植物生物技术复习提纲13.docx
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植物生物技术复习提纲13
植物生物技术复习提纲
第一章绪论
1、现代生物技术的产生及其主要领域
1.1现代生物技术的产生
1)传统生物技术阶段
2)近代生物技术阶段
3)现代生物技术阶段
1953,DNA双螺旋发现;
1961~1966,遗传密码破译;
1972~1974,重组DNA技术建立。
一般认为,1972年DNA重组技术的建立,标志着现代生物技术的诞生。
现代生物技术(ModernBiotechnology):
即生物技术(Biotechnology),又称生物工程(bioengineering),是指以现代生命科学为基础,结合先进的工程技术手段和其他学科的科学原理,设计、改造生物体或加工生物原料,为人类生产出所需要的产品或达到某种目的的一系列技术。
1.2现代生物技术的主要技术领域
通常包括:
1)基因工程
2)细胞工程
3)酶工程
4)发酵工
5)蛋白质工程
以基因工程为核心,带动其他“工程”发展。
根据应用领域或技术目的不同,现代生物技术又可分为:
1)农业生物技术:
动物、植物、微生物;
2)医药生物技术;
3)工业生物技术;
4)环境生物技术;
5)海洋生物技术等。
1.3现代生物技术的发展
1)各国概况:
略。
2)现代生物技术发展的三次浪潮:
了解。
3)生物技术发展的重点领域:
未来几年,我国重点领域:
•医药、农业、环境生物技术;
•基础生物学;
•生物多样性和生物安全。
2、植物生物技术的发展与应用
植物生物技术(plantbiotechnology):
是指对植物的性状(产量、品质、抗性等)进行设计和遗传改造,或利用植物生产次生代谢物质和药物等产品的技术。
包括:
植物组织和细胞培养;植物基因工程;分子标记及辅助育种。
2.1、植物生物技术的发展简史
1)植物组培的奠基和发展
1902,德国Haberlandt,预言植物细胞全能性。
1958,Reinert和Steward,胡萝卜根韧皮部愈伤诱导出体胚,再生植株,证实细胞的全能性。
20世纪60~80年代,脱毒快繁、花药/花粉培养、次生代谢物生产、体细胞诱变与筛选、原生质体培养与融合、种植资源保存等研究热。
我国组培世界领先。
2)植物基因工程的发展
1972:
体外重组DNA分子成功。
1983,首例转基因植物问世。
1996,转基因作物投入商品化生产,此后稳定发展。
至2006,200多种植物获得转基因植株,有些投入商品化生产。
3)分子标记的发展
第一代:
1980s,基于核酸分子杂交,如RFLP。
第二代,1990s,基于PCR或限制酶切+PCR,
如RAPD、AFLP、SSR、ISSR、SCAR、STS等。
第三代,近年来,基于DNA测序,如SNP和EST等。
2.2植物生物技术的应用
1)作物育种。
2)脱毒与快繁。
3)有用物质的生产。
4)种质资源保存与交换。
5)理论研究。
3.转基因作物(GMC)的发展概况
3.1转基因改良的性状
第一代:
抗病、抗虫、抗除草剂。
第二代:
改良品质、增加营养、并有医疗保健功能;抗逆和雄性不育作物。
3.2商业化种植的转基因作物
主要是大豆、玉米、棉花;还有油菜、水稻、苜蓿、番茄、马铃薯、西葫芦、杨树、烟草、辣椒、白菜、香蕉、木瓜、亚麻和康乃馨等。
3.3转基因作物的覆盖率:
略。
3.4商业化种植的国家
2009年25个,前六位是:
美国、巴西、阿根廷、加拿大、印度和中国。
发展中国家增长快于发达国家。
3.5国内现状
