
浓度直读,读数方式:
峰面积;
读数延迟时间:
1s;
读数时间:
15s;
硼氢化钠溶液加入时间:
5s;
标液或样液加入体积:
2ml。
4.3.2浓度方式测量:
开机并设定好仪器条件后,预热稳定约
20分钟。
按健进入空白值测量状态,连续进样,待读数稳定后,按空档健记录下空白值即可以开始测量。
先依次测标准系列。
标准系列测完后应仔细清洗进样器并使读数基本回零后,才能测试剂空白和试样,每测不同的试样前都应清洗进样器,记录测量数据。
4.4结果计算
C1-C025
X=————×
——
m1000
X——试样的砷含量,mg/L;
C1——试样被测液的浓度,ng/ml;
C0——试剂空白液的浓度,ng/ml;
m——试样的质量,g。
计算结果保留两位有效数字。
GB/T5009.11—2003
铅检验标准操作规程
建立铅检验标准操作规程
铅检验的标准操作
称取2.00g试样于瓷坩埚中,在电热板上炭化至无烟,移至马弗500℃灰化6小时,冷却.用硝酸(0.5mol/L)将灰溶解,用滴管将试样消化液滤入25ml容量瓶中,用水少量多次洗涤坩埚,洗液并入容量瓶中并定容至刻度,混匀备用,同时作试剂空白。
4.2测定
4.2.1仪器条件:
根据仪器性能调至最佳状态。
参考条件为波长283.3nm,狭缝0.4nm,空气流量8L/min,原子化温度1700℃~2300℃,持续4s。
4.2.2标准曲线绘制:
吸取铅标准使用液10.0,20.0,40.0,80.0ng/ml各0.01ml,注入火焰原子化器,测得其吸光值并求得吸光值与浓度关系的一元线段性回归方程。
4.2.3试样测定:
分别吸取样液和试剂空白液各0.01ml,注入火焰原子化器,测得其吸光值,代入方程求得样液中铅含量。
4.2.4结果计算
(C1-C0)×
V×
1000
X=——————————
m×
1000
X——试样铅的含量,mg/L;
C1——测定样液中铅含量,ng/ml;
C0——试剂空白液中铅含量,ng/ml;
V——试样消化液定量总体积,ml;
GB/T5009.12—2003
铜检验标准操作规程
建立铜检验标准操作规程
铜检验的标准操作
4.1试样消解称取样品2.00g,置于瓷坩埚中,加5ml硝酸,放置半小时,电热板上蒸干,电炉加热炭化,移入马弗炉中500℃灰化1小时,取出放冷,再加1ml硝酸浸湿灰分,电热板上蒸干,再移入马弗炉中500℃灰化半小时,取出放冷,以1ml硝酸(1+4)溶解4次,移入10ml容量瓶中,用水稀释至刻度,备用。
4.2测定
4.2.1吸取0.0,1.0,2.0,4.0,6.0,8.0,10.0,ml铜标准使用液(1.0µ
g/ml),分别置于10ml容量瓶中,加硝酸(10%)稀释至刻度,混匀。
容量瓶中每毫升分别相当于0,0.10,0.20,0.40,0.60,0.80,1.00µ
g铜。
将处理后的样液、试剂空白液和各容量瓶中铜标准液10µ
L分别导入调至最佳条件火焰原子化器进行测定。
参考条件:
灯电流5mA,波长324.8nm,光谱通带0.5nm,空气流量9
L/min,乙炔流量2L/min,灯头高度6mm,氘灯背景校正。
以铜标准液含量和对应吸光度,代入方程求得含量。
4.3结果计算
(A1-A2)×
X=——————————
X——试样中铜的含量,mg/L;
A1——测定用试样中铜含量,µ
g/ml;
A2——试剂空白液中铜的含量,µ
V——试样消化液总体积,ml;
GB/T5009.13—2003
汞检验标准操作规程
建立汞检验标准操作规程
汞检验的标准操作
