血浆处理Word格式.docx
《血浆处理Word格式.docx》由会员分享，可在线阅读，更多相关《血浆处理Word格式.docx（12页珍藏版）》请在冰点文库上搜索。
MTBE+5%乙醇：
3.2；
乙醚：
2.8；
MTBE：
2.5；
氯丙烷：
1.0；
正己烷：
0。
数值越大，极性越强。
最好用固相萃取，真得很好。
半个小时搞定一批24个。
上面已经把理论上的使用方法说的很详细了，实际中你要根据你的药物的性质选取合适的，兼顾药物本身的提取率和血浆内源杂质的干扰，先从理论上选取几个比较合适的，再实际处理样品验证下，找最合适的。
是否萃取率高,一个要看你的化合物性质;
真正确定的方法还是你自己预试,拿空白血浆加入已知量的药物,萃取做HPLC了.
（如果是大极性的就要用乙醚，异丙醇，正己烷，环己烷；
如果是小极性的就用氯仿，二氯甲烷，乙酸乙酯）?
应该是大极性的就用氯仿，二氯甲烷，乙酸乙酯;
如果是小极性的就要用乙醚，异丙醇，正己烷，环己烷吧!
如果是大极性的就要用乙醚，异丙醇，如果是小极性的就用正己烷，环己烷；
氯仿，二氯甲烷，乙酸乙酯适合于中等极性。
乙醚易将血浆中的极性物质提出来，提取的样品比较脏；
异丙醇起沉淀蛋白的作用；
环几烷比较安全，对于极性小的药物效果比较好；
乙酸乙酯对极性大及小的物质都有一定提取效率，一般首选用其提取作初步摸索；
一般情况坚决不用氯仿、二氯甲烷，毒性大，又不容易吹干，做最最候选。
。
一天一点收获——关于丁香园里的血浆处理方法帖子汇总
2009年01月07日星期三14:
43
昨天晚上实验了给老鼠取血的过程，后面的血浆处理还没有做，感觉自己一个劲地在赶实验，理论基础还不是很扎实，所以今天下午上了丁香园药动版看了许多帖子，学到了不少知识，希望能在后面剩的不多的实验中，能够顺利完成。
目前还差血浆处理和老鼠给药两个步骤没有操作过。
理论应该和实践是并进的！
最近要抓紧时间，争取在寒假前把分析方法建好，论文框架搭好，同时还要看公务员书。
这就是我的计划。
1.【求助】血浆加提取液，离心后直接取上清液进样，这种血药检测方法怎么回算出血药浓度？
RT，不少文章都用到这种方法，比起取上清吹干后再用一定量的流动相溶解残渣的方法，这种方法似乎无法准确推算血药浓度，因为离心出来的上清液显然不是原来的提取液+血浆的体积了，请问这种方法怎样推算出具体的血药浓度呢？
1，用对照，空白血浆加入已知浓度对照，同法操作，峰面积和样品峰面积相比，就能算出样品浓度。
注意我说的同法操作。
2，体内药物分析的精度往往会差一些，因为常多步提取等，故常加入内标物来减少误差。
谢谢楼上回复，我想算的是加样回收的回收率，我是这么做的：
回收率组我是用空白血浆+一定浓度的药物标准品，处理得上清，进样，对照组先用空白血浆，处理，得上清后，再加一定浓度的药物标准品，进样，以对照组峰面积为100%回收率峰面积，再与回收率组峰面积相比较，考察回收率。
2.药代动力学试验常用的组织前处理方法
1.样品均匀化
对于生物样品，应在测定前混合均匀，以免造成测定误差。
可置涡流混合器上混匀，血浆样品往复振摇亦可达到均匀化的目的。
对粪便、肌肉和组织等固体样品都存在均匀化这一问题。
对含有不溶性组分的样品（例如组织和粪便），须将样品进行匀浆处理，以保证样品的均匀性。
同时还应注意取样的代表性问题。
2.去蛋白处理