转基因植物研究始于1980`s初。
1993,第一例转基因植物烟草进入大田试验;
2002以来,批准商品化种植的有抗虫棉花、耐储/抗病毒番茄、抗病毒甜椒、改变花色的矮牵牛、抗虫杨树和抗病毒番木瓜。
从跟踪仿制到自主创新、从实验室探索到产业化的转变。
4.植物生物技术的问题与展望
4.1问题
1)安全性问题:
生物安全性:
转基因发生漂移,产生“超级杂草”、破坏当地野生种遗传结构、次生害虫频发、农药用量加大、环境污染等。
食品安全性:
Bt毒蛋白、过敏原、抗生素抗性标记基因等。
4.2展望
农业是生物技术应用最广、最有前景的领域之一。
生物技术可拓展和创新农业功能,为农业发展提供持久而强劲的动力,但它不可能完全替代传统农业技术,后者在农业生产中仍将发挥主导作用。
思考题:
1、生物技术的概念、主要技术领域(内容)及其发展概况。
2、植物生物技术的内容、应用与发展趋势。
第二章植物组织培养的基本理论、条件与操作技术
第一节植物组织培养的基本理论
一、植物细胞的全能性及其表达
1.植物组织培养(Planttissueculture):
在离体条件下,利用人工培养基对植物器官、组织、细胞和原生质体等进行培养,使其生长成完整植株的过程。
2.植物细胞的全能性(totipotency):
一个具有完整细胞核的植物细胞,都拥有该植物的全部遗传信息,在适宜条件下能进行表达,具有分化发育成完整植株的潜在能力,称为~。
植物组培诞生的理论基础。
3.植物细胞全能性的表达
全能性的表达:
从离体培养的植物细胞或组织诱导分化成完整植株的过程称为~。
细胞全能性表达须满足2个条件:
1)脱离整株;
2)营养和激素。
二、植物细胞的脱分化与再分化
1.脱分化(dedifferentiation):
在组培过程中,已分化的成熟细胞失去原来的结构和功能,恢复为分生状态,经分裂形成愈伤,或只形成未分化细胞特性的过程为~。
分化的逆转。
影响脱分化的因素:
1)脱离母体。
2)生长调节剂。
3)外植体生理状态。
4)基因型
2.再分化/再生(redifferentiation/regeneration):
由脱分化的愈伤组织或细胞在一定培养条件下重新分化,形成各种组织、器官甚至完整植株的过程。
植物离体再生的途径:
1)器官形成(organogenesis):
从愈伤组织或外植体形成不定芽、不定根,然后形成完整植株。
2)体细胞胚胎发生(somaticembryogenesis):
从体细胞诱导的愈伤组织形成类似于合子胚的结构(体细胞胚),进一步发育成完整植株。
也可直接由外植体再生体细胞胚。
三、培养过程中细胞全能性的变化
1.愈伤组织的驯化:
原先依赖于某种生长调节剂而生长的培养物,转变为对该物质自养型的现象。
特点:
无形态发生/再生能力。
2.长期培养物形态发生潜力下降。
第二节植物组织培养的基本条件
一、实验室及其设备
1.准备室
2.接种室(无菌操作室)
3.培养室
4.细胞学实验室
二、培养条件
1.温度:
一般25±2℃。
2.光照:
每日光照12~16h,光强1000~5000lx。
3.湿度:
室内相对湿度70%~80%。
4.氧气。
第三节培养基及其配制
一、培养基的成分
培养基=水+无机+有机+激素+固化剂+其它
1.水:
蒸馏水、自来水(大规模生产)。
2.无机盐
1)大量元素:
浓度大于0.5mM或100mg/L。
包括N、P、K、Ca、Mg、S。
2)微量元素:
浓度低于0.5mM或100mg/L,一般10-7~10-5M。
包括Cu、Fe、B、MnSO4、Mo、Co、Zn。
3.有机化合物
1)糖:
常用蔗糖。
