《动物细胞培养》实验内容Word格式文档下载.docx

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1、要领：

浸泡、刷洗、酸泡。

2、步骤：

洗衣粉浸泡12h→刷洗→流水震荡冲洗15~20遍→漓水→蒸馏水洗荡2次→37℃烘干→待包装。

3、注意事项：

（1）使用后的器材要立即投入水中。

（2）器皿内要充满液体，不得有气泡。

（3）器材要用流水震荡干净。

（二）包装

1、大的器材如：

量筒、广口瓶、培养皿、吸管等要包装。

2、小的器材如：

注射器、剪刀、镊子放入饭盒。

（1）包装时手指与器材接触面积要小，手指不能触及器材使用端。

（2）封闭器材使用端，标记器材手持端。

（3）小包装

（4）玻璃管道口加棉花。

（三）湿热消毒：

高压灭菌锅消毒

四、作业

1、清洗的要求为何较高？

你认为该如何保证器皿中无杂质？

2、器材包装有何要求？

3、

实验二常用的仪器设备介绍

了解动物细胞培养中常用仪器设备的使用方法、注意事项和保养方法

1）超净工作台

2）自动双重纯水蒸馏器

3）高压蒸气灭菌器

4）过滤器

5）电热恒温干燥箱

6）二氧化碳培养箱

7）冰箱

8）倒置显微镜

1、了解超净工作台的工作原理

2、自动双重纯水蒸馏器结构、使用注意事项。

3、高压蒸气灭菌器的工作原理

4、正压过滤器的使用方法

5、二氧化碳培养箱的使用方法

1、叙述超净工作台的工作原理

2、正压过滤器为何会除菌

实验三常用动物细胞培养用液的配制

掌握常用动物细胞培养用液的组成及配制方法。

二、实验用品与仪器

量筒、烧杯、广口瓶、天平、各种无机盐、

（一）平衡盐溶液的配制

1、平衡盐溶液的配方如下：

NaCl

KCl

CaCl2

MgSO4·

7H2O

Na2HPO4·

2H2O

KH2PO4

NaHCO3

葡萄糖

苯酚红

Hanks

8.00

0.40

0.14

0.20

0.06

0.35

1.00

0.02

D-Hanks

I组配Hanks（1000mL），V组配D-Hanks（1000mL），其他各组不配平衡盐溶液。

2、配制方法：

（以Hanks液为例）

（1）甲液：

用约100mL蒸馏水溶解CaCl2，

（2）乙液：

用约750mL蒸馏水溶解Na2HPO4·

2H2O、KH2PO4、MgSO4·

7H2O、葡萄糖、NaCl、KCl。

（3）将甲液徐徐加入乙液中。

（4）将0.35gNaHCO4溶解在100mL蒸馏水中

（5）用数滴NaHCO4液溶解0.02克酚红。

（6）将4、5液移入3液中。

（7）用双蒸水定容至1000mL，充分混匀，调节PH为7.4。

4℃冰箱过夜。

（8）滤过消毒，小瓶分装（500mL、250mL×

2），冷藏。

3、配制要求

（1）配制后液体呈桃红色，PH7.4左右，没有混浊和沉淀。

（2）含Ca、Mg的物质要单独溶解。

（3）用于分离细胞的消化液宜用无Ca、Mg离子的D-Hanks液或PBS液配制。

（二）200mmol/l，L-谷氨酰胺（10mL）（II组配）

方法：

称取0.292g（M146.12）+双蒸水10mL→滤过除菌→-20℃保存。

使用：

每100mL培养基加1mLL-谷氨酰胺。

（三）抗菌素液（青霉素、链霉素）（III组配）

1、方法：

10mLHangks液或双蒸水溶解100万链霉素，再用8mL链霉素溶解80万u的青霉素，成每毫升青霉素、链霉素各10万单位的母液。

2、使用：

100mL培养液加青、链霉素母液0.1mL。

（四）RPMI-1640基础培养液的配制（IV组配）

甲液：

RPMI-164010.4g

Hepes2.7g

双蒸水700mL

搅拌至颗粒完全溶解（橙红色）

乙液：

NaHCO32.2g

双蒸水30mL

30min颗粒完全溶解

将甲、乙两液混合，加水至终1000mL定容，4℃冰箱静止2~3h，滤过除菌，分装（250mL、250mL、500mL）无菌试验，写好组号，-20℃保存。

注意：

用三天内制备的蒸馏水配制，培养基各成分是否完全溶解的判断方法：