生物样品如血浆、血清等含有大量的蛋白质，它们能结合药物，因此对于某些药物的测定，必须先将与蛋白结合的药物游离之后再作进一步处理。
通常去蛋白过程是将蛋白质变性处理后，把与蛋白结合的药物解离出来，离心分离以除去蛋白。
目前已有很多去蛋白方法可供使用，但使用各种方法之前应了解该方法是否会导致生物样品中的药物发生分解或影响药物的提取等。
通常除蛋白的方法是在含蛋白样品中加入适当的沉淀剂或变性剂，使蛋白质脱水而沉淀（如有机溶剂、中性盐），有的是由于蛋白质形成不溶性盐而析出（如高氯酸），离心后取上清液用于分析。
甲醇、乙腈、丙酮和乙醇是沉淀蛋白常用的有机溶剂，中性盐可用氯化铵等。
无机盐沉淀蛋白是可逆的，即将蛋白稀释后仍具有生理活性，而有机溶剂和酸类沉淀的蛋白是不可逆的。
也可用透析法与超滤法除去样品中蛋白。
3.被测组分的提取
生物样品中被测组分一般需提取后才能进行色谱分析，这一步骤包含了样品的净化与浓缩。
提取方法和提取条件的选择是分析方法研究的重要内容之一，它与分析方法的选择性、精密度和准确度紧密相关。
3.1液-液提取
液-液提取是经典的提取方法之一，它基于被测组分在不相混溶的两种溶剂中的分配。
在提取过程中，水相的pH是重要的参数；
一般弱酸性药物可加入一定量的酸，弱碱性药物可加入一定量的碱，使药物以分子状态存在，有利于有机溶剂的提取效果；
在液质联用中，必须使用可挥发性的酸和碱，如盐酸、甲酸、乙酸、氨水等。
有时加入一些强离子的无机盐（如氯化钠），利用盐析作用，能促进组分进入有机相。
通过选择不同的有机溶剂可提高选择性。
一般可选用乙酸乙酯、乙醚、二氯甲烷、氯仿、正己烷、甲基叔丁基醚、甲醇、乙腈等有机溶剂及其不同比例的混合物进行提取。
液-液提取可用于水为基质的样品中非极性或弱极性组分的提取，液液提取可用氮气吹干，残渣可用与色谱方法相适应的溶剂溶解后进样。
液-液提取有时会发生乳化现象以及被测组分损失。
为了防止乳化，可应用较大体积的有机溶剂，避免猛烈振摇或加入适当的试剂改变其表面张力而破乳，若已发生严重的乳化现象，可将试管置于冰箱中冷冻破乳。
萃取过程中所用的玻璃容器壁对某些药物的吸附是不可忽略的，特别是当药物浓度较低时更是如此。
可使用经硅烧化处理的器具，同时萃取剂中加入异戊醇也可减少玻璃壁的吸附，还可减少萃取过程中乳化的形成。
两性药物或水溶性很强的药物不能用一般的溶剂萃取法将它们自体液介质中萃取出来，通常可用离子对萃取法。
针对呈解离状态的药物，可以加入反离子来形成离子对络合物，再用有机溶剂萃取出来。
一般碱性药物用十二烷基磺酸类（RSO3H）作为反离子，其他有戊烷磺酸、己烷磺酸、庚烷磺酸、辛烷磺酸等；
酸性药物可用烷基季铵类化合物（R4N+X-）作为反离子，如四丁基铵、四乙基铵、四辛基铵等。
形成离子对后可用相应有机溶剂提取。
3.2固相分离
固相分离又称为固相提取柱法，其常用的柱填料有吸附剂、高分子大孔树脂、离子交换树脂、键合硅胶等。
固相分离有两种实现样品纯化的途径。
一种是保留杂质，待测组分不被保留而自然流出或者被洗脱。
更为常用的一种途径是先使待测物完全保留在柱上，使干扰杂质随样品溶剂或洗涤液洗出，然后以小体积溶剂洗脱待测物。
键合硅胶固相提取的一般操作步骤如下：
①以适当强溶剂湿润固相提取填料使其溶剂化；
②以弱溶剂通常是水或缓冲溶液洗涤填料，使其达到良好的分离状态；
③将溶于弱溶剂常是缓冲溶液中的样品加到固相提取柱上；