2)维生素
常用:
VBl(盐酸硫胺素);VB6(盐酸吡哆醇);VB3(烟酸);Vc。
3)肌醇。
4)氨基酸及有机添加物。
一般不用。
5)天然复合物:
椰乳、酵母提取物等,成分复杂,一般不用。
4.植物生长调节物(plantgrowthregulator)
1)生长素类(auxin)
2,4-D常用于愈伤的诱导,NAA常用于生根。
2)细胞分裂素类(cytokinin)
6-BA和KT常用于诱导不定芽的分化和茎、苗的增殖。
激素作用的模式:
生长素/细胞分裂素的比值决定再分化的方向,该值低可促进芽的分化,而该值高有利于根的分化和形成愈伤,该值适中则利于完整植株的形成。
5.固化剂:
常用琼脂。
二、培养基的pH值
范围5.5~6.0,一般5.8。
三、培养基的渗透压
培养基中的盐类、蔗糖等影响渗透压。
四、常用培养基的种类和特点
1.MS:
无机盐/离子浓度较高,且较平衡,广泛应用。
2.B5:
含较低的铵(常抑制生长),适合于双子叶特别是木本植物。
3.White:
无机盐含量较低,适于生根培养。
4.N6:
成分较简单,KNO3和(NH4)2SO4含量高,用于花药培养。
5.KM-8P:
有机成分复杂,包括多种单糖和维生素,用于原生质体培养。
五、培养基的配制
1.母液的配制
为简便和精确而配,4℃1个月,沉淀或长菌则丢弃。
大量元素:
10~20倍
微量元素:
5000~1000倍
铁盐:
100倍
有机物:
100~200倍
生长调节物质:
1~10mg/L。
配制方法:
略。
2.培养基的配制(略)
灭菌:
高压蒸汽灭菌(1.0~1.1kg/cm2,121℃,20min),24h内完成。
第四节无菌操作技术
一、灭菌方法
1.物理灭菌
1.1高压高温蒸气灭菌(培养基、器皿、用具):
常用。
在1atm/cm2(0.1Mpa)的压力下,锅内温度达121℃,持续约20min,可杀死各种微生物的营养体及其孢子。
1.2灼烧灭菌(金属器械)
1.3过滤除菌(不耐热物品)
1.4干热灭菌(玻璃器皿及耐热用具):
不推荐。
1.5紫外线照射灭菌(接种室、超净台用)
2.化学灭菌
2.1消毒剂灭菌:
常用氯化汞、次氯酸钠、次氯酸钙、70%酒精。
2.2熏蒸灭菌。
二、无菌操作技术
在经严格灭菌的超净台或接种室内,使用灭菌的器皿和用品进行操作,叫无菌操作。
是组培的关键技术。
三、外植体的灭菌与接种
外植体(explant):
从活体植物上切取下来,接种在培养基上进行离体培养的无菌组织或器官。
1.外植体的选择:
重要,考虑多种因素,见教材。
2.外植体灭菌
无菌苗可直接切取外植体和接种。
带菌材料需消毒灭菌,才能切取外植体进行接种。
常用灭菌剂的使用浓度及时间(表略,见教材)
灭菌步骤:
取材切割—自来水冲洗(几分钟至数小时))—70%酒精20~60sec(浸湿表面)—无菌水冲洗—灭菌剂处理—无菌水冲洗—切取外植体—接种。
3.接种
将灭过菌的材料剪切适当大小:
叶片0.5cm2,茎段0.5cm长,茎尖0.2~0.3mm大小,接种于培养基,封口,标名称、日期等,在适宜条件下培养。
四、培养过程中的污染及对策
1.细菌性污染
症状:
接种后1~2d,外植体附近粘液状、泡沫状、混浊、云雾状痕迹。
污染原主要来自外植体。
对策:
严格操作,对外植体彻底灭菌。
2.真菌性污染
症状:
接种后3~8d,外植体附近或培养基上长霉斑。
污染原主要来自空气。
对策:
清洁环境,清洗或更换超净台过滤装置,严格操作。
课后复习与作业:
1.名词解释:
外植体植物细胞的全能性脱分化再分化愈伤组织
2.如何理解植物细胞的全能性?
