脂肪酶活检测原理及方法.docx
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脂肪酶活检测原理及方法
脂肪酶活检测原理及方法
脂肪酶活检测原理及实际方法:
一、原理以及标准曲线做法
1.对硝基苯酚酯(4-Nitrophenylester)是脂肪酶水解活力测定中运用最为广泛的一种
底物,脂肪酶水解其产生pNP(对硝基苯酚)在碱性条件下显黄色,在410nm下有吸光值,且灵敏度很高。
2.所需试剂有:
CAS碳链长度出货号价格名称
830-03-5 C2 N8130-1G¥462 对硝基苯乙酸酯
2635-54-9C4 N9876-1G ¥570对硝基苯丁酸酯
1956-10-1 C8 21742-1G-F¥487对硝基苯辛酸酯
1956-11-2C12 61716-1G¥435对硝基苯月桂酸酯
1492-30-4 C16N2752-1G¥379对硝基苯棕榈酸酯
14617-86-8 C18 N3627-1G ¥2621.97对硝基苯硬酸脂
全部为色谱纯试剂,购于sigma公司
3.标准曲线绘制:
a.标准对硝基苯酚母液(2mM,2mmol/L):
称取0.02789g的对硝基苯酚(p-NP)溶于100ml的溶液B(即不同pH的缓冲液),置于棕色试剂瓶内,4℃冰箱保存。
方法一:
b.标准曲线绘制:
分别取0.02,0.04,0.06,0.08,0.12,0.16ml的对硝基苯酚母液(2mM),用溶液B(即不同pH的缓冲液)稀释至4ml,分别测定在410nm处的吸收值。
以对硝基苯酚浓度x(对应浓度分别是0.01,0.02,0.03,0.04,0.06,0.08,单位:
mM)为横坐标,吸光值y为纵坐标,绘制标准曲线。
方法二:
全部对硝基苯酚经过与测酶活相同的处理,获得吸光度。
b.标准曲线的绘制:
分别取0、1.875、3.75、7.5、15、22.5、30、45μL的对硝基苯酚分别加入62.5、60.625、58.75、55、47.5、40、32.5、17.5μL的异丙醇和(全部都是)562.5的溶液B,40℃15min,95%乙醇,10000r/min,3min,测出标准曲线。
↗
体系液180(μL)+酶液(40μL)
↘
B液(pH缓冲液):
162μL
此步骤中,底物再次被稀释,浓度为0.889mM。
方法二:
(吸光度法,精准,速度慢)
a.溶液的配制
溶液A:
30.0mg对硝基苯棕桐酸脂(p-NPP,Sigma,或者其他底物)溶于10.00ml异丙醇,4℃棕色瓶(可以使用包锡箔纸的15ml离心管)保存,每10ml可用于单个酶8-10次测定,或用于8-10个酶一次测定,或用于一个酶4次密精测定;
溶液B:
缓冲液(pH缓冲液,可更改)100.0ml加入1滴TritonX-100,混匀,4℃保存。
b.脂肪酶的活力测定(以单个酶液做一个/两个对照为例)
①准备试管30个,10个15ml离心管;
②取1ml/1.2ml溶液A加入到9ml/10.8ml溶液B于离心管中,充分混匀,37℃水浴保温5min,分装至3/4个试管中,每个2.7ml,即体系液;
③向每个试管中加入适量酶液(粗酶液加300μL),对照组中加入灭活酶液(沸水煮沸5min),加入酶液后即为反应液;
④37℃反应10-15min,加入95%乙醇终止反应,在410nm下测定吸光值,每个样品重复2/3次,取平均值。
三、96孔板装样方式:
步骤一:
温度不变,定为40℃,以pH和底物为变量,先在EP管内反应,后加入至96孔板中。
其中每个孔是220μL体系。
pH缓冲液分别采取PBS缓冲液(7、8)、Tris-HCl缓冲液(8、9)。
a.该方法需要的总酶液量(每个酶的单次实验):
40*80=3.2ml,其中需要灭活的是800μL。
以方便计算以及加样,取4ml酶液,1ml用来灭活。
b.该方法需要的单个底物的总量是(每个酶的单次试验):
18*16=288μL,以方便计算和加样,取300μL。
c.以三个酶为例仅做pH和底物交叉实验为例,需要每个酶液4ml,每个底物900μL。
表为96孔加样模式:
C2等代表底物,后面的数字代表pH,红色字体表示一个空白对照和三个平行。
蓝色字体中,pH8分别用了PBS缓冲液和Tris-HCl缓冲液,以便比较不同缓冲液对酶活的影响。
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A
C27空白
C27
平行
C47空白
C47
C87空白
C87
C127空
C127
C167空
C167
B
C27
平行
C27
平行
C47
C47
C87
C87
C127
C127
C167
C167
C
C28空白
C28
C4空白
C48
C8空白
C88
C12空白
C128
C16空白
C168
D
C28
C28
C48
C48
C88
C88
C128
C128
C168
C168
E
C28Tri空白
C28Tri
C48Tri空白
C48Tri
C88Tri空白
C88Tri
C128Tri空白
C128Tri
C168Tri空白
C168Tri
F
C28Tri
C28Tri
C48Tri
C48Tri
C88Tri
C88Tri
C128Tri
C128Tri
C168Tri
C168Tri
G
C29Tri空白
C29Tri
C49Tri空白
C49Tri
C89Tri空白
C89Tri
C129Tri空白
C129Tri
C169Tri空白
C169Tri
H
C29Tri
C29Tri
C49Tri
C49Tri
C89Tri
C89Tri
C129Tri
C129Tri
C169Tri
C169Tri
步骤二:
pH不变,以温度和底物为变量,先在EP管内反应,后加至96孔板中。
其中每个孔是220μL体系。
a.该方法需要的总酶液量(每个酶的单次实验):
40*60=2.4ml,其中需要灭活的是600μL。
以方便计算以及加样,取3ml酶液,750ml用来灭活。
b.该方法需要的单个底物的总量是(每个酶的单次试验):
18*12=216μL,以方便计算和加样,取250μL。
c.以三个酶为例仅做pH和底物交叉实验为例,需要每个酶液3ml,每个底物750μL。
表为96孔加样模式其中C2等代表底物,后面的数字代表温度,红色字体表示一个空白对照和三个平行。
40℃因已经在上个步骤中做过,不再重复。
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A
C230空白
C230平行
C430空白
C430
C830空白
C830
C1230空白
C1230
C1630空白
C1630
B
C230平行
C230平行
C430
C430
C830
C830
C1230
C1230
C1630
C1630
C
C250空白
C250
C450空白
C450
C850空白
C850
C1250空白
C1250
C1650空白
C1650
D
C250
C250
C450
C450
C850
C850
C1250
C1250
C1650
C1650
E
C260空白
C260
C460空白
C460
C860空白
C860
C1260空白
C1260
C1660空白
C1660
F
C260
C260
C460
C460
C860
C860
C1260
C1260
C1660
C1660
G
H