4.1试样消解称取1.00g样品,置于四氟乙烯塑料内罐中,加5ml硝酸,混匀后放置过夜,再加7ml过氧化氢,盖上内盖放入不锈钢外套中,旋紧密封。
然后将消解器放入干燥箱中加热,升温至120℃保持恒温3小时,至消解完全,自然冷至室温。
将消解液用硝酸溶液(1+9)定量转移并定容至25ml,摇匀。
同时做试剂空白试验。
待测。
4.2测定
4.2.1仪器条件:
打开测汞仪,预热2小时,并将仪器性能调至最佳状态。
吸取汞标准使用液2.0,4.0,6.0,8.0,10.0ng/ml;
各50ml(相当于10.0,20.0,30.0,40.0,50.0ng)置于测汞仪的汞蒸汽发生器的还原瓶中,分别加入1.0ml氯化亚锡(100g/L),迅速盖紧瓶塞,随后有气泡产生,从仪器读数显示的最高点测得其吸收值,然后,打开吸收瓶上的三通阀将产生的汞蒸汽吸收于高锰酸钾溶液(50g/L)中,待测汞仪上的读数达到零点时进行下一次测定。
分别吸取样液和试剂空白液各5.0ml置于测汞仪的汞蒸汽发生器的还原瓶中,以下按4.2.2自"分别加入1.0ml氯化亚锡..."起进行。
将所测得其吸收值代入方程中求得样液中汞含量。
4.3结果计算
(A1-A2)×
(V1/V2)×
X=——————————————
式中:
X——试样中汞的含量,µ
g/L;
A1——测定试样消化液中汞质量,ng;
A2——试剂空白液中汞质量,ng
V1——试样消化液总体积,ml;
V2——测定用试样消化液体积,ml;
GB/T5009.17—2003
菌落总数检验标准操作规程
建立菌落总数测定标准操作规程
菌落总数测定的标准操作
4.1检样稀释与培养
4.1.1以无菌操作将检样25g或(25ml)放于含有225ml灭菌生理盐水中或其它稀释液的灭菌玻璃瓶内制成1:
10的均匀稀释液。
4.1.2用1ml灭菌吸管吸取1:
10稀释液1ml,沿壁管徐徐注入
含有9ml灭菌生理盐水或其它稀释液的试管内,振摇试管,
混合均匀,做成1:
100的稀释液。
4.1.3另取1ml灭菌吸管,按上法做10倍递增稀释,如此每递增一次,即换用一支1ml灭菌吸管。
4.1.4选择2个~3个适宜稀释度,分别在做10倍递增稀释的同时,即以吸取该稀释度的吸管移1ml稀释液于灭菌培养皿内,每个稀释度做两个培养皿。
4.1.5稀释液移入培养皿后及时凉至46℃营养琼脂培养基注入培养皿约15ml,并转培养皿使混合均匀。
同时将营养琼脂培养基倾入加有1ml稀释液灭菌培养皿内作空白对照。
4.1.6待琼脂凝固后,翻转平板,置36℃温箱内培养48小时±
2小时。
4.2菌落计数方法
做平板菌落计数时,用肉眼观查,在记下各平板的菌落数后,求出同稀释度的各平板平均菌落总数。
4.3菌落计数的报告
4.3.1平板菌落数的选择
选取菌落数在30~300之间的平板作为菌落总数测定标准。
一个稀释度使用两个平板,应采用两个平板平均数,乘以稀释倍数报告之。
GB/T4789.2—2003
大肠菌群检验标准操作规程
建立大肠菌群测定标准操作规程
大肠菌群测定的标准操作
4.1检样稀释
10稀释液1ml,注入含有9ml灭菌生理盐水或其它稀释液的试管内,振摇试管,混合均匀,做成1:
4.1.3另取1ml灭菌吸管,按上法做10倍递增稀释,每递增稀释一次,即换用一支1ml灭菌吸管。
4.1.4选择3个稀释度,每个稀释度接种三管。
4.2乳糠发酵试验
将待检样品接种于乳糖胆盐发酵管内,接种量在1ml以上者,用双料乳糖胆盐发酵管,1ml及1ml以下者,用单料乳糖胆盐发酵管。
每一稀释度接种三管,置36±
1℃温箱内,培养24h±
2h,如所有乳糖胆盐发酵管都不产气,则可报告为大肠菌群阴性,如有产气者,则按下列程序进行。