④以强度适当的弱溶剂，如含有少量甲醇的水或缓冲溶液，洗涤、除去基质或干扰组分；
⑤用强度较高的溶剂洗脱待测组分，收集洗脱液，直接或适当浓缩后进行色谱分析。
为了确立最佳固相提取条件，使方法有良好的选择性、准确度和重现性，在实验、实践中应当从下列各方面着手：
首先要研究待测组分（药物等）的物理、化学性质，根据这些性质选择合适的固相提取剂，然后根据待提取组分的性质和已选用的提取剂来选择洗脱剂；
再了解样品基质的性质，这有助于选择上样前固相提取剂的平衡溶剂、样品溶剂和消除杂质用的洗涤溶剂，最后进行回收率试验，考察提取的完全程度。
3.【求助】离心后怎么进样
血浆加入内标和沉淀剂后，共250ul，这么小的体积，高速离心后的上清液怎么进液相？
直接用进样针吸会不会把沉淀吸进来？
10000转以上应该没有问题,可以把上清液转移出来,再10000转以上离心,进样.也可以吹干后,用流动相溶解,过膜或10000转以上离心,进样.
一般生物样品处理方法常用的有两种，一种是蛋白沉淀法，用有机溶剂（甲醇或乙腈）或强酸（高氯酸）将蛋白沉淀下来，离心后将上清液取出来，氮气吹干，这种方法提取率较高，一般都在90%以上，另一种方法是液液萃取法，即用有机溶剂将药物从生物样品中萃取出来，就是楼主所使用的方法，常用的有机溶剂有乙醚，乙酸乙酯，正己烷，异冰醇，二氯甲烷，氯仿，有机溶剂的选择是根据与药物的极性相近的。
如果楼主用氯仿的回收率不高，不妨可以多换几种有机溶剂来萃取，选择一种回收率最高最稳定的条件来提取，同时萃取时也可以根据你化合物的酸碱性适当地加一些酸或碱来提高回收率。
吹干一般是用氮气吹干，但如果你测的这个化合物很稳定，不容易被氧化的话也可以用空气吹干。
我认为你先解决的问题有以下几个
1.药品是否稳定
2.药品的流失是因为提取?
还是因为吹干?
还是因为吸附?
提取:
在待测物理化性质的基础上,你可以多换几种提取试剂
吹干:
用标准品溶液直接吹干
吸附:
用EP管和玻璃管分别试一下平行多次
确定的是哪个环节的问题再想对策
各位真是有钱呀，都是用氮气来吹的
我现在也买了氮吹仪，但是没舍得买氮气，买了一个空气压缩机来通空气吹－－穷呀～
对于氮气吹，我有几点体会：
1、样品是否要浓缩；
一般血药的浓度都是很低的，但是有些由于灵敏度大，所以很少的量也能测出来；
2、氮吹的目的；
一是加速浓缩的速度，二是防止样品的氧化。
但是我在实验室看到的，有些同学把通气量开到最大，希望缩短浓缩的时间，但样品都全部被吹出来完了，这样还能有较高的回收率么？
在防止氧化方面，更是要把通气量调节到合适的档位就ok了。
像我一样，一次有上百个样本，氮气吹得真是心痛呀～
3、加热的温度；
一般血样中多少含有一定量的蛋白，而蛋白在60～70℃下会不可逆的凝固。
这样，如果温度太高，一方面可能使药物加速分解，再就是蛋白凝固后，大量的吸附药物，使回收率不太高；
在药物稳定的前提下，我还是建议加热温度控制在40～50℃为宜。
以上的经验希望对大家有帮助！
1.建议你先查清楚你测的药物的极性，然后选择哪种提取剂，一般药物都是弱酸或弱碱性，可以考虑加酸或碱提高回收率
2.考虑你用N2吹的时候气有可能开的太大了，可能吹飞了也说不准，把气开的小点试试
各位做药代实验的老前辈，请问大家对血浆样品处理方法，我是这样做的：
取血浆样品0.5ml，加酸化甲醇1.5ml，离心，取上清液进行吹干，加200微升的甲醇水溶液溶解，取20微升进样，但是这样测出来的值有些时间点不好，有些时间点还可以！