将培养液置室温或4℃冰箱静止30min，观察瓶底有无颗粒产生。

（五）5.6%NaHCO4液（100mL）（V组配）

用双蒸水100mL配制，滤过除菌，分装于广口瓶，4℃冰箱保存，使用时，NaHCO4液要逐滴加入，并不时搅动培养液，以防PH过高。

（六）0.25%胰蛋白酶溶液（400mL）（VI组配）

1：

250的胰蛋白酶（Trypsin）粉 

1.0g

D-Hanks 

400mL

先用少量D-Hanks溶解胰蛋白酶，再将剩下的液体加入混合，置37℃水浴中1h左右（待彻底溶解，液体呈透明为止），用5.6％NaHCO4调整pH至7.6～7.8，用0.22微型滤膜抽滤，分装置4℃冰箱中保存。

（七）0.02%EDTA（乙二胺四乙酸二钠）溶液（200mL）（VI组配）

称取EDTA4g+200mLD-Hanks液→0.02%，滤过除菌，备用。

四、思考题：

1、配制后液体呈黄色意味着液体的PH发生了什么变化？

2、用于分离细胞的消化液为什么宜用无Ca、Mg离子的D-Hanks液或PBS液配制

3、L-谷氨酰胺在营养液中有何作用？

4、营养液制备后为什么要小剂量分装？

实验四组织块原代培养、传代培养及生物学检测

掌握组织块原代培养、传代培养的基本方法和操作特点及生物学检测的基本方法和操作要点。

二、实验器材与用品

1、肝组织2、平衡盐（BSS）液（各组自己配的）×

100mL3、细胞培养皿

4、完全培养液5、灭菌培养皿×

1个/人6、眼科剪、镊子、吸管等7、0.4%台盼蓝8、血球计数板和盖玻片

三、实验步骤

（一）组织块原代培养

1、将一小块肝组织置于灭菌培养皿中，用Hanks或D-Hanks液漂洗表面，吸净Hanks或D-Hanks，用眼科剪反复剪成1~2mm3大小（约需20~30min）。

2、吸管吸取1~2mLHanks或D-Hanks液吹下剪刀中的碎块，然后，反复吹打，静置片刻，吸除上清BSS。

3、用吸管吸取小块肝组织于培养瓶底部，均匀，间距离0.5cm为宜，加少量培养液（维持湿润即可）。

4、次日，组织贴壁后，再补加营养液。

5、37℃温箱培养，24~48后观察。

（二）组织块传代培养

1、将长成单层的原代培养组织块从二氧化碳培养箱中取出，在超净工作台中倒掉瓶内的培养液，加入少许消化液――0.25%胰蛋白酶溶液。

（以液面盖住细胞为宜），静置5～10分钟。

2、在倒置镜下观察被消化的细胞，如果细胞变园，相互之间不再连接成片，这时应立即在超净工作台中将消化液倒掉，加入3～5mL新鲜培养液，吹打，制成细胞悬液。

3、将细胞悬液吸出2mL左右，加到另一个培养瓶中并向每个瓶中分别加3mL左右培养液，盖好瓶塞，送回二氧化碳培养箱中，继续进行培养。

（三）组织培养细胞的常规检查

1、营养液PH值的检查

（1）新鲜的培养液呈橙红色。

（2）细胞生长旺盛，代谢酸性产物增多，营养液酸性变黄。

（3）培养瓶若刷洗不洁，残留碱性物质，致营养液PH增高，呈紫红色。

一般情况下，每周换液2次，每次换半量或1/3量。

2、微生物的污染与排除

（1）细菌污染对培养细胞的影响及污染物的检测

污染的细菌量比较大，增殖的细菌就可以导致培养液外观浑浊，肉眼就可以判断。

细菌污染大多数可以改变培养液pH，使培养液变浑浊、变色。

用相差显微镜观察，可见满视野都是点状的细菌颗粒。

原来的清晰培养背景变得模糊，大量的细菌甚至可以覆盖细胞，对细胞的生存构成威胁。

用青霉素、链霉素可以预防细菌污染有效。

（2）真菌污染对细胞的影响及污染物的检测

大多呈白色或浅黄色小点漂浮于培养液表面，肉眼可见；

有的散在生长，镜下可见呈丝状、管状、树枝状，纵横交错穿行于细胞之间。

（3）支原体污染对细胞影响及污染物的检测

支原体污染后，因为它们不会使细胞死亡可以与细胞长期共存，培养基一般不发生浑浊，细胞无明显变化，外观上给人以正常感觉，实则细胞受到多方面潜在影响，如引起细胞变形，影响DNA合成，抑制细胞生长等。

四、思考题

1、你认为该如何操作才能保证培养过程中无微生物污染？

2、你认为组织块培养成功需哪些条件？

3、原代细胞和传代细胞培养有哪些区别?