4.3分离培养
将产气的发酵管分别转种在伊红美蓝琼脂平板上,置36±
1℃温箱内,培养18h~24h,然后取出,观察菌落形态,并做革兰氏染色和证实试验。
4.4证实试验
在上述平板上,挑取可疑大肠菌群菌落1个~2个进行革兰氏染色,同时接种乳糖发酵管,置36±
2h,观察产气情况。
凡乳糖管产气、革兰氏染色为阴性的无芽胞杆菌,即可报告为大肠菌群阳性。
4.5报告
根据证实为大肠菌群阳性的管数,查MPN检索表,报告每100ml(g)大肠菌群的MPN值。
GB/T4789.3—2003
霉菌和酵母菌检验标准操作规程
建立霉菌和酵母菌检验标准操作规程
霉菌和酵母菌检验的标准操作
4.1检样稀释
4.1.1以无菌操作称取检样25g或(25ml)放于含有225ml灭菌生理盐水的具玻塞锥形瓶中,振摇30分钟,即为1:
10的稀释液。
4.1.2用灭菌吸管吸取1:
10稀释液10ml,注入灭菌试管中,另用1ml灭菌吸管反复吹吸50次,使霉菌孢子充分散开。
4.1.3用1ml灭菌吸管吸取1:
10稀释液1ml,注入含有9ml灭菌生理盐水的试管中,另换一支1ml灭菌吸管吹吸5次,此液为1:
4.1.4按上法做10倍递增稀释,每递增稀释一次,即换用一支1ml灭菌吸管,根据对样品污染情况的估计,选择三个合适的稀释度,分别在做10倍稀释的同时,吸取1ml稀释液于灭菌平皿中,每个稀释度做两个平皿,然后将凉至45℃左右的培养基注入平皿中,并转动平皿使之与样液混匀,待琼脂凝固后,倒置于25~28℃温箱中,3天后开始观察,共培养观察5天。
4.2计算方法
通常选择菌落数10~150之间的平皿进行计数,同稀释度的两个平皿的菌落平均数乘以稀释倍数,即为每克(或毫升)检样中含霉菌和酵母菌数。
4.3报告
每克(或毫升)检样所含霉菌和酵母菌数以cfu/g(ml)表示。
GB/T4789.15—2003
沙门氏菌检验标准操作规程
建立沙门氏菌检验标准操作规程
沙门氏菌检验的标准操作
4.1增菌
以无菌操作称取检样25g(ml)放于含有225ml缓冲蛋白胨水的500ml广口瓶内。
固体食品可先应用均质器以8000~10000
转/分钟打碎1分钟,或用乳钵加灭菌砂磨碎,粉状食品用灭菌匙或玻棒研磨使乳化,于36℃±
1℃培养4小时,移取10ml,转种于100ml亚硒酸盐胱氨酸增菌液内,于36℃±
1℃培养18小时~24小时。
4.2分离
取增菌液一环,划线接种于一个亚硫酸铋琼脂平板和一个DHL琼脂平板(或HE琼脂平板、WS或SS琼脂平板)。
于36℃±
1℃分别培养18小时~24小时,观察各个平板上生长的菌落,
GB/T4789.4—2003
志贺氏菌检验标准操作规程
建立志贺氏菌检验标准操作规程
志贺氏菌检验的标准操作
以无菌操作称取检样25g(ml)放于含有225mlGN增菌液的广口瓶内。
固体食品可先应用均质器以8000~10000转/分钟打碎1分钟,或用乳钵加灭菌砂磨碎,粉状食品用灭菌匙或玻棒研磨使乳化,于36℃±
1℃培养6~8小时,培养时间视细菌生长情况而定,当培养液出现微混浊时即应中止培养。
取增菌液一环,划线接种于HE琼脂平板或SS琼脂平板一个;
另取一环划线接种于麦康凯琼脂平板或伊红美蓝琼脂平板一个,于36℃±
1℃分别培养18小时~24小时,志贺氏菌在这些培养基上呈现无色透明不发酵乳糖的菌落。
GB/T4789.5—2003
金黄色葡萄球菌检验标准操作规程
建立金黄色葡萄球菌检验标准操作规程
金黄色葡萄球菌检验的标准操作
4.1增菌培养
4.1.1检样处理:
以无菌操作称取检样25g(ml)加入盛有225ml灭菌生理盐水的广口瓶内