3.常用培养基的种类及特点?
4.常用的灭菌方法及用途?
5.用高压高温法进行培养基灭菌应注意什么?
6.谈谈你对无菌操作重要性的认识。
第三章愈伤组织的诱导与培养
第一节愈伤组织的诱导与继代培养
愈伤组织的诱导与分化培养是植物组培的基本环节。
愈伤组织(callus):
指在培养基上,由外植体经脱分化和细胞分裂形成的一团无序生长的薄壁细胞。
一、愈伤组织的诱导及其形态特征
1.愈伤组织的诱导
1)起动期/诱导期:
外植体细胞在外源激素作用下,经脱分化而恢复分裂状态,开始形成愈伤。
细胞外观无明显变化,代谢旺盛,合成加强,为分裂做准备。
2)分裂期:
外植体切口边缘膨大,外层细胞迅速分裂,体积变小,具分生细胞特征,细胞数速增。
3)形成期:
外植体表层细胞分裂减缓,内部细胞开始分裂,大量细胞形成瘤状/泡状或片状结构。
若不及时继代,将分化出拟分生组织瘤状物和维管组织,又称分化期。
2.愈伤组织的形态特征
质地:
松脆易碎的颗粒状;紧密坚实的结块状;水渍或浆糊状。
颜色:
白色或淡黄色;淡绿色或绿色;黄色至褐色。
一般,淡黄或淡绿/绿色松脆或致密的颗粒状愈伤再生能力较强,白色/灰白色或黄褐色、浆糊状或紧实的愈伤再生能力差。
3.影响愈伤诱导的关键因素
关键主要不在于外植体,而是培养基,尤其是激素的种类和浓度。
生长素为愈伤诱导和增殖所必需,细胞分裂素视外植体来源而异。
二、愈伤组织的继代培养
继代培养(subculture):
将原有培养物转移到新鲜培养基上继续培养的过程称为~。
方法:
一般每3~4周继代1次;每次取生长迅速、浅色、疏松的愈伤进行;继代用培养基与原来相同,或根据培养目标、培养阶段不同而改变成分,通常是改变激素配比。
继代培养的目的:
获得大量优良愈伤,供进一步研究之用。
优良愈伤的特点:
1)疏松易碎和旺盛的增殖能力,以便建立悬浮系或无性系;
2)经长期继代仍保持较强的再分化能力,便于获得再生植株或进行遗传操作。
三、悬浮培养
悬浮培养(suspensionculture):
将疏松易碎、生长旺盛的愈伤小块放入液体培养基中进行振荡培养,以形成分散性好的游离单细胞和小细胞团的培养技术。
1.悬浮培养的用途
1)提供一个相对一致的细胞群体,供生理生化、胚胎发生、基因表达等研究。
2)次生代谢物质生产。
3)细胞突变体的诱变与筛选。
4)分离原生质体。
2.影响悬浮培养的因素
1)培养基成分;
2)细胞密度;
3)振荡速度;
4)继代时间。
3.悬浮培养物的继代与测定
1)继代培养:
方法略,见教材。
2)细胞增殖的测定:
A.细胞鲜、干重。
B.细胞密实/叠积体积:
每毫升培养液中细胞的毫升数。
C.细胞数。
第二节愈伤组织的分化培养与植株再生
愈伤组织的分化与植株再生通过器官发生和体胚发生两种途径。
一、器官发生与植株再生
器官发生(organogenesis):
指培养物在适宜条件下产生不定芽和不定根,然后形成完整植株的过程。
又称器官建成/形成/不定器官形成。
1.器官发生的方式/途径
1)直接发生:
从外植体中已存在的器官原基直接形成相应的器官,或者从外植体脱分化形成的分生细胞团上直接形成器官原基。
2)间接发生:
由外植体先形成愈伤组织,再由愈伤分化成器官原基并发育成器官。
常见方式。
2.器官发生的顺序
1)先芽后根:
常见。
2)先根后芽:
较难诱导生芽。
3)在愈伤不同部位分别形成根或芽,再通过维管组织联系而形成完整植株。
4)仅形成芽或根。
芽是外起源,根是内起源。
3.器官发生的生理与分子基础(了解)。
二、体细胞胚胎发生与植株再生
体细胞胚胎发生(somaticembryogenesis):
指体细胞培养物在适宜培养条件下形成类似于合子胚的结构,进而发育成完整植株的过程。
经体胚发生形成的类似于合子胚的结构称为体细胞胚或胚状体(embryoid),或不定胚。
花粉胚:
由小孢子或者其分裂产物等单倍体细胞产生的胚状体,发育成单倍体植株。
合子胚:
植物通过自然受精作用而形成的受精卵/合子,经历原胚、球形胚、心形胚、鱼类形胚和子叶形胚发育而成的胚。
1.体胚与合子胚的比较
无胚乳或胚乳/子叶发育不良;
无种皮;
物质积累少;
质量差,萌发率低;
一般体胚的干燥和休眠过程短暂或缺乏。
2.体胚发生的方式/途径
1)直接发生:
从外植体切口处或表面直接诱导分化出体胚。
2)间接发生:
从愈伤或悬浮培养的胚性细胞分化形成。
3.体胚发生的生理与分子基础(了解)。
4.胚状体与不定芽的区别及其优点
组织学区别:
1)胚状体有两极性,即在发育的早期阶段,从其方向相反的两端分化出茎端和根端,而不定芽或不定根都为单向极性。
2)胚状体有生理隔离:
其维管组织与外植体的维管组织无解剖结构上的联系,而不定芽或不定根往往与愈伤或外植体的维管组织相连。
3)胚状体维管组织的分布是独立的“Y”字形,而不定芽无此现象。
体胚再生途径的优点:
1)数量多、速度快、成苗率高;
2)可制成人工种子,便于运输和保存;
3)再生过程简单,遗传性稳定。
4)多数认为体胚起源于单细胞,转基因植株嵌合体少,遗传稳定。
三、影响植株再生的因素
1.外植体:
基因型、来源或生理状态。
2.培养基成分
1)激素:
常用较高细胞分裂素/生长素促进生芽,但有时绝对浓度更重要;将二者配合使用常利于诱导体胚。
2,4-D:
诱导特异基因表达而诱导胚性细胞形成,但在体胚发育中需降低或去除。
细胞分裂素:
对体胚诱导作用不显,但可显著促进体胚成熟,特别利于子叶发育。
2)其他成分
3.培养条件
1)光照:
一般14~16h光照、8~10h黑暗。
2)温度:
接近于植物原产地的温度利于再生。
经验之谈,应根据实验确定。
第三节试管苗的移栽
移栽能否成功是组培应用于实际的重大问题。
一、试管苗与自然苗的区别
1.试管苗角质层/蜡质层薄弱,易失水;
2.试管苗生长势弱,适应性差;
3.试管苗根系很弱,功能差。
二、试管苗移栽时的注意事项
1.要炼苗:
移前加强光照,开瓶塞,使适应外境。
约需1周。
2.选择合适的移栽介质:
先移入人工调配的混合营养土。
3.移栽时洗净琼脂,防止污染。
4.防止伤根。
5.加强栽后管理。
课后复习与作业:
1.愈伤组织的诱导分哪几个时期?
各时期的特点是什么?
2.什么叫继代培养?
为什么要进行继代培养?
3.悬浮培养有何用途?
4.试述植物离体再生的途径(器官发生和体胚发生)。
5.胚状体与不定芽的区别/体胚的特征有哪些?
6.体胚再生途径的优点有哪些?
7.影响植株再生的内外因素有哪些?
8.简述试管苗移栽时的注意事项。
9.名词解释:
胚状体体细胞胚继代培养悬浮培养器官发生体细胞胚胎发生