实验五心肌细胞的原代培养、传代培养及培养细胞的常规检查

掌握心肌细胞培养的基本方法和操作特点，为传代培养作好准备。

1、鹌鹑的心脏2、平衡盐（BSS）液（各组自己配的）×

100mL

3、细胞培养瓶（每人一个）4、完全培养液5、灭菌培养皿×

1个/人

6、眼科剪、镊子、吸管等7、0.25%胰蛋白酶液8、0.02%EDTA液

9、无菌离心管10、100目铜筛

（一）原代培养实验步骤

1、取材

（1）取一只鹌鹑，断颈处死，用75%酒精浸泡消毒。

（2）（在超净工作台中操作）剪开胸壁，取出心脏，放入Hanks或D-Hanks液中。

（3）用Hanks或D-Hanks液冲洗心脏后，剪去心房，取心室肌，然后，用Hanks或D-Hanks液冲洗3次。

2、漂洗与剪切

（1）将心室肌置于无菌培养皿中，剪成10块左右的小块，用Hanks或D-Hanks清洗2次，吸去多余的液体。

（2）用眼科剪反复剪切成1mm3左右大小，约需20~30min。

3、消化

（1）无菌培养皿中的小组织块用Hanks或D-Hanks液冲洗，移入离心管中（盖好盖子，请注意无菌操作），低速离心（500~800r/min）×

7min。

（2）用吸管去除上清液，加入沉淀量5~8倍的0.25%胰蛋白酶液，37℃水浴摇晃20min，用吸管吹打组织块，以分离细胞，然后，加入完全培养液约5mL，终止消化。

4、制备单细胞悬液

（1）将上述悬液500~800r/min×

7min，吸除上清液。

（2）用BSS液漂吸2~3min（用吸管反复轻打松散组织），离心去上清液，共两次。

（3）去上清液后加15mL细胞培养液，混匀计数约5×

105个/mL。

5、接种

（1）25mL培养瓶中先加入1.5mL培养液，再接种1mL细胞悬液。

（2）持瓶左右、上下轻轻摇晃，移入37℃、5%CO2恒温箱培养，根据细胞生长情况，每隔2~3天换液1次。

（二）传代培养实验步骤

1、取原代培养物，吸除原瓶内旧培养液，轻轻摇晃培养瓶，将细胞振入培养液内，将悬浮在培养液中的细胞移入离心管中。

2、消化

（1）向瓶内加入胰蛋白酶（0.5mL）和EDTA液（0.5mL）约5~8min，需终止消化（加基础培养液1mL）。

（2）收集消化下来的细胞，归入前离心管中，500~800r/min×

5min，去除上清液。

3、分瓶培养：

沉淀物加少量完全培养液，摇匀，分别接种到两个新的培养瓶内，每瓶再补加2.0mL培养液，十字形混匀细胞，、5%CO2恒温箱培养。

（三）细胞培养的生物学检查

1、处理贴壁生长细胞时，吸出培养液，每瓶加入消化液各0.5mL，在37℃下消化1~2min后，加入约10mL培养液，用吸管冲洗细胞，制成细胞悬液。

取0.5mL台盼蓝溶液、0.3mLHanks或D-Hanks液和0.2mL细胞悬液，充分混匀，然后，将混合液放置5~15min。

2、用吸管吸取少量混合液，注入血细胞计数板小室。

将盖玻片放在计数板上，用吸管吸取少量细胞悬液，充满间隙。

在显微镜100倍放大用计数器计数4个大方格中的细胞。

3、至少计数500个细胞，并计数其中的着色细胞。

用双蒸水和75%酒精清洗计数板和盖玻片，然后，用檫镜纸檫干。

4、结果分析：

（1）细胞密度（个/mL）=（四大格细胞数／4）×

104。

每个方格的积为1×

10-4mL。

（2）细胞总数（个）=细胞浓度×

细胞悬液量。

（3）正常细胞不被染色。

细胞死亡后，细胞膜的通透性增大，台盼蓝进入细胞内，故细胞呈兰色。

（4）细胞活力（%）=（总细胞数—着色细胞数）÷

总细胞数×

100%

1、你认为心肌细胞培养的基本操作要点是什么？

2、培养瓶移入CO2恒温箱培养时，瓶盖为何要稍松？

3、如何初步判断胰蛋白酶的消化时间？

4、细胞培养到一定时间为何要进行传代？