请大家帮忙分析一下可能存在的问题在哪里，还有就是是否在离心后取上清液要定量取还是把所以离心后的上清液取出进行吹干啊！
谢谢！
一般甲醇沉淀蛋白不用吹干吧，离心后上清可以直接进样的。
这样做上清中含有水，不太容易吹干。
取上清液吹干，一般定量取，不可能完全取出的。
如果想提高检测限的话，可以考虑液液萃取，再吹干复溶。
仅供参考。
沉淀蛋白时,我们常用甲醇或乙腈作为沉淀剂,至于具体选用哪种溶剂,得根据实验结果而定.通常,如果采用甲醇做流动相时,我们会考虑优先使用甲醇沉淀,因为如果灵敏度够的话可以考虑直接进样分析.当然,如果灵敏度不能满足要求的话,就要进行浓缩了,复溶溶剂可以用流动相.一般来说乙腈的沉淀效果要比甲醇好一些（因此加入的体积可以少一些）,如果考虑直接进样的话,可以用乙腈做流动相和沉淀剂.
个人意见,仅供参考!
楼主既然是直接拿甲醇沉淀蛋白，估计是因为被测物质极性大所致，所以液液萃取未必适合。
离心后取上清液肯定是要定量取的啊！
最后一步可以尝试把甲醇换成流动相复溶，这样可以避免溶剂峰的干扰，还有上清应该定量取
看来样品中浓度不是很高，所以需要浓缩才能进样检测啊。
lz有没有加内标呢？
这样的操作应该加内标做参照会好一点。
你所说的值好不好是从什么角度来看的呢？
会不会是没有加内标，而在取上清和复溶的过程中由于操作不当而引入误差导致的呢？
还是基质产生的干扰？
或者是检测方法还摸的不够完善？
取上清肯定要定量。
你样品浓缩的挺多，至少用4倍量甲醇，如果觉得甲醇有些多，可以用2-3倍的乙腈沉淀，其实如果可以用0.5ml的血样的话，建议楼主采用液液萃取法萃取样品。
这样样品干净，对仪器和色谱柱相对较好，方法的耐受性好！
根据药物的性质一般可以采取蛋白沉淀法和有机溶剂提取法，蛋白沉淀法直接加入蛋白沉淀剂（有甲醇等有机溶剂，酸，盐等，三氟乙酸用得较多），离心后直接吸取上清液进样；
提取法加入有机溶剂，涡旋仪上提取几分钟，离心，定量取上清液置干净试管中，再用氮气40度左右吹干。
用压缩空气易带进杂质，所以还是建议用氮气吹干
如果用沉淀蛋白，就要看看你的药物灵敏度是否可以达到，可以用甲醇试试或者高氯酸也可，主要是沉淀完后上清直接进样可否检测到，如果不行可以考虑吹干取出的所用上清，再复溶进样，（甲醇可以这样作），否则灵敏度低就不好了。
中药药动学血样预处理方法
血样一般均需经过适当的预处理才可用于分析，目前普遍采用的是有机溶剂加入萃取法，包括液-液萃取和沉淀蛋白法。
无论是单味药（常称为小复方）制成的注射液还是多味药组成的复方，均大量可见用此种方法。
但该法不仅浪费有机溶剂，造成环境污染，且费时费力。
日本学者[1，2]提出采用快速流动馏分技术：
所用装置由3个连接的玻璃柱组成，内装硅藻土，不同的pH洗提液流过，得到不同的馏分后进行测定，并应用此项技术进行了小柴胡汤等中药药动学的研究，可依次提取并检测多种有效成分或代谢物。
国内黄熙等[3]报道了方剂血样预处理的简单方便的新方法水浴法，有别于其它各种预处理方法。
该法为：
于1mL含药血清中加入内标，涡旋混匀15s，100℃水浴10min，用超微型搅拌器搅拌1min制成匀浆，12000r/min离心10min，取上清液直接上机进样。
复方水煎液中的化学成分能耐受长时间的沸水高温和水解作用，水浴法提取时，这些成分在体内和体外所处环境基本一致，且血清中源自复方的成分以水溶性成分为主，兼有双溶性成分或部分脂溶性成分，但能溶于热水。
水浴法优点：
（1）步骤简单，一次提取，直接进样；
（2）引入外来因素少，减少误差；
（3）实验条件简单，易于控制；
（4）无毒，不使用有机溶剂；
（5）费用低廉；
高效，可同时处理大批量血样。
做药动实验的时候，一般都直接采集的血液置放含有抗凝剂的试管中，混合后，离心，所的的上清液既为血浆。
全血则是不经离心操。
我想知道全血和血浆在做药动时候，测定血药浓度时区别在那里？
特别是全血净化处理有那些步骤？
小贝狼editedon2007-11-0913:
42
shanzhuyu
★★★爱满园★★★
丁香园准中级站友
发贴:
256
积分:
61
得票:
26
状态:
离线
丁当:
331
∙
发短消息
博客空间
加为好友
2007-11-0915:
59
分享到那里
∙复制网址
∙新浪微博
∙豆瓣社区
∙腾讯微博
∙开心网
∙人人网
收集血液于含有抗凝剂的冰冷离心试管中，轻轻摇匀，离心沉淀蛋白质等干扰成分，根据实验原理不同，在上清液中加入一定量的反应试剂，显色，然后用比色仪测定吸光度。
我查了几篇文献，测定全血、血浆中药物的含量都要离心，取上清液，然后再做其他处理。
不同测定指标样品的处理方法不一样。
shanzhuyueditedon2007-11-0919:
54
wangshudian
天天天亮
丁香园版主
1092
162
79
隐身
485
2007-11-0919:
41
1，首先要明白三者的区别
血液：
由液体成分的血浆和悬浮于其中的血细胞组成，合成为全血
血浆：
离开血管的全血经抗凝处理后，通过离心沉淀，所获得的不含细胞成分的液体，即血浆。
血清：
离体的血液凝固之后，经血凝块聚缩释出的液体，即血清。
粗略的说，血清与血浆的区别，主要在于血清不含纤维蛋白元。
2，测定血药浓度时区别在于药物的分布，药物如果主要分布在血浆中，我们选择血浆，同理其他。
3，如楼上所言，不同指标处理方法不一样。
以HPLC为例，多数的前处理目的为除蛋白，可以用乙腈、甲醇、三氯乙酸、还有一些金属盐类，具体的选择要依你的药物的理化性质来决定。
要做复方的体内代谢（主要成分为生物碱），要用到LC-MS，据说固相萃取柱在净化蛋白和富集效果方面都比较好，故在对血样处理时打算选择这种方法。
再次请教------
1.正相柱除蛋白效果是否和C18相同，这类柱子除蛋白的原理是什么呢？
2.由于复方及其代谢物成分比较复杂，我想这样处理血样：
先过正相柱淋洗后用洗脱剂洗得极性较大组分、淋洗部分再用氯仿萃得低极性组分，两部分分别研究。
（另一种选择是先过反相柱，淋洗部分0.45um过滤后直接进样HPLC，效果有何不同，哪种好些，给点建议！
）
3.过正相柱一般选择什么作淋洗和洗脱剂，哪种洗脱的比较全了。
我知道反相柱是用不同浓度的甲醇洗，随甲醇浓度增大洗脱能力也增强。
4.如果用液-液萃取，是直接往血浆里加有机溶剂么
感谢看到这里的每位战友，还望留下点意见之类的!
本文修改前的原问
请教几个关于血样处理用到的小柱
1.填料都是C18么，型号规格如何，适于几ml血样处理呢
2用法：
是不是新柱水洗活化后，直接上血样就行了？
3淋洗剂一般是水？
甲醇-水？
甲醇？
是不是应该做一下实验来确定，可否用乙酸乙酯或氯仿淋洗呀，不会溶解固定相吧
升级会员 